Camp тест для стрептококков

Основные ссылки

Вы здесь

Артикул: 735-025
Производитель: Alere Inc., США

Регистрационное удостоверение

Экспресс-тест для определения антигена Streptococcus pyogenes группы A (Стрептококка А) по мазку из горла. В наборе 25 тестов. Тест Стрептококк А Binax NOW® Strep A (Стрептококк группы А - Streptococcus pyogenes) очень прост в использовании: всего 3 простых шага и 5 минут до считывания результата. Увеличьте удовлетворение пациентов предоставляя информацию еще до того как они покинут ваш кабинет. Теперь вы можете начинать лечение немедленно с подходящей терапией; больше не потребуются повторные приемы или телефонные звонки.
Экспресс-тесты Бинакс (США) предназначены для иммунохроматографического анализа, который не включен в Перечень отдельных видов медицинских изделий, происходящих из иностранных государств, в отношении которых устанавливается ограничение допуска для целей осуществления закупок для обеспечения государственных и муниципальных нужд. Поэтому закупка экспресс-тестов Бинакс (США) не регламентируется Постановлением Правительства РФ №102 от 05.02.2015 г. "Об установлении ограничения допуска отдельных видов медицинских изделий, происходящих из иностранных государств, для целей осуществления закупок для обеспечения государственных и муниципальных нужд".

Время постановки 5 минут Чувствительность 92% Специфичность 100% Исследуемый образец Мазок из горла Количество тестов 25 Индивидуальный анализ Есть

Предназначение

Тест Стрептококк А Binax NOW® Strep A является быстрым иммунохроматографическим анализом для качественного определения антигена группы А Streptococcus pyogenes из горла.

Вы можете ознакомиться с рекомендациями Минздрава России по диагностике стрептококковой (группы А) инфекции в введенными в действие в 2014 году в файле выше.
"Профилактика стрептококковой (группы А) инфекции". Клинические рекомендации. – М: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2013 – 41с.
Разработаны: ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова (Брико Н.И., Дмитриева Н.Ф., Клейменов Д.А., Ещина А.С., Миндлина А.Я., Марьин Г.Г., Глушкова Е.В., Донских А.А., Намазова-Баранова Л.С.)
Рекомендованы к изданию Профильной комиссией Минздрава Российской Федерации по эпидемиологии 26 сентября 2013г.

В данных рекомендациях указано: Экспресс-тесты для выявления стрептококка группы А в экстрагирующем растворе 2 поколения могут быть рекомендованы к использованию как средство ранней диагностики при всех случаях тонзиллофарингитов при необходимости начать этиотропное лечение не дожидаясь результатов культуральных методов исследования, или при невозможности их выполнения, а также при расследовании вспышек ангин, фарингитов и скарлатины в организованных коллективах. Экспресс-идентификация проводится в медицинском кабинете детского учреждения, кабинете врача поликлиники или у постели больного в соответствии с несложной инструкцией к использованию.

Критерии качества

Уровень достоверности доказательств

Уровень убедительности рекомендаций

Выполнен осмотр врачом-педиатром или врачом-терапевтом или врачом-инфекционистом или врачом-оториноларингологом не позднее 6 часов от момента госпитализации

Выполнено бактериологическое исследование или экспресс-тест на бета-гемолитический стрептококк группы А слизи с небных мендалин и задней стенки глотки до начала антибактериальной терапии

Диагностические диски и полоски

Артикул

Название (русское/английское)

Фасовка

Описание

Диски с нитроцефином/Nitrocefin Discs

Тест для быстрого выявления продуцирования бета-лактамазы

Диски для детекции mecA резистентности у стафилококков, 10 мкг

Цефподоксим, набор дисков/Cefpodoxime Combination Disc Kit

Тест для выявления бета-лактамаз расширенного спектра у Enterobacteriaceae, которые не продуцируют индуцибельные AmpC ферменты

Состав: Цефподоксим/клавулановая кислота – 10/1 мкг, цефподоксим 10 мкг

Диски для идентификации стрептококков гр. А и энтерококков/ PYR/Esculin Discs

Диски для предварительной идентификации стрептококков группы A и энтерококков; дополнительно требуется реагент BactiDrop™ PYR тест R21544

BactiDrop™ PYR тест/BactiDrop PYR

Тест для быстрой предварительной идентификации стрептококков группы B и энтерококков; использовать с Дисками для идентификации стрептококков гр. А и энтерококков R21138

Тест для предварительной идентификации Streptococcus pneumonia

Тест для дифференциации стрептококков группы А от других бета –гемолитических стрептококков

Диски с бета-лизином/Beta Lysin Discs

Тест для выявления CAMP фактора у стрептококков группы B

Диски с антибиотиками для предварительной идентификации анаэробов/An-Ident Discs

Тест для предварительной идентификации грамотрицательных анаэробных бактерий

Каждая упаковка содержит по 1 картриджу: эритромицин 60 мкг; рифампицин 15 мкг; колистин 10 мкг; пенициллин 2 ЕД; канамицин 1000 мкг; ванкомицин 5 мкг

Диски с желчью/ Bile Disk

Скрининговый тест для отделения Bacteroides fragilis от других Грам-отрицательных анаэробных бацилл

Канамицин/ Kanamycin Discs

Тест для идентификации Грамотрицательных анаэробных бацилл.
Концентрация - 1000 мкг

Диски для идентификации Moraxella catarrhalis/ Catarrhalis Test Discs

Тест для быстрого выявления битурата эстеразы для предварительной идентификации Moraxella catarrhalis

Фуразолидон/ Furazolidone Discs

Тест для дифференциации микрококков и стафилококков

Состав: Фуразолидон 100мкг

Диски гиппурат для детекции микроорганизмов/ Hippurate Discs

Тест для выявления гидролиза гиппурата натрия стрептококками группы B, Gardnerella vaginalis и Campylobacter jejuni.

Дополнительно требуется реагент Нингидрин

Тест для предварительной идентификации Gardnerella vaginalis.

Концентрация - 1000 мкг

Микродаза диски для дифференциации Staphylococcus от Micrococcus / Microdase Discs

Модифицированный оксидазный тест для дифференциации стафилококков от микрококков

M.U.G. диски для идентификации E. coli/ MUG Disk

Тест для предварительной идентификации Escherichia coli флуорогенным методом

A.L.A. диски/A.L.A. Discs

Тест для демонстрации синтеза порфирина Haemophilus spp.

Диски для идентификации Haemophilus/Haemophilus Identification

Тест для выявления ростовых потребностей и порфирин продуцирования Haemophilus spp.

Состав: H диск с Гемином (X фактор) и VP диск (V фактор и дельта-аминолевулиновая кислота (ALA))

Тест для дифференциации группы Haemophilus от других бактерий; предпочтительно хранить при t от -10°C до -20°C

ОГАНЯН К. А., ЗАЦИОРСКАЯ С. Л., АРЖАНОВА О. Н., САВИЧЕВА А. М.
ГУ НИИ акушерства и гинекологии им. Д. О. Отта РАМН, г. Санкт-Петербург

ВВЕДЕНИЕ

В акушерско-гинекологической практике значительное место в развитии инфекционно-воспалительных заболеваний занимают условно-патогенные микроорганизмы, в частности стрептококки группы В (СГВ). Известно, что они могут вегетировать в кишечнике и половых органах здоровых женщин, могут также передаваться половым путем. В большинстве случаев имеет место бессимптомное носительство СГБ. Колонизация урогенитального тракта беременной женщины стреп тококками группы В может представлять значитель ную угрозу, т. к. изменения иммунного статуса при беременности способствуют возникновению восходящей инфекции.

По данным зарубежной литературы, по меньшей мере 10% беременных в Германии, 10–40% в Англии, 20–40% в США колонизированы стрептококками группы В. Почти половина детей от этих матерей также колонизирована этим микроорганизмом, из которых, в свою очередь, фактически заболевает только небольшая часть новорожденных.

По данным наших предыдущих исследований, 37%, а по данным зарубежной литературы, 40–75% рожениц, колонизированных стрептококками груп пы В, передают их детям. Наиболее частыми, подчас летальными, заболеваниями новорожденных являются пневмония, сепсис (ранний и поздний), менингит. Кроме того, у новорожденных может раз виться конъюнктивит, отит, омфалит, артрит. Заболевания у детей могут протекать тяжело, и даже после выздоровления могут остаться серьезные последствия на всю жизнь в виде нарушения зрения, неврологической симптоматики, проблем со слухом. Чем больше незрелость новорожденного, тем тяжелее протекает инфекция.

Инфицирование плода СГВ происходит при прохождении его через родовые пути матери. Существуют данные, что стрептококки группы В могут проходить интраканаликулярно через интактные плодные оболочки и внутриутробно поражать плод. В таких случаях они могут быть причиной ранних и поздних выкидышей, преждевременных родов, мертворождений. При поражении эндометрия нарушается процесс плацентации и развития последа, что способствует вторичной плацентарной недостаточности. Стрептококки группы В могут поражать плаценту (плацентит) и плодные оболочки (хориоамнионит), что, в свою очередь, приводит к задержке развития и гипотрофии плода, а также к преждевременному возбуждению родовой деятельности. Часто наблюдаются несвоевременное отхождение околоплодных вод, аномалии родовой деятельности (быстрые роды). В послеродовом периоде возможно развитие параметрита вследствие распространения инфекции лимфогенным путем из послеродовой раны или инфицированной матки, а также при разрыве шейки матки и верхней трети влагалища.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Изучение влияния стрептококков группы В, колонизирующих урогенитальный тракт беременных женщин, на течение и исход беременности.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Всего обследованы 55 беременных женщин. В I триместре беременности находились 9 женщин, 7 – во II, 39 – в III. Все беременные обследованы в отделении физиологии и патологии беременности ГУ НИИ АГ им. Д. О. Отта РАМН. Кроме того, обследованы 27 родильниц и детей. Материалами для исследования у беременных женщин и родильниц служили вагинальный секрет и средняя порция свободно выпущенной мочи, а у новорожденных – отделяемое задней стенки глотки, полости носа, меконий, мазки с кожи вокруг пуповинного остатка, подмышечных и паховых складок.

Для выделения и идентификации стрептококков использовались бактериологические методы. Посев клинического материала осуществлялся на Columbia агар и Columbia бульон с селективными добавками (фирмы HiMedia, Индия) для выделения стрептококков. Выделенные стрептококки идентифицировались с помощью биохимических тестов, CAMP-теста, реакции ко-агглютинации для определения групповой принадлежности и с помощью автоматического анализатора MINI-API, фирмы BioMerieux (Франция).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

В группу изучения включены 55 беременных женщин, колонизированных стрептококками группы В. При этом в I триместре беременности частота выделения стрептококков группы В из вагинального секрета составила 33,3%, из мочи – 18,9%, из них у 1 (11,1%) был хронический пиелонефрит в анамнезе, у 3 (33,3%) – угроза прерывания беременности (33,3%). Во II триместре беременности в вагинальном секрете в 57,1% случаев выделены стрептококки группы В, в моче – 57,1%.

При этом угроза прерывания беременности была у 2 (16,7%) женщин, сахарный диабет беременных – у 2 (28,6%) женщин, хронический пиелонефрит – у 1 (14,3%) женщины. В III триместре беременности стрептококки группы В выделены из вагинального секрета у 48,7% беременных, в моче – у 69,2%, при этом угроза прерывания беременности была у 6 (15,4%) женщин, сахарный диабет беременных – у 9 (23,1%), хронический пиелонефрит в анамнезе – у 11 (28,2%), гипотрофия плода – у 2 (5,1%), хроническая плацентарная недостаточность – у 10 (25,6%), маловодие – у 2 (5,1%), многоводие – у 4 (10,25%) женщин.

При обследовании 27 родильниц стрептококки группы В были выделены из вагинального секрета и/или из мочи у всех женщин. Из них у 6 (22,2%) женщин был хронический пиелонефрит, сахарный диабет беременных – у 8 (22%), гипотрофия плода – у 5 (18,5%), хроническая плацентарная недостаточность – у 7 (31,8%). Нарушение жизнедеятельности плода в родах, по данным кардиотокографического и ультразвукового исследования, установлено у 5 (18,5%) женщин, колонизированных СГВ, которые были родоразрешены путем экстренной операции кесарева сечения. Во всех 5 случаях у детей были выделены стрептококки группы В.

Раннее излитие околоплодных вод наблюдалось у 4 (14,8%) женщин, преждевременное излитие – у 12 (44,4%), преждевременные роды – у 4 (14,8%), быстрые роды – у 2 (7,4%) женщин. Кроме того, антенатальная гибель плода имела место у 1 (3,7%), постнатальная гибель плодов – у 3 (11,1%) из 27 родильниц. При исследовании секционных материалов во всех четырех случаях были выделены стрептококки группы В.

Из 23 детей, рожденных от матерей, колонизированных стрептококками группы В, эти микроорганизмы были выделены в 14 (60,87%) случаях. При этом оценка по шкале Апгар была ниже 8 баллов у 8 (34,8%) детей.

В послеродовом периоде у 4 (14,8%) родильниц имела место субинволюция матки и была выполнена вакуум-аспирация сгустков из полости матки, у 6 (22,2%) женщин проводилось ручное обследование полости матки, температура в родах повышалась у 8 (22%) родильниц.

При гистологическом исследовании воспалительные изменения в плаценте были в 14 (51,9%) случаях, во внеплацентарных оболочках – в 18 (66,7%).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Колонизация урогенитального тракта беременных женщин стрептококками группы В приводит к осложнению течения беременности, такому как угроза прерывания, хроническая плацентарная недостаточность, гипотрофия плода, многоводие. В родах отмечается нарушение жизнедеятельности плода, раннее и преждевременное излитие околоплодных вод, повышение температуры тела в родах. Значительный процент составляли преждевременные и быстрые роды. Послеродовый период при стрептококковой В инфекции также протекает с осложнениями, такими как субинволюция матки. У 60,9% детей, рожденных от матерей со стрептококковой колонизацией урогенитального тракта, выделялись стрептококки группы В. В 4 случаях имела место антенатальная и постнатальная гибель плодов. При перинатальной гибели плодов в матери алах, полученных из внутренних органов, были выделены стрептококки группы В. Выделение СГВ у детей, родившихся путем операции кесарева сечения от матерей, колонизированных этими микроорганизмами, свидетельствует о внутриутробном инфицировании плодов.

Гистологическое исследование плаценты показало, что воспалительные изменения в плаценте и во внеплацентарных оболочках установлены в большинстве случаев. Эти изменения подтверждают возможность внутриутробного инфицирования плода, а также развитие эндометрита в послеродовом периоде.

Учитывая неблагоприятное влияние СГВ на течение и исход беременности для матери и плода, необходимо проводить обязательное обследование беременных на СГБ и профилактическую антибактериальную терапию перед родами женщинам, половые пути которых колонизированы стрептококками группы В.

ВЫВОДЫ

1. СГВ чаще выделяется из мочи беременных женщин, чем из отделяемого влагалища.

2. Колонизация урогенитального тракта беременных женщин стрептококками группы В оказывает неблагоприятное влияние на течение беременности в виде угрозы прерывания, пиелонефрита беременных, хронической плацентарной недостаточности, гипотрофии плода.

3. Исход беременности у женщин с колонизацией СГВ в моче и половых путях неблагоприятен как для матери, так и для плода.

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Зациорская С. Л., Башмакова М. А., Калашникова Е. П. Генерализованная инфекция плода и новорожденного, вызванная стрептококками группы В // Вопр. охр. мат. и дет. 1987. C. 60–62; Актуальные вопросы акушерства и гинекологии.
2. Латышева Е. В. Распространенность носительства стрептококков группы В среди беременных женщин и его влияние на послеродовый и ранний неонатальный период. Т. 1. Вып. 1. Разд. I. Акушерство // Актуальные вопросы акушерства и гинекологии.
3. R. Berner. Infektionen durch Gruppe-B-Streptokokken In der Neonatalperiode / Monatsschr Kinderheild 2003. 151: 373–383.
4. Baker, C. J. & Edvards, M. S. (1990). Group B streptococcal infection. In infectious diseas of the fetus and newborn infant 3rd edn. ed / J. S. Remington & J. O. Klein. Philadelphia: W. B. Saunders Company. P. 742–811.

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах: 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30

1. Просмотреть посевы, определить культуральные и морфологические особенности.

2. Учет результатов записать в тетради.

3. Изолированные колонии стафилококков пересеять на среды для определения

4. Окрасить готовые фиксированные мазки из гноя и готовые мазки - отпечатки из

5. Сделать посевы на сывороточный МПБ и глюкозно-кровяной МПА.

Материалы и оборудование: Посевы на питательных средах, произведенные на предыдущем занятии; питательные среды для определения ферментативных свойств стафилококков и стрептококков (полужидкий агар с маннитом и индика­тором BP, лактозой, глюкозой, молоко простое, молоко с метиленовым синим, МПЖ); пробирки с цитратной плазмой кролика, МПА в колбе с рН 8,4—8,6, рас­твор натриевой соли ДНК (20 мг/мл) в стерильной дистиллированной воде с не­сколькими каплями 2 %-ного NaOH (сохраняется до 40 дней при 4 °С), раствор хлористого кальция (в ампулах), стерильные чашки Петри, кровяной МПА в чаш­ках, чистые культуры стафилококка, маститного стрептококка и пневмококка.

Секция – 12, грамположительные кокки.

Виды – Str. pyogenes, Str. agalactiae, Str. equi, Str. pneunoniae, Str. faecalis.

Рис. 2 Стрептококк. Электронная микроскопия.

Стрептококки — в природе существуют патогенные и непатогенные стрептококки. Патогенные гемолитические стрептококки, как правило, вызывают инфекционные процессы, сопровождающиеся образованием гноя, по­этому их нередко называют гноеродными. Род стрептококков включает более 20 видов. Из патогенных чаще встречаются Str. pyogenes, Str. agalactiae, Str. equi, Str. pneumoniae. К непатогенным стрептококкам относятся молочнокислые и некото­рые другие (Str. lactis, Str. cremoris, Str. salivaris и др.). Разные виды патогенных стрептококков при их росте на кровяном агаре проявляют неодинаковый тип ге­молиза: ά-гемолиз — колонии зеленовато-серые, вокруг непрозрачная зеленая зона вследствие того, что гемоглобин переходит в метагемоглобин; β-гемолиз — вокруг колонии образуется прозрачная зона гемолиза. Непатогенные стрептокок­ки (Str. anhaemolyticus) гемолитическими свойствами не обладают.

Возбудитель инфекционного мастита коров — Str. agalactiae (Str. mastitidis).

При проведении бактериологического исследования учитывают, что хотя мастит коров может быть обусловлен различными видами микроорганизмов (стрептококками, ста­филококками, кишечной палочкой, синегнойной и др.), но специфическое значение в этиологии мастита имеет Str. agalactiae, реже золотистый стафилококк. Клинически выраженный мастит установить легче, бактериологическим исследованием устанавливают возбудителя, что облегчает более точный подбор лечебных средств.

Особое значение имеет распространение в хозяйствах скрытого (субклини­ческого) мастита, нередко предшествующего клиническому проявлению заболе­вания. С целью профилактики явных маститов диагностирование скрытого мас­тита представляет практическую необходимость.

Патологическим материалом для лабораторной диагностики клинически выраженного мастита служит измененный секрет из пораженной доли вымени. Его берут из каждого соска в отдельные стерильные пробирки. Для диагностики субклинического мастита первые порции молока не используют, их сдаивают в отдельную посуду; соски обмывают, дезинфицируют 70 %-ным спиртом, из каж­дого соска сдаивают в отдельные стерильные пробирки небольшое количество паренхимного молока (последние порции), закрывают пробкой. Молоко положе­но исследовать не позже двух часов с момента взятия проб.

Микроскопия фиксированных тонких и окрашенных по Граму мазков из присланного материала позволяет определить морфологические и тинкториальные свойства микроорганизма.

Str. agalactiae располагается длинными цепочками из сплюснутых кокков. Диаметр кокков 0,5-1 мкм. Грамположительные. При окраске мазка по Романовскому — Гимзе или метиленовым синим (Леффлера) выявляют и под­считывают клеточные элементы — фагоциты (увеличенное количество лейкоци­тов в молоке свидетельствует о воспалении молочной железы).

Рис. 3. Streptococcus agalactiae окраска по Граму.

Стрептококки неподвижные, споры и капсулы не образуют. В мазках из культуры с плотной питательной среды цепочки маститного стрептококка короткие.

Культуральные свойства. Оптимальный рН питательных сред для агалактийного стрептококка 7,6—7,8. Хорошо растет в обычных средах, но лучше с до­бавлением кровяной сыворотки или дефибринированной крови. Оптимальная температура роста +37— 38 °С. В сывороточном МПБ растет в виде крупинчатого осадка на дне пробирки (при сохранении прозрачности среды). На сыворо­точном МПА рост стрептококка проявляется в виде сероватых просвечиваю­щихся мелких колоний.

Ферментативные (биохимические) свойства. Патогенные стрептококки биохимически малоактивны. Агалактийный стрептококк не разжижает МПЖ, не редуцирует и не свертывает метиленовое молоко. В лакмусовом молоке происхо­дят свертывание и кислотообразование (через 24—36 часов) с частичным обес­цвечиванием лакмуса. Ферментирует углеводы: лактозу, мальтозу, сахарозу, глюкозу. Для маститного стрептококка характерно изменение финального рН в глюкозном бульоне в сторону кислотности до 4,4—4,7. Сорбит и дульцит не ферментирует. Диагностическим показателем для агалактийного стрептококка является гидролиз гиппурата натрия. Кроме того, для дифференциации агалактийного стрептококка от других стрептококков применяют CAMP (КАМП)-метод, получивший свое название но первым буквам фамилий авторов, австралийских исследователей (Кристи, Аткинс, Мунх-Петерсон). Метод основан на усилении гемолитической активности стрептококка группы В в зоне, близкой к полосе гемолиза стафилококка на кро­вяном агаре; гемолитические, но утратившие или снизившие гемолитическую ак­тивность штаммы агалактийного стрептококка образуют заметную зону гемолиза вблизи стафилококка. Другие виды стрептококков не проявляют гемолиза в усло­виях САМР-пробы. Для постановки САМР-пробы на кровяной агар в чашках Петри бактериологической петлей по диаметру засевают в виде полоски гемоли­тический стафилококк. Отступив на 2—3 мм, перпендикулярно к стафилококку петлей высевают штаммы стрептококков (3—4), на сутки помещают в термостат (+37 °С). Кроме того, идентификацию агалактийного стрептококка можно прово­дить с помощью реакции диффузионной преципитации в агаровом геле, а также методом флуоресцирующих антител. Установлено, что во всех случаях выделения агалактийного стрептококка (или стафилококка), как правило, в пробах молока, отмечаются высокое содержа­ние лейкоцитов, ослабление лизоцимной активности, положительная проба Уайт-сайда (косвенный показатель лейкоцитоза), положительная бромтимоловая проба (проба на щелочность молока реактивными бумажками).

Патогенность определяют биопробой на лабораторных животных: внутрибрюшинно заражают белых мышей, морских свинок.

Возбудитель мыта — Streptococcus equi.

Мыт лошадей – это контагиозное заболевание цельнокопытных животных, главным образом молодых лошадей в возрасте от 6 месяцев до 1—2 лет. Болезнь характеризуется катарально-гнойным воспалением слизистых оболочек верхних дыхательных путей, глотки, подчелюстных лимфоузлов (клинически проявляется образованием абс­цессов, истечением из носа).

Патологический материал. Для бактериологического исследования в лабораторию направляют гной из абсцессов, гнойное носовое истечение, воспалительный экссудат. Учитывают, что в закрытых абсцессах стрептококк должен содержаться в чистом виде, поэтому асептически сделанный прокол абсцесса для взятия экссудата и посева его на питательные среды обеспечивает сразу получение чистой культуры.

Исследование проводят по общей схеме: 1) микроскопия препаратов-мазков из поступившего материала; 2) посев на питательные среды для выделения чистой культуры возбудителя и ее идентификации; 3) биологическая проба на белых мышах и котятах.

Микроскопия. Мазки готовят тонким слоем, особенно из гноя, часть из них окрашивают по Граму, часть — по Романовскому-Гимзе. В мазках из гноя S. equi располагаются длинными цепочками сплюснутых кокков. В препаратах-мазках из бульонной культуры цепочки чаще бывают короткие. В мазках из культур с плотной средой преобладают короткие цепочки и даже в виде диплококков. S. equi окрашивается грамположительно, неподвижен, спор не образует. Величина отдельных кокков 0,4-1 мкм.

Культуральные свойства. Мытный стрептококк требователен к питатель­ным средам: растет с добавлением сыворотки или дефибринированной крови, в среде Кита — Тароцци. В жидких средах растет в виде крупинок на дне и стен­ках пробирки, бульон остается прозрачным. Для выделения чистой культуры производят пластинчатый посев на сывороточно-глюкозный агар. На сывороточно-глюкозном агаре рост проявляется мелкими сли­зистыми колониями, просвечивающимися, как капли росы. Характерно сливание колоний между собой. На свернутой сыворотке образует желтовато-серые стек­ловидные колонии. На кровяном агаре рост в виде мелких колоний с зоной β-гемолиза.

Биохимические свойства. Отличительной особенностью мытного стрепто­кокка является его небольшая биохимическая активность: молоко не свертывает, лакмус и метиленовый синий не редуцирует (не обесцвечивает), не сбраживает лактозу, сорбит, маннит, что позволяет дифференцировать его от других стрепто­кокков. S. equi не растет в присутствии мытного антивируса (фильтрат 20-дневной бульонной культуры мытного стрептококка), в то время как все осталь­ные виды стрептококков растут.

Биопроба: Чувствительны кошки, особенно котята, кролики. Патогенность S. equi проверяют путем подкож­ного или внутрибрюшинного заражения белых мышей или кошек (лучше котят). Эти животные очень чувствительны — у мышей развивается пиемия (3—10 дней), затем наступает гибель. Котята гибнут от подкожного заражения минимальными дозами - одной десятимиллионной (1:10 000000) миллилитра бульон­ной культуры.