Дезинфекция - уничтожение патогенных микроорганизмов в окружающей человека среде. В.И. Вашков

Мы все знаем, что существует огромное множество микроорганизмов, которые могут нанести очень большой вред человеку. Для защиты человека от самых различных инфекций и болезней требуется грамотная дезинфекция. Попытаемся разобраться что такое дезинфекция, какая она бывает, какие способы и методы дезинфекции существуют.

Дезинфекция — это наука, изучающая способы и средства уничтожения возбудителей заразных болезней на различных объектах и в различных субстратах внешней среды.

Дезинфекция подразделяется на два вида: очаговая и профилактическая.

Очаговая дезинфекция - это дезинфекция в инфекционном очаге, которая подразделяется в свою очередь на заключительную и текущую.

Заключительная дезинфекция
Это комплекс мероприятий, осуществляемых с целью обеззараживания очага инфекционного заболевания. Она проводится однократно с использованием средств дезинфекции после удаления источника инфекции из очага: при госпитализации, при выздоровлении, при выписке больного и т.д. За заключительную дезинфекцию ответственны работники дезстанции и медицинские работники

Текущая дезинфекция
Осуществляется с целью уничтожения и предупреждения рассеивания микроорганизмов на путях передачи инфекции. Текущая дезинфекция проводится систематически во всех медицинских учреждениях, инфекционных лечебных учреждениях.

Профилактическая дезинфекция
Осуществляется постоянно при отсутствии инфекционных заболеваний в салонах красоты, СПА-центрах, банях, бассейнах, саунах, спортивных клубах, предприятиях общественного питания, гостиницах, образовательных учреждениях, торговых учреждениях, на промышленных предприятиях.

Существует 5 основных методов дезинфекции:

• Механический — предусматривает удаление заражённого слоя грунта или устройство настилов.
• Физический — обработка ультрафиолетовыми лампами, источниками гамма-излучения, кипячение. Этот метод в основном применяется при кишечных инфекцияx. Кипячение используется для обработки белья, посуды, питьевой воды, игрушек, пищи. Ультрафиолетовое облучение используется для обеззараживания воздуха помещений в лечебных и других учреждениях
• Химический -основной способ, заключается в уничтожении болезнетворных микроорганизмов и разрушении токсинов дезинфицирующими веществами.
• Комбинированный — основан на сочетании нескольких из перечисленных методов, например, влажная уборка с последующим ультрафиолетовым облучением.
• Биологический — основан на антагонистическом действии между различными микроорганизмами, действии средств биологической природы. Применяется на биологических станциях, при очистке сточных вод.

Обязательной дезинфекции должны подвергаться:

• все медицинские инструменты и оборудование;
• инструменты и оборудование для маникюра, педикюра и других косметических процедур;
• поверхности помещений и предметов;
• кожный покров больного (инъекционное и операционное поля) и руки медицинского персонала.

Только тщательная дезинфекция и чистота смогут защитить человека от возможности заразиться огромным спектром заболеваний, которые вызывают вредные бактерии, вирусы и грибы. Самые строгие требования к дезинфекции всегда предъявляются к медицинским учреждениям, так как поток больных людей, которые могут распространять инфекции, в них самый большой. И только тщательная дезинфекция может предотвратить серьезные вспышки заболеваний. Существует еще много общественных мест, в которых риск распространения инфекций велик. Если человек, который болен, например, грибковым заболеванием ног приходит в баню, бассейн, спортивный зал, то он может очень легко передать свою болезнь другим. В кабинетах маникюра и педикюра также повышен риск передачи инфекций через инструменты. Задача персонала состоит в том, чтобы обеспечить безопасность своего заведения и не допустить распространение инфекции. Для этого и нужна дезинфекция. Кроме того, каждый человек думающий о своем здоровье, не должен пренебрегать правилами личной гигиены

В следующей статье мы подробно остановимся на химическом способе дезинфекции. Рассмотрим основные виды дезинфицирующих средств и требования к ним.

Дезинфицирующие средства, содержащие в качестве действующих веществ (ДВ) соединения из группы поверхностно-активных веществ (ПАВ) [1], в частности четвертично-аммониевые соединения (ЧАС), имеют ряд преимуществ: их можно применять в присутствии пациентов (персонала) в лечебно-профилактических учреждениях (ЛПУ) и др.; они не раздражают верхние дыхательные пути, не имеют резкого запаха, не обесцвечивают ткани, не вызывают коррозии металлов. Кроме того, многие из них обладают, наряду с дезинфицирующими свойствами, моющим действием, что позволяет сочетать обеззараживание объектов с удалением загрязнений. В связи с этим дезинфектанты на основе ПАВ наиболее удобны при проведении текущей и профилактической дезинфекции.

Долгое время считалось, что к недостаткам средств из группы ПАВ можно отнести отсутствие способности инактивировать мелкие, не имеющие липидной оболочки РНК-содержащие, так называемые "гидрофильные" вирусы (энтеровирусы, вирусы полиомиелита и др.), вызывать гибель спор, микобактерий туберкулеза, некоторых видов грибов. В связи с этим такие средства были известны, в основном, как бактерициды и только некоторые из них - как слабые вирулициды, эффективные в отношении лишь некоторых "липофильных" вирусов (вирусы гриппа, парагриппа и др.).

Для расширения спектра антимикробной активности при разработке новых средств на основе ПАВ в состав их рецептур стали вводить такие компоненты, как глутаровый альдегид, перекись водорода и др., обуславливающие вирулицидное (Бианол, Аламинол, Пероксимед, ПВК, Септодор-форте и др.), туберкулоцидное и фунгицидное действие.

Учитывая, что для дезинфекции изделий медицинского назначения (ИМН) могут применяться только те средства, которые эффективны в отношении вируса гепатита В, других парентеральных вирусов и ВИЧ, а также необходимость обеззараживания всех ИМН после применения у пациентов, большой спрос и актуальность имеют средства, обладающие вирулицидным действием. В связи со сложившейся в стране ситуацией по туберкулезу не меньшую значимость приобретают средства для профилактики туберкулеза. Широкая распространенность дерматофитий определяет существенную роль фунгицидов в профилактике грибковых инфекций в ЛПУ, гостиницах, общежитиях, банях и др.)

В последние годы для регистрации в России из зарубежных стран все чаше стали поступать средства, содержащие в своих рецептурах ПАВы, предназначенные для дезинфекции при вирусных инфекциях (гепатите В, ВИЧ-инфекции), туберкулезе и грибковых инфекциях. При разработке отечественных средств больше внимания также стало уделяться приданию им вирулицидных, туберкулоцидных и фунгицидных свойств.

Нами проведена оценка спектра антимикробного действия некоторых средств, производимых в России и за рубежом, содержащих ПАВы в качестве действующих (ДВ). Для оценки вирулицидной активности использовали тест-вирус (вирус полиомиелита 1 типа, вакцинный штамм LSc 2ab), являющийся высокорезистентным к действию дезинфицирующих средств из различных химических групп; изучение туберкулоцидной и фунгицидной активности проводили с использованием культур Mycobacterium В5, Candida albicans, Trichophyton gypseum [2].

Перечень средств и спектр их антимикробной активности приведены в таблице.

Таблица
Спектр антимикробного действия некоторых дезинфицирующих средств из группы ПАВ отечественного и зарубежного производства

Наименование средства, фирма-производитель	Действующие вещества	Антимикробное действие
		Вирулицидное		Туберкулоцидное	Фунгцидное
		Инактивация вируса полиомиелита	Разрушение HbsAg
Катамин АБ ОАО "Синтез", Москва	ЧАС	-	не исследовалось	не исследовалось	не исследовалось
ПВК ОАО "Синтез", Москва	ЧАС, Перекись водорода	+	+	+	+
Аламинол ГНЦ "НИОПИК", Москва	ЧАС, глиоксаль	+	+	+	+
Бианол ГНЦ "НИОПИК", Москва	ЧАС, глутаровый альдегид	+	+	+	+
Септодор-форте Дорвет Лтд, Израиль	ЧАС, глутаровый альдегид	+	+	+	+
Септустин АОЗТ "Уралстинол-С", Россия	ЧАС	+	+	+	+
Септаксилин ЗАО "Акс-техно", Россия	ЧАС	+	+	+	+
Дезэффект "Ликва-Тех. Индастриес, Инк", США	ЧАС	+	+	+	+
РИК-Д ПКФ "Фантом", Россия	ЧАС	-	+	не исследовалось	+
Велтолен ЗАО "BEЛT", Оренбург	ЧАС	-	+	+	+
Септабик "Абик", Израиль	ЧАС	-	+	не исследовалось	+
Бромосепт "Абик", Израиль	ЧАС	-	+	+	+

Согласно данным, приведенным в таблице, катамин АБ не способен инактивировать тест-вирус, но в сочетании с перекисью водорода (в виде средства ПВК) композиция приобретает вирулицидное действие. Наличием перекиси водорода обусловлена вирулицидная активность Пероксимеда. Широкий спектр активности Бианола, Аламинола и Септодора-форте объясняется присутствием в рецептурах этих средств альдегидов.

Совершенно непредсказуемым оказалось наличие вирулицидного действия, причем в отношении высокорезистентного вируса - вируса полиомиелита, у таких средств, как Септаксилин, Септустин и Дезэффект (прежнее название Санифект-128, в разработке и исследованиях средства Дезэффект принимали участие З. Гэлб, США, А.В. Ригберг и И.Л. Михно, Украина). Показано, что они вызывают гибель тест-микроорганизмов: Mycobacterium В5, С.albicans и T.gypseum. Кроме того, установлено, что растворы Дезэффекта при температуре 50 о С способны вызывать гибель спор B.cereus. Изучение в лабораторных условиях эффективности обеззараживания тест-объектов из различных материалов (металлов, стекла, резин, пластмасс и др.), контаминированных микобактериями, грибами и вирусами, позволило рекомендовать средства Септаксилин, Септустин и Дезэффект для дезинфекции поверхностей в помещениях, приборов, оборудования, белья, посуды и др. объектов при туберкулезе, вирусных и грибковых инфекциях в ЛПУ.

Исследования, проведенные в НИИ вирусологии им. А.И. Ивановского (Исаева Е.И.) показали, что средства Велтолен, Септабик, Бромосепт и РИК-Д способны разрушать HBsAg. Однако эти средства не вызывали инактивацию тест-вируса (вирус полиомиелита), более устойчивого к воздействию дезинфектантов, чем HBsAg. Установлено, что они способны также вызывать гибель грибов рода Candida и Trichophyton, а Велтолен и Бромосепт, кроме того, активны в отношении Mycobacterium В5 (исследование туберкулоцидных свойств Септабика и РИК-Д не проводилось).

Были изучены дезинфицирующие свойства Велтолена и Бромосепта при обеззараживании тест-поверхностей и изделий медицинского назначения из различных материалов, белья, посуды, предметов ухода за больными, контаминированных бактериями (в том числе микобактериями), вирусами (ВИЧ, HBsAg), грибами (рода Candida, Trichophyton) в зависимости от времени воздействия, концентрации раствора, способа обработки. Разработаны режимы обеззараживания ИМН и других объектов, вошедшие в методические указания по применению этих средств.

Таким образом, получена новая информация о спектре антимикробной активности средств из группы ПАВ, а именно: о способности некоторых из них - Септаксилина, Септустина, Дезэффекта инактивировать даже высокорезистентные к дезинфицирующим средствам мелкие РНК-содержашие вирусы, типичным представителем которых является вирус полиомиелита; о наличии у средств РИК-Д, Велтолен, Септабик, Бромосепт свойства разрушать HBsAg, выявляемого современными методами его индикации; способности вышеназванных средств из группы ПАВ вызывать гибель микобактерий туберкулеза, грибов рода Candida и дерматофитов рода Trichophyton.

Все вышеназванные средства зарегистрированы в России и разрешены МЗ РФ к применению в практике здравоохранения.

Литература

1. В.И. Вашков. "Антимикробные средства и методы дезинфекции при инфекционных заболеваниях", М., 1977.
2. "Методы испытаний дезинфекционных средств для оценки их безопасности и эффективности", Москва, Минздрав РФ, 1996 г.

В противотуберкулезных учреждениях сконцентрированы наиболее эпидемически опасные пациенты – больные туберкулезом легких, которые выделяют в окружающую среду большое количество микобактерий туберкулеза (МБТ): в суточном количестве мокроты больного туберкулезом может находиться свыше 7 млрд МБТ [16]. При отсутствии эффективной вентиляции после выделения из макроорганизма микобактерии в течение нескольких часов могут находиться в воздухе в виде частиц аэрозоля, оседающих затем на поверхности различных объектов, на которых могут накапливаться в значительном количестве, превышающем минимальную дозу заражения [5, 38, 49]. Длительный контакт восприимчивого к этой инфекции человека с объектами (посудой, одеждой, мебелью и другими предметами и поверхностями), загрязненными патогенными микобактериями, может привести к заболеванию туберкулезом [32, 33, 38, 52]. Усугубляет эпидемическую ситуацию высокий уровень распространения в РФ возбудителя туберкулеза с множественной (МЛУ) и широкой лекарственной устойчивостью [41, 48].

Таким образом, в противотуберкулезных учреждениях сотрудники, пациенты и посетители подвергаются риску заражения нозокомиальным туберкулезом [7, 8, 20, 28, 31, 38].

1. Алексеева М. И. Модель кислотоупорного сапрофита для бактериологического контроля эффективности камерной дезинфекции при туберкулезе // Сб. науч. трудов ЦНИИД МЗ СССР по вопросам дезинфекции, дезинсекции, дератизации и стерилизации. - М.: ЦНИИД, 1961. - С. 67-72.

2. Архипова О. П. Непатогенная для человека модель для оценки методов и средств дезинфекции при туберкулезе. - М.: ЦНИИД, 1950. - С. 83-89.

3. Архипова О. П. Сравнительная оценка методов определения действия дезинфекционных средств на туберкулезную палочку. - М.: ЦНИИД, 1949. - С. 99-105.

4. Архипова О. П. Эффективность в практических условиях способов дезинфекции туберкулезной мокроты, предложенных ЦНИДИ и институтом туберкулеза АМН. - М.: ЦНИИД, 1950. - С. 76-82.

5. Благодарный Я. А. Источники туберкулеза и меры профилактики. - Алма-Ата, 1980. - 244 с.

6. Вашков В. И. Антимикробные средства и методы дезинфекции при инфекционных заболеваниях. - М.: Медицина, 2009. - 296 с.

7. Вишневский Б. И., Оттен Т. Ф., Нарвская О. В. и др. Клиническая микробиология // Руководство по легочному и внелегочному туберкулезу / Под. ред. чл.-корр. РАМН проф. Ю. Н. Левашева, проф. Ю. М.Репина. - СПб.: ЭЛБИ, 2006. - С. 95-115.

8. Горина Г. П., Власова Н. А., Марьяндышев А. О. и др. Нозокомиальная инфекция среди больных туберкулезом легких с множественной лекарственной устойчивостью в Архангельской области // Матер. 9-го съезда Российского общества фтизиатров. - М., 2011.

9. Еремеева Н. И., Вахрушева Д. В., Канищев В. В. Роль дезинфекционных мероприятий в системе комплекса мер биологической безопасности противотуберкулезного учреждения // Фтизиатрия и пульмонология. - 2011. - № 2. - С. 156-158.

10. Еремеева Н. И., Вахрушева Д. В., Кравченко М. А. Результаты оценки микобактерицидной активности дезсредств // Туб. - 2011. - № 4. - С. 137-138.

12. Еремеева Н. И., Канищев В. В., Кравченко М. А. и др. Современное состояние проблемы тестирования туберкулоцидных режимов применения дезсредств // Урал. мед. журнал. - 2013. - № 2. - С. 155-160.

13. Еремеева Н. И., Канищев В. В., Кравченко М. А. и др. Экспериментальная оценка устойчивости лекарственно-чувствительных культур Mycobacterium tuberculosis разных генетических кластеров к воздействию дезинфицирующих средств на основе катионных поверхностно-активных веществ // Мед. академ. журнал, приложение. - 2012. - Ноябрь - С. 316-318.

14. Еремеева Н. И., Кравченко М. А., Канищев В. В. и др. Вопросы преодоления устойчивости микобактерий разных видов с дезинфицирующим средством // Дезинфекционное дело. - 2007. - № 3. - С. 35-39.

15. Еремеева Н. И., Кравченко М. А., Канищев В. В. Методика оценки эффективности дезинфицирующих средств, применяемых в противотуберкулезных учреждениях: Усоверш. мед. технология. Разрешена к применению Росздравнадзором, разрешение № 2009/235.

16. Зуева М. Н. Эффективное выделение микобактерий с поверхностей различных материалов: Дис. … канд. мед. наук. - 1996. Инструкции по определению бактерицидных свойств новых дезинфицирующих средств от 6 мая 1968 г. № 739-68.

17. Канищев В. В. Отвечает ли задачам профилактики ВБИ использование в ЛПО дезсредств в режиме, рекомендуемом в отношении бактерий (кроме туберкулеза) // Дезинфекционное дело. - 2011. - № 2. - С. 36-44.

18. Канищев В. В., Еремеева Н. И. Некоторые научные и практические аспекты применения дезинфицирующих средств в практике ЛПО // Поликлиника. - 2013. - № 4 (2). - С. 104-110.

19. Корначев А. С. Особенности эпидемического процесса внутрибольничного туберкулеза и его профилактики: Дис…. д-ра мед. наук. - М., 2006.

20. Корначев А. С., Семина Н. А., Журавлев А. Л. и др. Оценка интенсивности контаминации микобактериями туберкулеза производственной среды различных типов медицинских учреждений // Эпидемиол. и инфекц. болезни. - 2007. - № 2. - С. 52-54.

21. Космодамианский В. Н. Пути и способы заражения туберкулезом. Скрытая инфекция / Многотомное руководство по туберкулезу. - М., 1959. - Т. I. - С. 54-58. Крученок Т. Б. Перспективы развития исследований по механизму действия дезинфицирующих средств // Теория и практика дезинфекции и стерилизации. - Сб. науч. трудов, М.: МНИИВС. - 1983. - С. 8-12.

25. Национальная концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи. Утверждена 06.11.2011 г. Главным государственным санитарным врачом РФ Г. Г. Онищенко.

26. Нозокомиальная туберкулезная инфекция: Матер. науч.-практ. крнференции с международным участием, 14-15 июня 2001 г. - М., 2001. - С. 78.

28. О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в РФ. Приказ № 109 МЗ РФ от 21.03.03.

29. Оттен Т. Ф., Вишневский Б. И., Нарвская О. В. и др. Молекулярно-эпидемиологическое расследование случаев нозокомиальной туберкулезной инфекции // Материалы 9 съезда Российского общества фтизиатров. - М., 2011.

30. Платонов Г. И. Обсемененность объектов микобактериями как критерий оценки эпидемиологической опасности очага туберкулезной инфекции // Матер. Всесоюзной конференции по санитарной микробиологии. - М., 1978. - С. 57.

31. Платонов Г. И., Бобрелова А. Г., Зудина М. А. и др. К вопросу организации бактериологического контроля заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза // Сб. науч. трудов Московского НИИ вакцин и сывороток. - Вып. 27. - М., 1978. - С. 52-55.

35. Система инфекционного контроля в противотуберкулезных учреждениях / Под ред. Л. С. Федоровой. - М.-Тверь: Триада, 2013. - 192 с.

37. Стандарт Европейского комитета по стандартизации prEN 14348: October 2002.

38. Туберкулез в Российской Федерации, 2010 г. Аналитический обзор статистических показателей, используемых в Российской Федерации. - М.: Триада. - 280 с.

39. Умпелева Т. В., Кравченко М. А, Еремеева Н. И. и др. Молекулярно-генетическая характеристика штаммов Mycobacterium tuberculosis, циркулирующих на территории Уральского региона России // Инфекция и иммунитет. - 2013. - Т. 3, № 1. - С. 21-28.

40. Федорова Л. С. Дезинфектологическая профилактика туберкулеза // Материалы международного конгресса. - М., 2006. - С. 183.

41. Федорова Л. С. Направления и перспективы исследований в области дезинфекции // Эпидемиол. и гигиена. - 2012. - № 4. - С. 46-49.

42. Федорова Л. С. Проблемы дезинфекции при нозокомиальной туберкулезной инфекции // Сборник трудов Рос. науч.-практ. конференции. - М., 1998. - С. 67.

44. Федорова Л. С. Туберкулез и дезинфекция // Дезинфекционное дело. - 2007. - № 3. - С. 31-34.

45. Черноусова Л. Н., Пузанов В. А. и др. Лабораторная диагностика туберкулеза. Метод. материалы к проведению цикла тематического усовершенствования. - М.: Р. Валент. - 2012. - 704 с.

46. Чугунихина Н. В. Идентификация, циркуляция и выживаемость МБТ в помещениях фтизиатрических стационаров: Автореф. дис. … канд. мед. наук. - М., 1973. - 18 с.

47. Шандала Г. М. Актуальные вопросы общей дезинфектологии. - М.: Медицина. - 2009. - 112 с.

48. Яблонский П. К. Российская фтизиатрия сегодня - выбор пути развития // Мед. альянс. - 2013. - № 3. - С. 5-24.

49. Яковлев Н. И. Эпидемическая опасность различных очагов туберкулезной инфекции // Пробл. туб. - 1989. - № 4. - С. 3-6.

50. Russell A. D., Furr J. R., Maillard J. Y. Microbial susceptibility and resistance to biocides: an understanding // ASM News. - 1997. - Vol. 63. - P. 481-487.

• There are currently no refbacks.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

Противомикробные свойства и применеие Сульфохлорантина

В. Г. ОВЧИННИКОВ. О. В. ГУДЗЬ. Киевский научно-исследовательский филиал НИИ хлорной промышленности
УДК 5768.61528(048)

Хлор и хлорактивные соединения занимают ведущее место в арсенале дезинфицирующих средств по ассортименту, объему производства и применения (23) в последние десятилетия наряду с традиционными хлорактивными препаратами (хлорная известь, гипохлориты кальция и натрия, монохлорамин Б, соли дихлоризоциануровой кислоты, дихлордиметилгидантоин) применяются разработанные на их основе многокомпонентные полифункциональные средства дезинфекции—дезам, дихлор-1, Сульфохлорантин, хлордезин и др. (24). Использование композиционных препаратов позволяет модифицировать свойства дезинфицирующих средств в заданном направлении: повысить растворимость, стабильность и противомикробную активность, придать им моющие свойства, снизить агрессивность по отношению к обеззараживаемым объектам, уменьшить токсичность (18).
Сопоставление дезинфицирующих свойств средств дезинфекции отечественного производства показало, что новый моюще-дезинфицируюший препарат Сульфохлорантин по активности в отношении вегетативных форм бактерии и вирусов превосходит хлордезин, центральный гипохлорит кальция, калиевую соль дихлоризоциануровой кислоты, монохлорамин Б, хлорную известь, фенол, перекись водорода и формальдегид (19). В настоящей работе систематизированы данные литературы и результаты собственных исследований о дезинфицирующих свойствах и основных областях применения Сульфохлорантина при дезинфекции.
В состав Сульфохлорантина входит 21—23% дихлорантин, 12.4—16.4% 5.5-ди-метилгпдантоина, 5—5,5% триполифосфата натрия, 3.2—3,8% сульфанола, 47—53% натрия хлористого. Он представляет собой светлый сыпучий порошок с умеренным запахом хлора. Стабилен при хранении в сухом виде более 1 года. растворим в воде до 25 г/дм5. В водном растворе медленно теряет активный хлор. В концентрациях, рекомендуемых для практического использования, отличается слабокислой реакцией, близкой к центральной (рН 6,75), обладает моющими свойствами, хорошо эмульгирует жиры, легко смывается с обрабатываемых поверхностей (1).
Препарат имеет широкий спектр противомикробного действия и в концентрациях 0,005—0,05 % вызывает гибель вегетативных форм бактерий, включая антибиотико-устойчивые варианты синегнойной палочки, вульгарного протея и дрожжеподобных грибов, в течение 15—5 мин (7, 40), 0,005—0,1%-ные растворы инактивируют вирусы гриппа, парагриппа, гепатита А и фаги кишечной палочки за 60—30 мин (20, 21). Токсичность Сульфохлорантина не выше токсичности монохлорамина Б
Благодаря высокой активности и широкому спектру противомикробного действия препарат успешно применяют для проведения дезинфекционных мероприятии при наиболее массовых кишечных и капельных инфекции бактериальной и вирусной этиологии, а также для профилактики внутрибольничных инфекции в лечебно профилактических учреждениях различного профиля (39).
О комплексе противоэпидемических мероприятии по борьбе с кишечными инфекциями (дизентерия, колиэнтерит, тифопаратифозные заболевания, вирусный гепатит А и др. Сульфохлорантин применяют для проведения текущей и заключительной дезинфекции в квартирных очагах, инфекционных стационарах и детских учреждениях. По эффективности обеззараживания объектов, имеющих большое значение в механизме передачи бактериальных инфекций (помещения, предметы обстановки, постельное и нательное белье, посуда, игрушки, предметы ухода за больными, санитарно-техническое оборудование и др.), препарат отвечает требованиям, предъявляемым к современным средствам дезинфекции и имеет ряд преимуществ по сравнению с хлорамином и хлорной известью: легко растворяется в воде, стабилен при длительном хранении, обладает моющим эффектом, менее токсичен, не оставляет налета на обрабатываемых поверхностях, не вызывает порчи и изменения окраски различных предметов (30, 37).
Комплексные гигиенические исследования в боксированном отделении детской инфекционной больницы показали, что после проведения текущей дезинфекции 0,5%-ным раствором Сульфохлорантина общая обсемененность объектов снижается в 500—5000 раз. Концентрация активного хлора в воздухе помещений после проведения дезинфекции не превышает ОБУВ (0,5 мг/м3). Отмечена более быстрая десорбция препарата с обеззараживаемого объекта, чем при применении таких традиционных средств дезинфекции, как хлорная известь, хлорамин Б, нейтральный гипохлорит кальция (17).
Сульфохлорантин (порошок) обеззараживает выделения больных кишечными инфекциями (моча, фекалии) в течение 1—2 ч при норме расхода соответственно 0,5 и 150 г/кг. Обладает выраженными дезодорирующими свойствами (26). Для инфекционных отделений, имеющих устройство для обеззараживания сточных вод, разработан термохимический метод обеззараживания посуды из-под выделений (подкладные судна, горшки, мочеприемники) Сульфохлорантином: концентрация—0,1—0,3%, температура—450, экспозиция — 120—30 мин [8].
Препарат высокоэффективен - при обеззараживании объектов в очагах вирусного гепатита. В лабораторных условиях установлено, что 0,1%-ный его раствор вызывает полное обеззараживание белья, посуды без остатков пищи. игрушек, инфицированных вирусом инфекционного гепатита собак в течение 60 мин. При повышении концентрации до 0,2% период обеззараживания этих объектов может быть сокращен до 45 мин (15). Сульфохлорантин успешно прошел практические испытания и рекомендован для проведения дезинфекционных мероприятий в отделениях вирусного гепатита (10] и очагах вирусного гепатита в детских дошкольных учреждениях (31).
В последние годы препарат используется в клинических, биохимических лабораториях и учреждениях службы крови для профилактики гепатита В (42). Донорская кровь и ее дериваты (фибриноген, нативная плазма), загрязняющие лабораторную посуду, оборудование и поверхности рабочих столов, нередко являются причиной заболевания гепатитом В. Обработка 0,5%-ным раствором Сульфохлорантина производственных помещений, лабораторной посуды, флаконов из-под крови, оборудования, спецодежды, загрязненных кровью и ее дериватами, вызывает инактивацию вируса в течение 60 мин.. Защитный эффект препарата проявляется в меньших концентрациях (по содержанию активного хлора), чем при использовании хлордезина и хлорамина (9, 41).
Принципиально важной особенностью препарата является выраженная активность в отношении кислотоустойчивых микроорганизмов. Изучение чувствительности лекарственноустойчивых и лекарственночувствительных культур микобактерий туберкулеза, выделенных у больных туберкулезом, а также лабораторных штаммов человеческого н птичьего типов, позволило установить, что 0,04%-ныи раствор Сульфохлорантина вызывает гибель микроорганизмов в течение 45 мин независимо от лекарственной устойчивости штаммов (35). 1,5%-ныи раствор препарата эффективен при обеззараживании объектов, инфицированных микобактериями туберкулеза, при экспозиции 60—180 мин.. При обеззараживании мокроты период обработки увеличивается до 3—24 ч (34). Сульфохлорантин рекомендован для проведения дезинфекционных мероприятии в квартирных очагах туберкулеза, в противотуберкулезных диспансерах и при перепрофилировании противотуберкулезных учреждений (36).
По данным (6), Сульфохлорантин в концентрации 0,2% вызывает гибель спор антракоида в течение 2 ч. Спороцидный эффект установлен и при обеззараживании объектов, инфицированных спорами, при двукратной обработке поверхностей н расходе препарата в количестве 2 л/м3 (25). Он эффективен против возбудителей особо опасных инфекций, включая пастереллы чумы (4). Всестороннее изучение его дезинфицирующих свойств в соответствии с целевым назначением позволило разработать режимы обеззараживания различных объектов внешней среды при чуме и рекомендовать для использования в практической работе противочумных учреждений (2, 5). Сульфохлорантин успешно прошел практические испытания для дезинфекции объектов при бруцеллезе (16).
На основании экспериментальных исследований обнаружено, что Сульфохлорантин обладает выраженными противогрибковыми свойствами Это обусловило его применение для обеззараживания объектов, инфицированных дерматофитами. По данным (33), 0,05%-ный раствор препарата вызывает гибель гипсового и красного трихофитона на батистовых тест-объектах в течение 5—20 мин, 1%-ный раствор обеззараживает патологический материал (кожные чешуйки, пораженные участки ногтей), полученный от больных микозами стоп, в течение 45 мин.. При обеззараживании объектов (белье, поверхности, ванны), инфицированных дерматофитами, Сульфохлорантин по активности превосходит дихлор-1, хлордезин, ниртан (32). При изучении механизма противогрибкового действия препарата с использованием электронной микроскопии установлено, что в субфунгицидных концентрациях он вызывает фрагментацию цитоплазматической мембраны и вакуолизацию цитоплазмы в клетках грибов При повышении концентраций до фунгицидных появляются деструктивные изменения органелл, несовместимые с жизнедеятельностью клетки: лизис рибосом, вакуолизация ядер, кариолизис, фрагментация элементов пластинчатого комплекса (3).
Применение Сульфохлорантина в комплексе дезинфекционных и стерилизационных мероприятии для дезинфекции внутрибольничных инфекций является перспективным. Учитывая профиль лечебного учреждения и чувствительность возбудителей нозокомиальных инфекций к препарату, разработали и внедрили в практику здравоохранения режимы обеззараживания помещений, мебели, а также предметов ухода за больными, обсемененных бактериями, вирусами и грибами (27).
В родовспомогательных учреждениях Сульфохлорантин рекомендуется для обеззараживания кувезов, используемых при выхаживании недоношенных детей. Двукратная обработка внутренней поверхности камеры 0,2%-ным раствором препарата (0,026% активного хлора) с последующим протиранием стерильной водой и сухой салфеткой, облучение УФ-лучами в течение 2 ч обеспечивает эффективное обеззараживание. Такой режим дезинфекции безопасен для ребенка, поскольку через 2 ч после обработки остаточные количества хлора в пробах воздуха не определялись (12, 22)
На базе ортопедических отделении лечебных учреждений отработаны режимы обеззараживания изделий лечебного протезирования из полимерных материалов (тины, голово-кистедержатели, корсеты, аппараты на конечности и др.) посредством погружения или двукратного протирания 0,1—0,2%-ным раствором Сульфохлорантина (37).
Разработаны режимы обеззараживания изделий из химических волокон (полимерные полиэфирные ацетатные, триацетатные, вискоза), инфицированных возбудителями кишечных и капельных инфекций, в том числе туберкулеза, посредством погружения в раствор Сульфохлорантина. В очагах кишечных инфекций для обеззараживания изделий из химических волокон, не загрязненных выделениями, используют 0,1%-ный его раствор при экспозиции 40 мин, для обеззараживания изделий, загрязненных выделениями—0,2%-ный раствор при экспозиции 60 мин.. В очагах капельной инфекции применяют растворы Сульфохлорантина в таких же концентрациях постепенно при экспозиции 40 и 30 мин, при туберкулезе—1,5%-ный раствор при экспозиции 90 мин. Расход растворов Сульфохлорантина для обеззараживания изделии из лавсана капрона, ацетата, триацетата при кишечных и капельных инфекциях составляет 4 л/кг, в очагах туберкулеза — 5 л/кг. Чтобы обеззаразить изделия из вискозы требуется 8 л/кг раствора Сульфохлорантина (13).
Одной из новых сфер применения Сульфохлорантина является дезинфекция оборудования и подсобных помещении плавательных бассейнов 0,2%-ныи раствор препарата обеспечивает надежное обеззараживание различных предметов, рабочих поверхностен оборудования из железа и дерева, покрытых масляной краской, линолеума, резины дерматина при экспозиции 30 мин 3%-ный раствор Сульфохлорантина рекомендован в качестве моюще-дезинфицирующего средства для обеззараживания санитарии технического оборудования, кафельных и эмалированных поверхностей в лечебно профилактических, коммунальных учреждениях и в домашних условиях. Препарат не только обеспечивает надежное обеззараживание ванн и раковин, инфицированных вегетативными формами бактерий и грибами, но и придает им блеск (28, 29).
Изучена эффективность Сульфохлорантина при обеззараживании и консервации малогабаритных водоочистных установок 0,2%-ный раствор полностью в течение 1 ч обеззараживает фильтры с поролоном, применяемые в установках. Бактерицидный эффект стабилен в течение 1 сут.. Кроме того, раствором Сульфохлорантина производят дезинфекцию помещений на речных судах (каюты, коридоры, рубки, амбулатории, камбузы, душевые и туалетные помещения) и плавучих очистных станциях, собирающих фановые воды. Он имеет ряд преимуществ по сравнению с хлорамином благодаря наличию моющих свойств, более эффективен при обеззараживании поверхностей судовых помещений, загрязненных органическими веществами (камбуз, туалеты), требуется значительно меньшее (в 5—10 раз) количество препарата, что немаловажно на судах в связи с определенными трудностями хранения больших запасов дезинфицирующих средств (11).
Таким образом, широкое применение Сульфохлорантина для дезинфекции позволит повысить эффективность противоэпидемических мероприятий при различных нозологических формах инфекционных болезней и внутрибольничных инфекциях. По нашему мнению, возможности применения препарата в профилактических целях не исчерпаны Представляется целесообразным использование Сульфохлорантина на предприятиях молочной и пищевой промышленности для санитарной обработки технологического оборудования, тары и инвентаря, предназначенного для контакта с пищевыми продуктами, а также для проведения дезинфекционных мероприятии на транспорте