Что такое защитный титр при инфекции

Полный текст:

Вакцинопрофилактика обеспечивает наиболее надежную и эффективную иммунологическую защиту против любого инфекционного заболевания. Клещевой энцефалит (КЭ) остается актуальной проблемой для территории Евразийского континента. Большое значение имеет оценка роли разных титров антител и, особенно, низких титров, которые довольно часто встречаются у вакцинированных лиц и в отдельных случаях представляют сложность при решении вопросов порога серопозитивности и уровня специфической защиты против вируса КЭ.

Цель работы — на основе экспериментальных исследований in vitro, ex vivo и in vivo получить данные по обоснованию противовирусной активности специфических антител с разными титрами по отношению к высоковирулентному дальневосточному штамму вируса КЭ. Были проведены комплексные экспериментальные исследования in vitro, ex vivo и in vivo, и на основании динамики наблюдения (от 1 до 96 ч) обоснована противовирусная активность специфических антител с разными титрами (от 1:100 до 1:3200) по отношению к эпидемически значимой дозе вируса КЭ, равной 3 log ТЦД/мл. Показано in vitro, что антитела класса IgG в титре 1:100 во все сроки наблюдения оказывали слабое нейтрализующее действие по отношению к вирусу КЭ. Иммуноглобулин с титром 1:400 спустя 72 ч после инфицирования тормозил накопление штамма Dal'negorsk вируса КЭ на 2 log БОЕ/мл, с титром 1:3200 во все сроки наблюдения полностью задерживал размножение вируса. На экспериментальной модели ex vivo (кровь вакцинированных лиц с разными титрами антител к вирусу КЭ) и in vivo (неинбредные белые мыши) показана замедленная элиминация вируса при титрах антител 1:100 и 1:200 и быстрая (спустя 1–2 суток) — при титрах антител более чем 1:400. Титр антител 1:400 можно принять за порог защиты от вируса КЭ. Чтобы принять правильное решение о сроках ревакцинации, первоначально рекомендовано исследование крови в ИФА на напряженность иммунитета к вирусу КЭ. Лицам с антителами в титрах 1:100 и 1:200 следует предлагать обязательное проведение ревакцинации. Такой подход является наиболее результативным способом повышения эффективности вакцинопрофилактики КЭ.

д.м.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории природноочаговых трансмиссивных инфекций,

690087 г. Владивосток, ул. Сельская, 1

младший научный сотрудник лаборатории природноочаговых трансмиссивных инфекций,

д.б.н., профессор, ведущий научный сотрудник,

1. Брико Н.И. Критерии оценки эффективности вакцинации // Вакцинация. 2000. Т. 5, № 11.

2. Есюнина М.С., Романенко В.В., Килячина А.С. Длительность сохранения постпрививочного иммунитета к вирусу клещевого энцефалита после ревакцинаций // Медицинская вирусология. 2015. Т. 29, № 2. С. 132.

3. Иерусалимский А.П. Клещевой энцефалит. Новосибирск: Наука, 2001. 359 с.

4. Леонова Г.Н. Клещевой энцефалит: актуальные аспекты. М.: И.В. Балабанов, 2009. 168 c.

5. Леонова Г.Н., Беликов С.И., Кондратов И.Г. Современный взгляд на дальневосточную популяцию вируса клещевого энцефалита // Медицинская вирусология. 2017. Т. 31, № 1. С. 32.

6. Леонова Г.Н., Лубова В.А., Калинин А.В. Значение уровня концентрации специфических антител в элиминации разных штаммов вируса клещевого энцефалита // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2017. Т. 2, № 93. С. 50–56.

7. Онищенко Г.Г., Федоров Ю.М., Пакскина Н.Д. Организация надзора за клещевым вирусным энцефалитом и меры по его профилактике в Российской Федерации // Вопросы вирусологии. 2007. № 5. С. 8–10.

8. Погодина В.В. Актуальные проблемы клещевого энцефалита на рубеже ХХ–ХХI веков // Медицинская вирусология. 2015. Т. 29, № 2. С. 24–32.

9. Погодина В.В., Левина Л.С., Скрынник С.М., Травина Н.С., Карань Л.С., Колясникова Н.М., Кармышева В.Я., Герасимов С.Г., Маленко Г.В., Перминов Л.В., Попов М.А., Бочкова Н.Г. Клещевой энцефалит с молниеносным течением и летальным исходом у многократно вакцинированного пациента // Вопросы вирусологии. 2013. № 2. С. 33–37.

10. Погодина В.В., Щербинина М.С., Левина Л.С., Бочкова Н.Г. Изучение защитного титра антител против сибирского подтипа вируса клещевого энцефалита у вакцинированного населения // Медицинская вирусология. 2017. Т. 31, № 1. С. 39.

11. Романенко В.В., Килячина А.С., Есюнина М.С., Анкудинова А.В., Пименова Т.А. Эффективность программы массовой иммунопрофилактики клещевого энцефалита // Биопрепараты. 2008. № 2. С. 9–14.

13. Хайнц Ф., Хольцманн Х., Эссл А., Кундт М. Анализ эффективности вакцинации населения природных очагов Австрии против клещевого энцефалита // Вопросы вирусологии. 2008. Т. 53, № 2. С. 19–27.

14. Чернохаева Л.Л., Майкова Г.Б., Рогова Ю.В., Романенко В.В., Есюнина М.С., Анкудинова А.А., Килячина Е.С., Ворович М.Ф., Карганова Г.Г. Сравнительная оценка серологических методов оценки защищенности населения от ВКЭ // Медицинская вирусология. 2017. Т. 31, № 1. С. 52.

Dr. Bart van Leerdam n BioChek B.V. , Burg. Bracklaan 57, 2811 BP Reeuwijk , Netherlands
Dr Pieter Kuhne n Intervet/ Schering Plough Animal Health, P.O. Box 31 5830 AA Boxmeer, Netherlands

Использование данных серологии, полученных с помощью метода ELISA, в системе организации здоровья птицы было повсеместно принято для многих заболеваний, включая инфекционный бронхит (IBV). Серология является полезным инструментом для отслеживания иммунного ответа после вакцинации и для постановки диагноза. Очень трудно найти в литературе практические рекомендации касательно интерпретации результатов (IBV) ELISA.

Часто остаются без ответа такие практические вопросы, как: "Какой уровень титров и какой коэффициент вариации (CV) следует ожидать после вакцинации против IBV?" и "Можно ли провести различие между вакцинацией и полевым заражением с помощью IBV ELISA?". В данной статье освещается применение и интерпретация результатов анализа IBV ELISA после вакцинации живой и инактивированной вакцинами, и как серология может облегчить идентификацию заражения вирусом инфекционного бронхита в полевых условиях. Где это представляется возможным, обсуждаются серологические результаты полевых историй болезни Обоснование мониторинга IBV

Связанные с заболеванием проблемы иногда возникают даже у вакцинированных птиц. Связано ли это с качеством вакцины? Возможно, но гораздо чаще, неудача вакцины является следствием неудовлетворительного обращения и/или применения вакцины. Поэтому, когда имеешь дело с вакцинацией живой вакциной против респираторных заболеваний, наподобие IBV, важно оценить успешность вакцинации Это связано с тем, что успешная вакцинация не всегда является неизбежной, поскольку трудно обеспечить доставку эффективной дозы всем птицам без исключения при использовании методов массовой вакцинация (например, с питьевой водой и спрей методом) для живых вакцин IBV

Мониторинг иммунного ответа на вакцинацию помогает обнаружить и диагностировать какие-либо сбои с тем, чтобы предпринять корректирующие меры, если вакцинация оказалась неудачной. Таким образом, отслеживание результатов вакцинации следует рассматривать как "Контроль Качества" вакцинаций, проводимых в полевых условиях Это приводит нас к очень важному моменту при мониторинге с помощью ELISA: следует быть готовым предпринять должные меры в зависимости от результатов. Без принятия мер нельзя ожидать улучшения оптимизации и поддержания эффективности программ вакцинации

Интерпретация результатов ELISA

Для того чтобы успешно интерпретировать результаты ELISA после серологического мониторинга вакцинированных стад, должны быть соблюдены следующие условия

В лаборатории следует использовать внешние референтные контроли, чтобы иметь дополнительную гарантию воспроизводимости и точности результатов и обеспечить правильную интерпретацию. Без референтных контролей, в случае получения аномальных титров, мы незнаем, либо это результат ошибок при проведении процедуры теста либо это фактическое отражение иммунного статуса птиц в полевыхус-ловиях.Перед проведением анализа необходимо иметь представление о том, какой результат является ожидаемым (базисный уровень титров для успешной вакцинации). Это позволит легче интерпретировать результаты, сравнивая с базисным уровнем, и легко судить об успешности вашей программы вакцинации. Также необходимо иметь представление о том, какие действия следует предпринять, если результаты не соответствуют ожидаемым

На практике интерпретация результатов вакцинации обычно проводится путем оценки трех основных компонентов гуморального ответа после введения вакцины, которыми являются

Интенсивность отклика, на что указывает значение среднего титра. Развиваются ли у птиц уровни титров в ожидаемом диапазоне (базисный уровень) для примененной вакцины? Эти титры базисного уровня могут варьировать в зависимости от типа птицы, возраста типа вакцины, программа вакцинации и т.д. В каждом конкретном случае следует разработать собственные базисные уровни для своих программ вакцинации и условий на месте. Пример базисных уровней при вакцинации бройлеров против IBV приводятся в таблицах 1 и 2 (в конце статьи). Можно видеть, что базисные уровни (средний титр) могут варьировать в зависимости от использованных вакцинных штаммов Применение относительно мягких вакцин Н120 будет давать значительно меньшие титры по сравнению с ответом, полученным после применения более иммуногенных вакцинных штаммов, таких как IB 4/91

Однородность отклика, на что указывает %CV (коэффициент вариации). Была ли вакцина доставлена каждой птице или нет? Находится ли %CV в пределах требуемого диапазона, или есть ли возможность для улучшения?

В качестве общего руководства для коэффициента вариации после вакцинации можно привести следующие значения:

Менее 40% Великолепная

Более 60% Следует улучшить

Хотя эти общие рекомендации применимы для большинства живых и инактивированных вакцин, следует иметь в виду, что использование живых вакцин против респираторных заболеваний наподобие IBV, генерирует в целом неоднородный отклик в титрах. Горизонтальное распространение вакцинного вируса среди стад может быть ограниченным, а, кроме этого, живые IBV вакцины могут также давать местный иммунный отклик, который нельзя измерить с помощью метода ELISA Поэтому в случае применения таких живых вакцин, как вакцина Н120 ожидаемый СУдля хорошей вакцинации будет составлять 40-70%. Значение CV на уровне Родители бройлеров в 35 недель 15% снижение яйценоскости

До ингоекдии. 34 нед. После инфекции. 37 нед

Клинические признаки: мелкие, деформированные яйца и снижение яйценоскости на 15 %

Соответствующее повышение тигров и снижение % CV

Пример 2. Серология бройлеров в возрасте 44 дня, после двукратной вакцинации Н120. Средний титр значительно увеличен, коэффициент вариации (CV) значительно снижен. Клинические симптомы также соответствуют серологической картине

Осложненные IBV инфекции

Несмотря на то, что в случае проявления респираторных признаков можно подозревать инфекцию IBV, рекомендуется также провести тестирование инфицированных птиц на предмет присутствия других респираторных патогенов по двум причинам

Инфекции IBV часто происходят в сочетании с другими респираторными патогенами, в частности, вирусом птичьего ринотрахеита (ART) (известен также, как птичий пневмовирус (APV)), Ornithobactenum rhinotracheale (OR), Mycoplasma gallisepticum (MG) и Mycoplasma synoviae (MS). Осложненные инфекции можно диагностировать лишь

путем просмотра всей серологической картины. Тестирование только на IBV не укажет на взаимодействующие патогены респираторной болезни

Серология после респираторных вакцин типа IBV и NDV часто аномально искажается из-за повреждений, присутствующих после респираторного заражения (трахеит и/или аэросаккулит). Эти повреждения делают возможным более активный контакт и проникновение вакцинного вируса в рецепторных местах, что приводит в результате к повышенной по сравнению с нормой серологии после применения живых вакцин IBV и NDV. Это является одной из причин частой ложной диагностики инфекции пневмовирусами (ART), как инфекции IBV, если оценивать только серологию IBV. Анализ всей серологической картины позволяет увидеть характер взаимодействия с другими респираторными агентами, что позволяет надлежащим образом поставить диагноз осложненной инфекции. Часто принятие во внимание ключевых критериев при определении инфекции (как описано выше) помогает исключить "эффект пораженной трахеи": как правило усиленные реакции на вакцину не приводят к удвоению ожидаемых средних титров и/или значительному снижению коэффициента вариации (%CV).

Приведенные ниже две истории болезни демонстрируют полезность проведения полного тестирования птиц с респираторными заболеваниями

История болезни 1:

Хроническая респираторная инфекция, ложно диагностированная, как инфекционный бронхит (IBV)

Стадо бройлеров было дважды вакцинированно живой IBV вакциной МА 5

В возрасте 21 день у птиц обнаруживалась тяжелая респираторная клиника в сочетании с распухшей головой и смертностью на уровне 10-15%. Вскрытие выявило аэросаккулит с желтым пенистым экссудатом, который был отнесен на счет инфекции Е . coli.

Рутинная серология на инфекционный бронхите помощью ELISA выявила слегка повышенные средние титры с более однородным откликом, чем обычно. В связи с тем, что титры были повышены, был сделан вывод о том, что цыплята-бройлеры были заражены инфекционным бронхитом с вторичной инфекцией Е . coli. В программу вакцинации бройлеров была введена третья вакцинация против IBV, но респираторные признаки сохранились. Если провести более полное серологическое обследование, то обнаруживаются значительные положительные титры ART и OR.

История болезни 2:

Осложненная инфекция IBV с нефропатогенным вариантным штаммом.

Стадо бройлеров было дважды вакцинированно живой вакциной Massachusetts (Н120) в возрасте 1 и 20 дней. Птиц также дважды вакцинировали от NDV с применением живой вакцины Avinew в возрасте 1 (спрей) и 20 дней (выпаивание с водой). В возрасте 14-21 дней у птиц проявились респираторные признаки, мягкая диарея и смертность Посмертное обследование выявило трахеит и нефрит. У некоторых птиц аэросаккулит с плотным желтоватым пенистым экссудатом. На приведенных ниже фотографиях иллюстрируется ситуация на ферме. Показаны тяжелый трахеит, воспаление почек (нефрит) и аэросаккулит с плотным творожистым экссудатом.

Ниже приводятся полученные с помощью ELISA данные серологии у цыплят в возрасте 46 дней. Тесты на MG и MS оказались отрицательными (данные не показаны). Серология IBV выявила аномально высокие титры со значением CV (25%), что значительно ниже ожидаемого диапазона (50 - 100%). Клинические симптомы также согласовывались с повышенными титрами IBV

Результаты серологии ART и OR были также положительными, указывая на наличие этих попутных инфекций, поскольку птицы не подвергались вакцинации. Серология на предмет NDV показала повышенные по сравнению с нормой титры, но усиленная реакция, по всей видимости, была связана с "эффектом поражения трахеи" вакцинным вирусом. Для NDV также не удовлетворялись ключевые критерии, которые указывают на инфекцию. (Средний титр в два раза ниже ожидаемого после вакцинации). На основе этих результатов можно сделать вывод о том, что птицы первоначально были инфицированы нефропатогенным штаммом инфекционного бронхита, a ART и OR действовали в качестве вторичных патогенов

Был разработан план на случай непредвиденных дополнительных обстоятельств, который включал вакцинацию с применением живого вариантного штамма IBV (4/91) в возрасте 14 дней с питьевой водой. После реализации новой программы параметры продуктивности вернулись к норме. Образцы сыворотки от пораженных стад, использованных для тестирования с помощью ELISA, были отправлены в лабораторию компании Intervet в Боксмеере, Голландия, для проведения серотипирования с помощью теста нейтрализации вируса (VN). Результаты обобщены в приведенной ниже таблице:

История болезни 3:

Серотипирование инфекции IBV с QX-подобным штаммом у бройлеров с респираторной инфекцией

Цыплят-бройлеров вакцинировали дважды вакциной Н120 в возрасте 1 и 20 дней

В возрасте 14-21 дней у птиц были обнаружены респираторные признаки, нефрит и увеличение смертности

Результаты серологии цыплят в возрасте 46 дней

Специфический тест нейтрализации вируса (VN) выявил самый высокий титр для QX-подобного (или D388) штамма у птиц, которые были вакцинированы только вакциной Н120 серотип Massachusetts (в тесте VN определяется с М41). Можно сделать вывод о том, что результаты серологии с помощью метода ELISA оказались очень полезными для ранней диагностики природы первичного патогена (нефропатогенный IBV) и помогли предотвратить дальнейший урон путем немедленной корректировки программы вакцинации, которая включала вакцину с вариантным штаммом IB 4/91

Дополнительное серотипирование с помощью теста нейтрализации вируса (VN) помогло установить конечный диагноз до уровня специфического штамма (тип D338). Оно подтвердило обоснованность использования вариантного штамма в программе вакцинации с целью расширения спектра защиты против различных вариантов инфекционного бронхита. Осведомленность о присутствии этого серотипа на птицеферме может также оказаться полезной в разработке эффективных программ вакцинации для других пораженных ферм в данном регионе

Основное преимущество серологического мониторинга инфекционного бронхита с помощью ELISA заключается в следующем

Совершенствование методики введения вакцины и повышение ее эффективности

Немедленная диагностика заболевания с целью идентификации причин производственных потерь

Ключевым пунктом применения программы мониторинга является то, что в зависимости от полученных результатов следуют определенные действия. Принятие немедленных соответствующих мер является очень важным для ограничения и предотвращения дальнейших экономических потерь. Если результаты вакцинации являются неудовлетворительными, это позволит провести повторную оценку процедур вакцинации против IBV и осуществить корректирующие действия. Это делает регулярный мониторинг экономически эффективным профилактическим средством. Повышение эффективности применения вакцины приведете результате к более эффективному контролю над заболеванием и повышению продуктивности стад

Данная статья с практической точки зрения иллюстрирует ключевые моменты в интерпретации результатов серологии с помощью ELISA после вакцинации живыми и инактивированными вакцинами против инфекционного бронхита, а также идентификации заражения IBV. По возможности, результаты серологии обсуждаются на примерах истории болезни в полевых условиях. Особое внимание уделяется следующим ключевым моментам

Использование референтной контрольной сыворотки, чтобы обеспечить надежность результатов ELISA

Интерпретация результатов серологии IBV и обсуждение базисных уровней антител ожидаемых после вакцинации

Практическое применение ELISA в качестве метода "Контроля Качества" для оценки и оптимизации Вашей программы вакцинации

Критерии для диагностики IBV, включая серологию

Мониторинг инфекционного бронхита с помощью ELISA в качестве средства для ранней диагностики заболевания и ограничения производственных потерь

Принятие безотлагательных мер для ограничения и предотвращения дальнейших производственных потерь

Профилактический мониторинг поголовья должен также включать оценку результатов продуктивности, регулярный клинический осмотр, а также рутинное обследование выбракованных и павших птиц.

В 2018 году в Российской Федерации отмечается значительный рост заболеваемости корью, за январь-февраль зарегистрирован 571 случай, показатель заболеваемости составил 0,39 на 100 тысяч населения против 0,02 за аналогичный период 2017 года.

По информации управления федеральной службы Роспотребнадзора по ХМАО-Югре, в 2017 году в городе Мегионе зарегистрирован 1 завозной случай кори из республики Дагестан. В 2016 году в Ханты-Мансийском автономном округе - Югре случаи кори не регистрировались. В 2015 году зарегистрировано 5 случаев кори среди детского и взрослого населения г. Сургута и Сургутского района из них 2 завозных и 3 связанных с завозным случая.

В связи с этим главным государственным санитарным врачом по ХМАО-Югре принято постановление, которым предусматривается проведение дополнительных мероприятий по предупреждению возникновения и распространения кори в автономном округе.

Так, до 15 мая 2018 года необходимо провести подчищающую иммунизацию против кори:

- всех взрослых в возрасте 18-35 лет, не болевших ранее корью, не привитых против кори, привитых однократно, не имеющих сведений о прививках против кори, не имеющих защитного титра антител к вирусу кори;

- взрослых от 36 до 55 лет (включительно), относящихся к группам риска (работники медицинских и образовательных организаций, организаций торговли, транспорта, коммунальной и социальной сферы; лица, работающие вахтовым методом), не болевших ранее корью, не привитых против кори, привитых однократно, не имеющих сведений о прививках против кори, не имеющих защитного титра антител к вирусу кори;

- иностранных граждан, трудовых мигрантов, беженцев, вынужденных переселенцев, не имеющих сведений о прививках против кори, привитых однократно, не болевших ранее корью, не имеющих защитного титра антител к вирусу кори.

Руководителям юридических лиц и индивидуальным предпринимателям рекомендовано оказать всестороннее содействие медицинским работникам по проведению профилактических прививок против кори среди взрослых. Для этого им необходимо подготовить списки работников, относящихся к перечисленным группам риска и представить их до 30 апреля 2018 года в территориальные медицинские организации.

Что касается детского населения, то вакцинация детей против кори в возрасте 24 месяца в 2017 году составила в целом по округу 95,98%, ревакцинация в 6 лет – 94,21%.

Напомним, что корь является высокозаразной тяжелой инфекционной болезнью, вызываемой вирусом из семейства парамиксовирусов. До начала массовой вакцинации населения против этой инфекции, в мире ежегодно заболевало более 2 миллионов человек, в том числе со смертельным исходом.

Корь является одной из основных причин смерти среди детей раннего возраста, даже несмотря на наличие безопасной и эффективной по стоимости вакцины.
В 2014 году в глобальных масштабах произошло 114 900 случаев смерти от кори —большинство из которых дети в возрасте до 5 лет.
За период с 2000 по 2014 год противокоревая вакцинация привела к снижению глобальной смертности от кори на 79%.
В 2014 году около 85% всех детей в мире получили одну дозу противокоревой вакцины в течение первого года жизни в ходе оказания регулярных медицинских услуг, по сравнению с 73% в 2000 году.

В 2000-2014 гг. вакцинация от кори предотвратила, по оценкам, 17,1 миллиона случаев смерти, сделав вакцину от кори одним из наиболее выгодных достижений общественного здравоохранения.

Высококонтагиозный вирус кори распространяется при кашле и чихании, тесных личных контактах или непосредственном контакте с инфицированными выделениями из носоглотки.

Вирус остается активным и контагиозным в воздухе или на инфицированных поверхностях в течение 2 часов. Он может быть передан инфицированным человеком на протяжении периода времени, начинающегося за 4 дня до появления у него сыпи и заканчивающегося через 4 дня после ее появления.

Вспышки кори могут принимать форму эпидемий, которые приводят к многочисленным смертельным исходам, особенно среди детей раннего возраста, страдающих от недостаточности питания.

В странах, где корь в значительной мере ликвидирована, случаи заболевания, ввезенные из других стран, остаются существенным источником инфекции.

Кто подвергается риску?

Невакцинированные дети раннего возраста подвергаются самому высокому риску заболевания корью и развития осложнений, включая смертельный исход. Невакцинированные беременные женщины также подвергаются риску. Заразиться корью может любой человек, не имеющий иммунитета — тот, кто не был вакцинирован или тот, кто не выработал иммунитет после вакцинации.
Корь все еще широко распространена во многих развивающихся странах — особенно, в некоторых частях Африки и Азии. Ежегодно более 20 миллионов человек заболевает корью. Подавляющее большинство (более 95%) случаев смерти от кори происходит в странах с низким доходом на душу населения и слабыми инфраструктурами здравоохранения.
Самые смертоносные вспышки кори происходят в странах, переживающих стихийные бедствия и конфликты или возвращающихся к нормальной жизни после таких событий. Из-за ущерба, нанесенного инфраструктуре и службам здравоохранения, прерывается регулярная иммунизация, а предназначенные для жилья переполненные лагеря способствуют значительному повышению риска инфицирования.

Признаки, симптомы, осложнения

Первым признаком кори является повышение температуры 38*С и более, которое наступает в течение инкубационного периода (от 7 до 21 дня).
Инкубационный период длится от недели до двух-трех. Самое интересное, что корь начинается не с появления сыпи - на первоначальном этапе для нее характерны простудные симптомы: кашель, температура, насморк, слабость, отсутствие аппетита, бывают коньюктивит и слезотечение.
Характерная коревая сыпь появляется на 3-5 день, сначала на лице, затем распространяется по всему телу, в этот период температура тела может подниматься до показателей 40,5 градусов!
Сыпь держится около недели, а потом проходит, оставляя пигментацию. Характерны также мелкие белые пятна на внутренней поверхности щек (пятна Бельского – Коплика).
Большинство смертельных случаев кори у детей происходит из-за осложнений- тяжелых вирусных пневмоний. Самые серьезные осложнения включают слепоту, энцефалит (инфекцию, приводящую к отеку головного мозга).
Тяжелое течение кори более вероятно среди плохо питающихся детей младшего возраста, особенно тех, кто испытывает недостаток витамина А, или чья иммунная система ослаблена ВИЧ/СПИДом или другими болезнями.
У людей, переболевших корью, вырабатывается иммунитет против нее на всю оставшуюся жизнь.

-дети от 1 года до 18 лет (включительно)

-взрослые до 35 лет (включительно), не болевшие, не привитые, привитые однократно, не имеющие сведений о прививках против кори;

-взрослые от 36 до 55 лет (включительно), относящиеся к группам риска (работники медицинских и образовательных организаций, организаций торговли, транспорта, коммунальной и социальной сферы; лица, работающие вахтовым методом, и сотрудники государственных контрольных органов в пунктах пропуска через государственную границу Российской Федерации), не болевшие, не привитые, привитые однократно, не имеющие сведений о прививках против кори(документальные подтверждения об иммунизации в медицинской документации)

Управление Роспотребнадзора по ХМАО-Югре призывает население и работодателей медицинских и педагогических работников, персонал организаций торговли, транспорта, коммунальной и социальной сферы, лиц, работающих вахтовым методом поддержать прививочную кампанию против кори.

Исследование содержания в крови антител к возбудителям наиболее распространенных инфекций детского возраста.

Иммунитет к детским инфекциям, детские инфекции (комплекс анализов).

Assessment of Postvaccine Immunity, Measles, Mumps, Rubella (MMR) Immunity Profile Test, Tetanus Antitoxoid Titer Test, Diphtheria Immunity Test, Varicella Zoster Virus (VZV) IgG Titer Test, Hepatitis B Immunity Status Test.

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Как правильно подготовиться к исследованию?

Не курить в течение 30 минут до исследования.

Общая информация об исследовании

По некоторым данным, в структуре всех заболеваний, регистрируемых у детей, около 90% занимают инфекционные болезни. Во многом это объясняется тем, что растущий и развивающийся организм ребенка значительно больше подвержен неблагоприятному влиянию факторов окружающей среды, чем организм взрослого. При этом большую часть инфекций детского возраста составляют вирусные инфекции и лишь около 2% - бактериальные. Согласно статистическим данным, в России в последние годы наблюдалось снижение заболеваемостью корью и вирусным гепатитом В. Вместе с тем регистрируется высокий уровень заболеваемости корью детей в первые годы жизни, причиной чего может являться низкая напряженность материнского иммунитета и несвоевременная вакцинация. Также зарегистрирован рост числа детей, заболевших и другими инфекциями, в отношении которых проводится иммунопрофилактика (вакцинация) - коклюш, краснуха, эпидемический паротит, - при этом преимущественно болеют невакцинированные люди. Отмечается тенденция к росту заболеваемости ветряной оспой ("ветрянкой"), около 95% заболевших которой - дети, чаще дошкольного возраста. Также стоит отметить, что многие инфекции, которыми традиционно люди болеют в детском возрасте, у взрослых нередко протекают более тяжело и сопровождаются развитием осложнений. Заболевание некоторыми инфекциями в период беременности может сопровождаться нарушением развития и формированием тяжелой патологии плода. Учитывая распространенность инфекций детского возраста, важное значение в выборе мер профилактики имеет исследование иммунного статуса организма в отношении отдельных инфекционных заболеваний.

После контакта иммунной системы организма с возбудителем инфекции в результате заболевания или вакцинации вырабатываются специальные защитные белки – антитела, или иммуноглобулины. При этом антитела к конкретному возбудителю способны узнавать его и соединяться только с ним. Это свойство лежит в основе специфичности иммунитета – способности организма защищаться от определенных инфекционных заболеваний. Существует несколько классов антител, они отличаются друг от друга по свойствам и продолжительности циркуляции в крови. Иммуноглобулины класса G появляются через 2-3 недели после контакта с возбудителем и могут сохраняться в течение многих лет. Их выявление в крови свидетельствует о стадии выздоровления от инфекции, перенесенной в прошлом инфекции или поствакцинальном иммунитете. Для определения наличия антител к возбудителям инфекционных заболеваний используют иммунологические методы диагностики – исследования, в основе которых лежит взаимодействие антител с антигенами.

В данное комплексное исследование входит определение наличия в крови антител (суммарных или иммуноглобулинов G) к наиболее распространенным инфекционным заболеваниям детского возраста:

Anti-HBs антитела. Вирусный гепатит В – повсеместно распространенное инфекционное заболевание. Вирус распространяется через поврежденную кожу, при контакте с инфицированной кровью и некоторыми другими биологическими жидкостями, а также при многократном использовании инъекционных игл и шприцов. Также вирус гепатита В может передаваться от матери ребенку в процессе родов. Вирус имеет внешнюю оболочку, на которой расположен поверхностный антиген – HBsAg. HBsAg является первым выявляемым в крови маркером инфекции, однако его уровень снижается по мере развития болезни и затем окончательно исчезает. После исчезновения HBsAg в крови появляются анти-HBs-антитела. Наличие анти-HBs-антител означает длительный приобретенный иммунитет вследствие перенесенного гепатита или вакцинации. Мониторинг уровня анти-HBs-антител необходим для оценки напряженности достигнутого после вакцинации иммунного ответа, продолжительности активной иммунной защиты и сроков ревакцинации. Считается, что концентрация анти-HBs-антител более 10 мМЕ/мл свидетельствует о выздоровлении после заболевания или о достаточном иммунном ответе после вакцинации. Концентрация анти-HBs-антител менее 10 мМЕ/мл означает отсутствие приобретенного иммунитета к гепатиту В.
Bordetella pertussis, IgG. Бактерия В. pertussis является возбудителем коклюша – инфекции, поражающей дыхательную систему. Широкое распространение вакцинации способствовало сокращению заболеваемости коклюшем, однако поствакцинальный иммунитет значительно ослабевает по прошествии 10-15 лет, что делает целесообразным его оценку в этот период для определения необходимости ревакцинации.
Clostridium tetani, антитела. Cl. tetani – возбудитель столбняка – инфекционного заболевания, протекающего с поражением нервной системы. Определение антител к возбудителю столбняка используется для оценки напряженности поствакцинального иммунитета и определения необходимости ревакцинации.
Corynebacterium diphtheriae, антитела. Дифтерия сопровождается воспалением слизистой ротоглотки и носа. Возбудитель инфекции выделяет в кровь токсин, воздействующий на нервную систему, сердце и почки. Антитела к дифтерийному токсину вырабатываются при заболевании либо после вакцинации (в большинстве случаев дети вакцинируются вакциной АКДС после трех месяцев). Определение антител к дифтерийному токсину используется для контроля напряженности иммунитета и определения необходимости ревакцинации.
Mumps Virus, IgG – антитела к возбудителю эпидемического паротита ("свинки"). После вакцинации или перенесенного заболевания иммуноглобулины класса G к возбудителю паротита сохраняются в течение всей жизни, определение их уровня в крови целесообразно проводить для оценки наличия иммунитета при отсутствии сведений о вакцинации либо перенесенном ранее заболевании.
Rubella Virus, IgG (количественно) – количественное определение антител к возбудителю краснухи. Иммуноглобулины G появляются в процессе выздоровления после перенесенного заболевания или после вакцинации и сохраняются в крови до 10 лет и более. Их определение используется для оценки напряженности поствакцинального иммунитета и верификации перенесенной ранее инфекции. Важно отметить, что заболевание краснухой матери во время беременности может привести к инфицированию плода с развитием тяжелого поражения нервной системы, сердца и глаз.
Varicella Zoster Virus, IgG. Данный вирус способен вызывать две формы инфекции – опоясывающий лишай и ветряная оспа ("ветрянка"). Ветрянка является результатом первичного инфицирования вирусом и характерна для детского возраста, опоясывающий лишай – вызван реактивацией вируса, сохраняющегося в нервных ганглиях после первичного инфицирования, и чаще встречается у взрослых. Во время беременности инфекция Varicella Zoster может приводить к появлению пороков развития плода. Иммуноглобулины G, появляющиеся после первичного контакта с вирусом (у переболевших ветрянкой), обеспечивают пожизненный иммунитет к Varicella Zoster.
Вирускори, IgG (Measles Virus, IgG). Корь сопровождается поражением слизистых дыхательных путей и кожи. Иммуноглобулины класса G к вирусу кори появляются в крови после перенесенного заболевания или вакцинации и циркулируют в течение многих лет. Исследование их концентрации в крови проводится для оценки напряженности иммунитета.

Для чего используется исследование?

Для оценки наличия приобретенного специфического иммунитета к возбудителям наиболее распространенных инфекций детского возраста.

Когда назначается исследование?

При необходимости определить напряженность приобретенного иммунитета - детям и взрослым в случаях, когда отсутствуют сведения о проведенной вакцинации и перенесенных ранее инфекционных заболеваниях.

Что означают результаты?

Результат данного исследования содержит титр антител к каждому из возбудителей. Референсные значения и причины изменений по каждому отдельному показателю:

Что может влиять на результат?

Причиной изменения уровня иммуноглобулинов может быть не только поствакцинальный иммунитет, но и иммунная реакция на острое заболевание. При необходимости исследование повторяют через 10-14 дней – нарастание титра антител в 4 раза и более свидетельствует о заболевании.

Результаты данного исследования не могут служить основанием для отказа от проведения вакцинации или ревакцинации без консультации с врачом.
Интерпретация результатов данного исследования должна проводиться врачом соответствующей специальности и оцениваться совместно с данными анамнеза и клиническими проявлениями.

Панель тестов "TORCH-антитела"
Иммунологическое обследование первичное

Кто назначает исследование?

Педиатр, терапевт, врач общей практики, инфекционист, эпидемиолог.

Литература

Mandell, Douglas and Bennett’s Infectious Disease Essentials. John E. Bennett, R. Dolin, Martin J. Blaser. Philadelphia: Elsevier, 2017. Pages 183-184, 198-199, 209, 217, 220-221, 290-291, 339-340, 360.
Состояние инфекционной заболеваемости у детей в Российской Федерации. Ю. В. Лобзин, Л. Н. Коновалова, Н. В. Скрипченко. Медицина экстремальных ситуаций, 2017, №2 (60). С. 8-22.
Инфекционные болезни: национальное руководство / Под ред. Н. Д. Ющука, Ю. Я. Венгерова. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. С. 475-484, 521-526, 616-625, 765-775, 801-820.

Читайте также: