Ротовирусная инфекция в челнах

Энтеровирусные инфекции - это группа острых инфекционных болезней, вызываемых кишечными вирусами (энтеровирусами), характеризующаяся лихорадкой и полиморфизмом клинических симптомов.

Энтеровирусы(их более 80 типов) довольно быстро погибают при температурах свыше 50°С (при 60°С - за 6-8 мин., при 100°С - мгновенно), быстро разрушаются под воздействием хлорсодержащих препаратов, ультрафиолетового облучения, при высушивании, кипячении. Тем не менее, при температуре 37°С вирусы могут сохранять жизнеспособность в течение 50-65 дней, длительно сохраняются в воде. В замороженном состоянии активность энтеровирусов сохраняется в течение многих лет, при хранении в обычном холодильнике (+4° - +6°С) - в течение нескольких недель, а при комнатной температуре - на протяжении нескольких дней. Они выдерживают многократное замораживание и оттаивание без потери активности.

Резервуаром и источником инфекции является больной человек или инфицированный бессимптомный носитель вируса.

Наиболее интенсивное выделение возбудителя происходит в первые дни болезни. Доказана высокая контагиозность (заразность) энтеровирусов.

Вирус обнаруживают в крови, моче, носоглотке и фекалиях за несколько дней до появления клинических симптомов; инфицированные лица наиболее опасны для окружающих в ранние периоды инфекции, когда возбудитель выделяется из организма в наибольших концентрациях.

Инкубационный (скрытый) период энтеровирусной инфекции варьируется от 1 - х до 10 дней.

Источником инфекции является только человек. Инфекция передается воздушно-капельным (от больных) и фекально-оральным (от вирусоносителей) путем. Заболевание распространено повсеместно. В странах умеренного климата характерна сезонность с повышением заболеваемости в конце лета и в начале осени. Заболевают преимущественно дети и лица молодого возраста. Заболевания наблюдаются в виде спорадических случаев, локальных вспышек (чаще в детских коллективах) и в виде крупных эпидемий, поражающих население ряда стран.

Причиной формирования локальных очагов с групповой заболеваемостью может являться занос инфекции в учреждение, на территорию и возможность ее распространения в условиях несоблюдения требований санитарного законодательства как по условиям размещения, так и по состоянию систем водопользования и организации питания.

Факторами передачи инфекции служат вода, овощи, контаминированные (загрязненные) энтеровирусами в результате применения необезвреженных сточных вод при их поливке. Также вирус может передаваться через грязные руки, игрушки и другие объекты внешней среды.

Эпидемиологическую значимость представляет вода открытых водоемов, загрязненная сточными водами, как в качестве источников питьевого водоснабжения, так и используемая в качестве рекреационных зон для купания населения.

Человек, в организм которого проник энтеровирус, чаще становится носителем, или переносит заболевание в легкой форме. Около 85% случаев заболеваний протекает бессимптомно, в 12-14% диагностируются легкие формы заболевания, и только 1-3% имеют тяжелое течение. Особую опасность энтеровирусные инфекции представляют у иммунодефицитных лиц.

Способность энтеровирусов воздействовать на многие органы человека вызывает большое разнообразие клинических форм инфекции: могут поражаться практически все органы и ткани организма: нервная, сердечно-сосудистая системы, желудочно-кишечный, респираторный тракт, а также почки, глаза, мышцы кожи, слизистую полости рта, печень, эндокринные органы. Одним из наиболее серьезных и нередко регистрируемых форм энтеровирусной инфекции является серозный менингит, характеризующийся сильной головной болью, повышением температуры до 38-39°С, болями в затылочных мышцах, светобоязнью, рвотой.

Методы специфической профилактики (вакцинация) против энтеровирусных инфекций не разработаны. Однако одним из методов борьбы с энтеровирусными инфекциями является вакцинация против полиомиелита, так как вакцинный штамм вируса обладает подавляющим действием на энтеровирус. Поэтому следует обязательно прививаться в рамках национального календаря прививок, в который включена иммунизация против полиомиелита.

Меры неспецифической профилактики энтеровирусной инфекции - 5 простых правил профилактики кишечных инфекций:

1. для питья использовать только кипяченую или бутилированную воду;

2. мыть руки с мылом перед каждым приемом пищи и после каждого посещения туалета, строго соблюдать правила личной и общественной гигиены;

3. перед употреблением фруктов, овощей, их необходимо тщательно мыть с применением щетки и последующим ополаскиванием кипятком;

4. купаться только в официально разрешенных местах, при купании стараться не заглатывать воду;

5. не приобретать продукты у частных лиц, в неустановленных для торговли местах.

При первых признаках заболевания необходимо немедленно обращаться за медицинской помощью, не заниматься самолечением.

ПН	ВТ	СР	ЧТ	ПТ	СБ	ВС
-	-	-	-	-	-	-

Прививки детям и взрослым под контролем врача педиатра и терапевта.

Запись на прививки в Набережных Челнах по телефону 8(8552)91-31-32

Перед прививкой обязательный бесплатный осмотр врача.

1. Пентаксим, пр-во Франция

Адсорбированная вакцина для профилактики дифтерии, столбняка, коклюша (бесклеточный компонент) и полиомиелита, и конъюгированная вакцина для профилактики гемофильной инфекции типа В;
1 флакон с лиофилизатом и 1 шприц, содержащий 0,5мл суспензии для инъекций;
Прививка у детей, начиная с 3-месячного возраста;
Первичный курс: 3 инъекции по 0,5мл с интервалом 1,5 месяца;
Ревакцинацию осуществляют введением 1 дозы в возрасте 18 мес.

2. Инфанрикс Гекса, пр-во Бельгия

Вакцина для профилактики дифтерии, столбняка, коклюша, гепатита В, полиомиелита и заболеваний, вызванных Haemophilus influenzae типа b
Первичная и дополнительная вакцинация детей против дифтерии, столбняка, коклюша, гепатита В, полиомиелита и менингита, вызванного Haemophilus influenzae типа b.
Прививка у детей, начиная с 3-месячного возраста;
Первичный курс: 3 инъекции по 0,5мл с интервалом 1,5 месяца;
По рекомендации врача могут применяться другие схемы трехдозовой и двухдозовой первичной вакцинации.
Необходимо соблюдать интервал между дозами не менее 1 мес.
Ревакцинация проводится однократно в 18 месяцев жизни;
Инфанрикс ® Гекса следует вводить глубоко в/м.

3. ММP-2, (краснуха, корь, паротит) пр-во США, аналог Приорикс

4. Рота Тек (ротавирус), пр-во США

·Вакцина для профилактики ротавирусной инфекции, пентавалентная, живая;
·Р-р для приема внутрь;
·Иммунизация детей в возрасте от 6 до 32 недель с целью профилактики гастроэнтерита, вызываемого ротавирусами серотипов G1.G2.G3.G4 и серотипов G, содержащих Р1А (8).
Курс вакцинации состоит из трех доз вакцины.

5. Превенар-13, пр-во Россия

Вакцина Пневмококковая полисахаридная конъюгированная адсорбированная, тринадцативалентная;
Профилактика заболеваний, вызываемых Streptococcusneumoniaсеротипов 1,3,4,5,6А,6В,7F,9V,14,18C,19A,19Fи 23F(включая бактериемию, сепсис, менингит, пневмонию и острый средний отит) у детей в возрасте от 2 мес. до 5 лет;
Далее по схеме в зависимости от возраста
Взрослым старше 50 лет вводят однократно, можно вводить одновременно с тривалентной инактивированной гриппозной вакциной.

6. Пневмовакс 23, пр-во США

Пневмококковая полисахаридная вакцина;
Плановая вакцинация лиц старше 50 лет;
Взрослые и дети старше 2 лет с хроническими сердечно-сосудистыми заболеваниями, хроническими заболеваниями легких, сахарным диабетом, хроническими заболеваниями печени взрослые и дети старше 2 лет со сниженным иммунитетом;
Вводится внутримышечно или подкожно в дельтовидную мышцу плеча или в среднюю треть передне – боковой части бедра;
Ревакцинация менее чем через три года не рекомендуется

7. Синфлорикс, пр-во Бельгия

Вакцина 10-валентная пневмококковая полисахаридная, конъюгированная с D-протеином нетипируемой Haemophilus influenzae, столбнячным и дифтерийным анатоксинами, адсорбированная)
Суспензия для в/м введения;
Применяется у детей в возрасте от 6 недель до 5 лет с целью профилактики инвазивных заболеваний (включая сепсис, менингит, пневмонию, бактериемию) и острого отита среднего уха, вызываемых серотипами 1, 4, 5, 6В, 7F, 9V, 14, 18С, 19 Fи 23 FStreptococcusneumonia.
Разовая доза – 0,5 мл, далее по схеме в зависимости от возраста.

Плановая профилактика ветряной оспы с 12 месяцев, в первую очередь у лиц, отнесенных к группам высокого риска, не болевших и не привитых ранее;
Экстренная профилактика у лиц, не болевших и не привитых ранее, находившихся в тесном контакте с больными ветряной оспой;
Плановая профилактика: 1 дозой (0,5 мл) двукратно;

РОСПОТРЕБНАДЗОР по РТ

Ротавирусная инфекция. Вопросы-ответы.

1.Что такое ротавирусная инфекция?

Ротавирусная инфекция – острое инфекционное заболевание, характеризующе-еся поражением желудочно-кишечного тракта человека, общей интоксикацией, не-редко - наличием респираторного (катарального) синдрома в начальном периоде бо-лезни.

2. Как передается ротавирусная инфекция?

Основной путь передачи ротавирусов – контактно-бытовой, заражение проис-ходит через грязные руки и предметы обихода. Возможен водный путь передачи ин-фекции, заражение, особенно у детей, может происходить при употреблении некипя-ченой воды. Кроме этого, ротавирусы, подобно вирусам гриппа, распространяются в окружающую среду и капельным способом (при чихании).

3. Как быстро проявляет себя ротавирусная инфекция?

Инкубационный период заболевания может длиться от 1 до 7 дней. При этом больной является разносчиком инфекции и остаётся заразным для окружающих с са-мого первого дня и до момента полного выздоровления.

Заболевание, как правило, начинается остро с повышения температуры тела до 39°С, озноба, слабости. Затем присоединяются боли в животе, тошнота, рвота, жид-кий стул. Рвота – основной клинический симптом болезни. Она может повторяться до нескольких раз в день. Заболеванию ротавирусной инфекцией могут предшествовать насморк, боли в горле, кашель.

4. Кто заболевает чаще других?

Подвержены ротавирусной инфекции люди любого возраста, между тем, чаще всего отмечается заболеваемость среди детей от полугода до трех лет.

5. Чем сопровождается ротавирусная инфекция у детей?

У детей заболевание ярко выражено уже с первых дней его появления. Симп-томы, которыми сопровождается ротавирусная инфекция: рвота, диарея, изменение цвета и консистенции стула. В первый день он жидкий и приобретает жёлтый цвет, а на второй и третий становится глинообразным и серо-жёлтым. Кроме этого, у детей пропадает аппетит, они становятся вялыми и сонливыми. Может покраснеть горло, появиться насморк. Возможно появление боли во время глотания. Повышенная тем-пература при ротавирусной инфекции также является очень распространённым симп-томом. Она может подниматься вплоть до 39 градусов, а сбить её довольно пробле-матично. Совсем маленькие дети, которые ещё не могут объяснить, что у них болит, становятся очень раздражительными и плаксивыми. Отдельным симптомом у таких малышей можно выделить урчание в животе.

6. Можно ли лечить ротавирусную инфекцию дома без назначений и ре-цепта врача?

При появлении первых признаков заболевания нельзя заниматься самолечени-ем, необходимо обратиться за медицинской помощью, т.е. вызвать на дом врача из поликлиники по месту жительства или, в случае тяжелого состояния, бригаду скорой медицинской помощи и следовать их рекомендациям, до прихода врача свести до минимума контакты с родственниками и другими людьми.

7. Если ребенок переболел, как его допускают к посещению детского сада?

Лица декретированной категории (которым относятся дети, посещающие дет-ские сады), переболевшие ротавирусной инфекцией, допускаются в детский сад на основании справки о выздоровлении, выданной медицинской организацией и при наличии отрицательного результата лабораторного обследования.

8. Как предотвратить заболевание ротавирусной инфекцией?

Основными мерами профилактики заболевания являются:

- чистота рук, мытье их с мылом перед приемом пищи, после прогулок, посе-щения туалета, общественных мест, автотранспорта;

- ежедневные влажные уборки с использованием моющих и дезинфицирующих средств;

- ежедневное мытье детских игрушек;

- не допускать контакта больного ребёнка со здоровыми детьми минимум в те-чение 7 дней от начала заболевания. Ухаживать за больными в первые дни заболева-ния, надевая марлевую маску, соблюдая правила личной гигиены;

- при заболевании ребенка даже в легкой форме не следует отправлять его в детский сад или школу, это опасно для других детей, контактирующих с больным

- использование для питья кипяченой или бутилированной воды;

- тщательное мытье перед едой под проточной водой фруктов и овощей, опо-ласкивание кипяченой, особенно, если они предназначены для детей;

- соблюдение условий и сроков хранения продуктов питания в холодильнике;

- при водных процедурах и купании в бассейне не заглатывать воду.

9. Существует ли прививка от заболевания ротавирусной инфекцией?

Да вакцины существуют и широко применяются. Проведение вакцинации за последние годы позволило снизить практически вдвое распространенность этой ин-фекции во всем мире. Вакцинация снижает риск возникновения тяжелых ротавирус-ных заболеваний почти на 90%, а от инфекции легкой и средней степени тяжести способна предохранить на 75-85%. Также установлено, что после прививки от рота-вирусной инфекции более чем на 40% уменьшается частота возникновения диареи любой этиологии.

Вакцинация против ротавируса не входит в число обязательных, однако необ-ходимость в такой прививке может появиться у любого ребенка. При этом вакцина не вызывает осложнений, поскольку она оральная. Ее можно вводить даже недоношен-ным младенцам и малюткам с иммунодефицитом. Проведение вакцинации не требует изменения питания ребенка, он может получать привычную пищу. Прививать можно одновременно с прививками от других инфекций, в т. ч. с прививкой от гепатита, по-лиомиелита, АКДС.

Номенклатура МЗРФ (Приказ №804н): A26.19.089.000.01 "Иммунохроматографическое экспресс-исследование кала на ротавирус и аденовирус"

Срок выполнения (в лаборатории): 2 р.д. *

Описание

Иммунологический метод диагностики вирусных кишечных инфекций, вызванных ротавирусами и аденовирусами. Комплексная иммунодиагностика (одновременное выявление в исследуемом материале ротавирусов и аденовирусов) позволяет поставить быстрый и точный этиологический диагноз заболевания, назначить адекватную терапию и решить вопрос о дальнейшем распространении инфекции.

Ротавирусы — одна из наиболее частых причин диареи у детей. Для заболевания свойственно острое начало, умеренно выраженные симптомы гастроэнтерита или энтерита, частое сочетание симптомов кишечной инфекции с симптомами поражения верхних дыхательных путей.

Аденовирусная инфекция вызывается аденовирусами (около 80 разновидностей) и характеризуется поражением кишечника (диарея) и верхних дыхательных путей (ринит, конъюнктивит, фарингит). Источником инфекции является больной или здоровый вирусоноситель. Инфекция передается воздушно-капельным путем, например, при чихании или кашле или фекально-оральным путем (через грязные руки, предметы обихода). Наиболее восприимчивы к ней дети в возрасте от 6 месяцев до 5 лет. Эпидемические вспышки заболевания регистрируют на протяжении всего года, особенно часто зимой (прежде всего – в организованных детских коллективах).

Показания к назначению

дифференциальная диагностика вирусной этиологии кишечной инфекции;
обследование контактных с больным ротавирусной/аденовирусной инфекцией;
оценка эффективности лечения заболевания;
обследование дикретированных групп населения (по требованию эпидемиолога).

Подготовка к исследованию

Кал собирается самостоятельно. В судно или на дно унитаза помещают стерильную бумагу (или проглаженный лист) либо одноразовую пластиковую тарелку. Испражнения собирают сразу после дефекации специальной ложечкой, вмонтированной в крышку пластикового контейнера в объеме 1-2 г. Исследованию подлежит средняя порция испражнений. Избегать попадания мочи и кусочков не переваренной пищи. Нельзя производить сбор кала с памперсов. У грудных детей материал собирать со стерильной пеленки или предварительно проглаженных ползунков. В случае сбора жидкого кала его можно собрать, подстелив под малыша клеенку.

При невозможности опорожнить кишечник в утренние часы, сбор материала производится вечером. Для получения достоверного результата материал для исследования берется до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения, но не ранее двух недель после ее окончания.

Интерпретация результатов/Информация для специалистов

Предшествующая антибактериальная терапия может привести к ложноотрицательному результату.

Интерпретация результатов:

Повышение референсных значений:
Наличие антигенов ротавирусов/аденовирусов свидетельствует об этиологическом факторе выделенного возбудителя в клинической картине.

Понижение референсных значений:
Отсутствие антигенов ротавирусов/аденовирусов – норма.

Где сдать анализ?

Адреса медицинских центров, в которых можно заказать исследование, уточняйте по телефону 8-800-100-363-0
Все медицинские центры СИТИЛАБ в г. Казань >>

Код	Наименование	Срок	Цена
21-20-002	АСТ (аспартатаминотрансфераза)	от 1 р.д.	150.00 р.
23-12-001	Глюкоза	от 1 р.д.	150.00 р.
32-20-012	Хорионический гонадотропин (ХГЧ)	от 1 р.д.	360.00 р.
49-84-103	Аг простейших (лямблии, амёбы, криптоспоридии) в кале	от 2 р.д.	1400.00 р.
84-84-003	Общий анализ кала (копрограмма)	от 1 р.д.	350.00 р.

* На сайте указан максимально возможный срок выполнения исследования. Он отражает время выполнения исследования в лаборатории и не включает время на доставку биоматериала до лаборатории.
Приведенная информация носит справочный характер и не является публичной офертой. Для получения актуальной информации обратитесь в медицинский центр Исполнителя или call-центр.

Полный текст:

В обзорной статье представлены современные сведения по этиологии, эпидемиологии, клинических проявлениях парвовирус-ной инфекции у детей. Рассмотрены вопросы использования лабораторных методов исследования, лечения и профилактики инфекции.

Анохин Владимир Алексеевич - доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой детских инфекций КГМУ, главный детский инфекционист МЗ РТ.

Сабитова Альфия Махмутовна - кандидат медицинских наук, ассистент кафедры детских инфекций КГМУ.

Аглямова Татьяна Александровна - врач-инфекционист, заместитель главного врача по медицинской части.

Минаева Елена Юрьевна - врач-инфекционист, заведующая отделением нейроинфекций.

Марченкова Нина Александровна - врач-инфекционист, ординатор отделениянейроинфекций.

Князева Оксана Юрьевна - врач-лаборант, заведующая лабораторией, Набережночелнинская инфекционная больница

1. Serjeant G.R., Topley J.M., Mason K., Serjeant B.E., Pattison J.R., Jones S.E., Mohamed R. Outbreak of aplastic crises in sickle cell anaemia associated with parvovirus-like agent. Lancet. 1981: 595-597.

2. Anderson M.J., Jones S.E., Fisher-Hoch S.P., Lewis E., Hall S.M., Bartlett C.L.R., Cohen BJ., Mortimer P.P., Pereira M.S. Human parvovirus, the cause of erithema infectiosum (fifth disease). Lancet. 1983; 321: 1378.

3. Cossart Y.E., Field A.M., Cаnt B., Widdows D. Parvovius-like particles in human sera. Lancet. 1975; 1 (7898): 72-73.

4. Rationalization and extension of the taxonomy of the family Parvo-viridae. ICTVon-line. Code assigned: 2013.001a-aaaV: 23-24.

5. Huschen J.M., Mihneva Z., Mentis A.F., Schneider F., Aboudy Y, Grossman Z., Rudich H., Kasymbekova K., Sarv I., Nedeljkovic J., Tahita M.C., Tarnagda Z., Ouedraogo J.-B., Gerasimova A.G., Moskaleva T.N., Tikhonova N.T., Chitadze N., Forbi J.C., Faneye A.O., Otegbayo J.A., Charpentier E., Muller C.P. Phylogenetic analysis of human parvovirus B19 sequences from eleven different countries confirms the predominance of genotype 1 and suggests the spread of genotype 3b. J. Clin. Microbiol. 2009; 47(11): 3735-3738.

6. Schneider B., H ne A., Tolba R.H., Fischer Y.-P., Blmel J. Eis-H binger A.M. Simultaneous persistence of multiple genome variants of human parvovirus B19. J. Gen. Virol. 2008; 89: 164-176.

7. Toan N.L., Duechting A., Kremsner P.G., Song L.H., Ebinger M., Ab-erle S., Binh V.Q., Duy D.N., Torresi J., Kandolf R., Bock C.-Th. Phylogenetic analysis of human parvovirus B19, indicating two subgroups of genotype 1 in Vietnamese patients. J. Gen. Virol. 2006; 87:. 2941-2949.

8. Nguyen QT, Wong S, Heegaard ED, Brown KE. Identification and characterization of a second novel human erythrovirus variant, A6. Virology. 2002; 301:374.

9. Servant A, Laperche S, Lallemand F, et al. Genetic diversity within human erythroviruses: identification of three genotypes. J Virol. 2002; 76:9124.

10. Parsyan A, Szmaragd C, Allain JP, Candotti D. Identification and genetic diversity of two human parvovirus B19 genotype 3 subtypes. J Gen Virol. 2007; 88:428.

11. Лаврентьева И.Н., Антипова А.Ю. Парвовирус В19 человека: характеристика возбудителя, распространение и диагностика обусловленной им инфекции. Инфекция и иммунитет. 2013; 3(4): 311-322.

12. Mortimer P.P. , Humphries R.K., Moore J.G., Purcell R.H., Young N.S. A human parvovirus-like virus inhibits haematopoietic colony formation in vitro. Nature. 1983; 302:426.

13. Brown K.E., Anderson S.M., Young N.S. Erythrocyte P antigen: cellular receptor for B19 parvovirus. Science. 1993; 262:1 14.

14. Brown K.E., Hibbs J.R., Gallinella G., Anderson S.M., Lehman E.D., McCarthy P., Young N.S. Resistance to parvovirus B19 infection due to lack of virus receptor (erythrocyte P antigen). N Engl J Med. 1994; 330:1192.

15. Weigel-Kelley K.A., Yoder M.C., Srivastava A. Alpha5beta1 in-tegrin as a cellular coreceptor for human parvovirus B19: requirement of functional activation of beta 1 integrin for viral entry. Blood. 2003; 102:3927.

16. Munakata Y., Saito-Ito T., Kumura-Ishii K., Huang J, Kodera T, Ishii T., Hirabayashi Y., Koyanagi Y., Sasaki T. Ku80 autoantigen as a cellular coreceptor for human parvovirus B19 infection. Blood. 2005; 106: 3449.

17. Yamashita K., Matsunaga Y., Taylor-Wiedeman J., Yamazaki S. A significant age shift of the human parvovirus B1 9 antibody prevalence among young adults in Japan observed in a decade. Jpn J Med SciBiol. 1992; 45:49.

18. Kerr S., O'Keeffe G., Kilty C., Doyle S. Undenatured parvovirus B19 antigens are essential for the accurate detection of parvovirus B19 IgG. J Med Virol. 1999; 57:179.

19. Anderson MJ., Higgins P.G., Davis L.R., Willman J.S., Jones S.E., Kidd I.M., Pattison J.R., Tyrrell D.A. Experimental parvoviral infection in humans. J Infect Dis. 1985; 152:257.

20. Тихонова Н.Т., Герасимова А.Г., Москалева Т.Н., Цвиркун О.В., Чава О.О. Оценка распространения парвовирусной инфекции в Москве: Информационное письмо № 11. М.: Департамент здравоохранения Правительства Москвы, 2004:11.

21. Mossong J., Hens N., Friederichs V, Davidkin I., Broman M., Litwin-ska B., Siennicka J., Trzcinska A., Van Damme P., Beutels P., Vyse A., Shkedy Z., Aerts M., Massari M., Gabutti G. Parvovirus B19 infection in the European countries: seroepidemiology, force of infection, and maternal risk of infection. Epidemiol. Infect. 2008; 1 36(8): 1059-1068.

22. Cartter M.L., Farley T.A., Rosengren S., Quinn D.L., Gillespie S.M., Gary G.W., Hadler J.L. Occupational risk factors for infection with parvovirus B19 among pregnant women. J Infect Dis. 1991; 163:282.

23. Gay NJ., Hesketh L.M., Cohen B.J., Rush M, Bates C., Morgan-Capner P., Miller E. Age specific antibody prevalence to parvovirus B19: how many women are infected in pregnancy? Commun Dis Rep CDR Rev 1994; 4:R104.

24. Gratac E., Torres P.J., Vidal J., Antoln E., Costa J., Jimnez de Anta M.T., Cararach V, Alonso P.L., Fortuny A. The incidence of human parvovirus B19 infection during pregnancy and its impact on perinatal outcome. J. Infect. Dis. 1995; 171: 1360-1363.

25. Harger J.H., Adler S.P., Koch W.C., Harger G.F. Prospective evaluation of 618 pregnant women exposed to parvovirus B19: risks and symptoms. Obstet. Gynecol. 1998; 91: 41 3-420.

26. Kleinman S.H., Glynn S.A., Lee T.H., Tobler L., Montalvo L., Todd D., Kiss J.E., Shyamala V, Busch M.P. Prevalence and quantitation of parvovirus B19 DNA levels in blood donors with a sensitive polymerase chain reaction screening assay. Transfusion. 2007; 47(10):1756.

27. Kleinman SH, Glynn SA, Lee TH, Tobler LH, Schlumpf KS, Todd DS, Qiao H, Yu MY, Busch MP A linked donor-recipient study to evaluate parvovirus B19 transmission by blood component transfusion. Blood. 2009; 114(17):3677.

29. Schwarz TF, Wiersbitzky S, Pambor M. Case report: detection of parvovirus B19 in a skin biopsy of a patient with erythema infectio-sum. J Med Virol. 1994;43(2):171.

30. Takahashi Y., Murai C., Shibata S., Munakata Y., Ishii T., Ishii K., Saitoh T., Sawai T., Sugamura K., Sasaki T. Human parvovirus B19 as a causative agent for rheumatoid arthritis. Proc Natl Acad Sci U S A.1998; 5(14):8227.

31. Mossong J., Hens N., Friederichs V., Davidkin I., Broman M., Litwinska B., Siennicka J., Trzcinska A., Van Damme P., Beutels P., Vyse A., Shkedy Z., Aerts M., Massari M., Gabutti G. Parvovirus B19 infection in the European countries: seroepidemiology,force of infection, and maternal risk of infection. Epidemiol. Infect.-2008; 136(8):1059-1068.

32. Матвеев В.А., Прощаева Н.В., Самойлович Е.О., Ермолович М.А. Клинико-лабораторная характеристика В19 парвовирус-ной инфекции. Инфекционные болезни. 2008; 6(3): 33-37.

33. Bailey J.M. Parvovirus B19 presenting with severe sepsis in a previously healthy 25-year-old female . J. Am. Board Fam. Med. 2006; 19(3): 317-319.

34. Young N.S., Brown K.E. Mechanisms of disease: Parvovirus. N. Engl. J. Med. 2004; 350(6): 586-597.

35. Waldman M., Kopp J.B. Parvovirus B19 and the kidney. Clin J Am Soc Nephrol. 2007; 2 Suppl 1 :S47.

36. Lindblom A, Isa A, Norbeck O, Wolf S., Johansson Bo, Broliden K., Tolfvenstam T. Slow clearance of human parvovirus B19 viremia following acute infection. Clin. Infect. Dis. 2005; 41:1201. DOI: 10.1086/444503.

38. Boeck K., Mempel M., Schmidt T., Abeck D. Gianotti-Crosti syndrome: clinical, serologic, and therapeutic data from nine children. Cutis. 1998; 62:271.

40. Oguz F, Akdeniz C, Unuvar E, Kucukbasmaci O., Sidal M. Parvovirus B19 in the acute arthropathies and juvenile rheumatoid arthritis. J Paediatr Child Health. 2002; 38:358.

41. Wildig J, Michon P, Siba P, Mellombo M., Ura A., Mueller I., Cos-sart Y. Parvovirus B19 infection contributes to severe anemia in young children in Papua New Guinea. J Infect Dis. 2006; 194:146. DOI: 10.1086/505082.

42. Shimamura A., Guinan G. Acquired aplastic anemia. Nathan and Oski's Hematology of Infancy and Childhood, WB Saunders, Philadelphia 2003; 6: 256.

43. Rodis J.F., Quinn D.L., Gary G.W Jr., Anderson LJ., Rosengren S., Cartter M.L., Campbell W.A., Vintzileos A.M. Management and outcomes of pregnancies complicated by human B19 parvovirus infection: a prospective study. Am J Obstet Gynecol. 1990; 163:1168.

44. Шипулин Г.А., Белковская М.Э., Мальмберг О.Л., Шипулина О.Ю., Курцер М.А., Лукаш Е.Н., Гнетецкая В.А., Пиксасова О.В., Тарасова Ю.А. Неиммунная водянка плода: диагностика и тактика. Акушерство и гинекология. 2009; 2: 37—40.

45. Enders M., Weidner A., Zoellner I., Searle K., Enders G. Fetal morbidity and mortality after acute human parvovirus B1 9 infection in pregnancy: prospective evaluation of 1018 cases. Prenat Diagn. 2004; 24:513.

46. Lassen J, Jensen AK, Bager P, et al. Pedersen CB, Panum I., Nar-gaard-Pedersen B., Aaby P., Wohlfahrt J., Melbye M. Parvovirus B19 infection in the first trimester of pregnancy and risk of fetal loss: a population-based case-control study. Am J Epidemiol. 2012; 176:803.

47. Ergaz Z., Ornoy A. Parvovirus B19 in pregnancy. Reprod Toxicol. 2006; 21:421.

48. deHaan T.R., Beersma M. Oepkes D., de Jong E.P., Kroes A.C., Walther FJ. Parvovirus B1 9 infection in pregnancy: maternal and fetal viral load measurements related to clinical parameters. Prenat Diagn. 2007; 27:46.

49. Aguiar F.S., Lopes D.P., Bazin A.R. Human parvovirus B19 infection in HIV-positive patients. RevSoc Bras Med Trop. 2001; 34:239.

50. Heegaard E.D., Schmiegelow K. Serologic study on parvovirus b1 9 infection in childhood acute lymphoblastic leukemia during chemotherapy: clinical and hematologic implications. J Pediatr.Hema-tol.Oncol. 2002; 24:368.

51. Pakkyara A., Jha A., Al. Salmi I., W.A. Siddiqi, Al Rahbi N., A.P. Kurku-lasurya, J. Mohsin Persistent anemia in a kidney transplant recipient with parvovirus B19 infection. Saudi J Kidney Dis Transpl. 2017; 28:1447.

52. Eid AJ., Brown R.A., Patel R., Razonable R.R. Parvovirus B19 infection after transplantation: a review of 98 cases. Clin Infect Dis. 2006; 43:40.

53. Zerbini M., Gallinella G., Cricca M., Bonvicini F, Musiani M. Diagnostic procedures in B19 infection. Pathol Biol (Paris). 2002; 50: 332—338.

54. Butchko A.R., Jordan J.A. Comparison of three commercially available serologic assays used to detect human parvovirus B19-specific immunoglobulin M (IgM) and IgG antibodies in sera of pregnant women. J ClinMicrobiol. 2004; 42:3191.

55. Toppinen M, Norja P, Aaltonen LM, S.Wessberg, L. Hedman, M. Soderlund-Venermo, K. Hedman. A new quantitative PCR for human parvovirus B19 genotypes. J Virol Methods. 2015; 218:40. Doi: 10.1016/J.jviromet.2015.03.006.

56. Cassinotti P., Burtonboy G., Fopp M., Siegl G. Evidence for persistence of human parvovirus B19 DNA in bone marrow. J Med Virol. 1997; 53:229.

57. Bonvicini F., Bua G., Manaresi E., Gallinella G. Enhanced inhibition of parvovirus B19 replication by cidofovir in extendedly exposed erythroid progenitor cells. Virus Res. 2016; 220:47.

58. Bonvicini F, Bua G., Conti I., Manaresi E., Gallinella G. Hydroxyurea inhibits parvovirus B19 replication in erythroid progenitor cells. Biochem Pharmacol. 2017; 136: 32.

59. Crabol Y, Terrier B., Rozenberg F, Pestre V, Legendre C., Hermine O., Montagnier-Petrissans C., Guillevin L., Mouthon L. Intravenous immunoglobulin therapy for pure red cell aplasia related to human parvovirus b19 infection: a retrospective study of 10 patients and review of the literature. Clin Infect Dis. 2013; 56:968.

60. Koduri P.R. Parvovirus B19-related anemia in HIV-infected patients. AIDS Patient Care STDS. 2000; 14(1):7.

61. Chen M.Y., Hung C.C., Fang C.T., Hsieh S.M. Reconstituted immunity against persistent parvovirus B19 infection in a patient with acquired immunodeficiency syndrome after highly active antiretroviral therapy. Clin Infec Dis. 2001; 32:1361.

62. Seng C., Watkins P., Morse D., Barrett S.P., Zambon M., Andrews N., Atkins M., Hall S., Lau Y.K., Cohen BJ. Parvovirus B19 outbreak on an adult ward. Epidemiol Infect. 1994; 11 3:345.

63. Garner J.S. Guideline for isolation precautions in hospitals. The Hospital Infection Control Practices Advisory Committee. Infect Control Hosp Epidemiol. 1996; 17:53.

64. Chandramouli S., Medina-Selby A., Coit D., Schaefer M., Spencer T., Brito L.A., Zhang P., Otten G., Mandl C.W., Mason P.W., Dormitzer P.R., Settembre E.C. Generation of a parvovirus B19 vaccine candidate. Vaccine. 2013; 31:3872.

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.

Читайте также: