Дифференциальная диагностика при туберкулезе животных
Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Ощепков В. Г., Taллер Л. А., Дюсенова Г. М., Вассимирская Т. А., Секин Е. Ю.
Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Ощепков В. Г., Taллер Л. А., Дюсенова Г. М., Вассимирская Т. А., Секин Е. Ю.
DIFFERENTIAL DIAGNOSIS OF TUBERCULOSIS WITH APPLICATION OF CHEMILUMINESCENT METHOD
на мясо при плотности посадки до 21 -дневного возраста 14 гол./м2 и с последующей пересадкой до конца выращивания по 7 гол./м2 была выше, чем в базовом варианте на 16,5 % при уровне рентабельности 17,67
%. Сокращение срока выращивания утят до 42-днев-ного возраста позволило снизить общие затраты на производство мяса на 16,02 %, увеличить прибыль на 26,6 % и повысить уровень рентабельности до 26,75 %.
1. Авзалов, Р.Х., Гущин П.Я. Этология животных.; под. ред. П.Я. Гущина. — Уфа: Издательство БашГАУ, 2005. — С. 194-246.
2. Антипова J1., Бердников В., Петров ОЛлияние способа содержания цы/ыят-бройлеров на качество мяса. // Птицеводство. — 2005. — № 5. - С. 8-10.
3. Буяров, B.C. Пути совершенствования технологии производства мяса бройлеров// Птица и тпицепродукты. — 2004. — № 1. — С. — 11-
4. Белякова Л., Кочетова 3. Продуктивность перепелов при разной плотности посадки. // Птицеводство. — 2006. — № 2. — С. 21-22.
6. Кочиш ИМ, Петраш М.Г., Смирнов С.Б. Птицеводство. — М.: Колос, 2004. — 407с.
8. Саитбаталов Т.Ф. Утководство в Республике Башкортостан (селекция и технология). — Уфа: Гилем, 1977. — 264 с.
9. Саитбаталов Т.Ф., Гайсин М.Х., Фаррахов А.Р. Водоплавающая птица Республики Башкортостан: перспективные направления // Птица и ттщепродукты. — 2005. — № 6. — С. 13-15.
10. Филоненко В.И., Салеева И.П., Алексеев Ф.Ф. Химический состав мяса брошеров в зависимости от возраста. //Птица и птицепродук-ты. - 2006. - № 5. - С. 20-24.
OPTIMIZATION OFTIGHTNESSANDTERMSOFGROWTH OF DUCKS ON MEAT T.A. Sedykh, R.R.Gadiev, R. S. Gizatullin
УДК 619:317 - 619:616.982.2
ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА ТУБЕРКУЛЕЗА С ПРИМЕНЕНИЕМ ХЕМИЛЮМИНИСЦЕНТНОГО МЕТОДА
В. Г. ОЩЕПКОВ, доктор ветеринарных наук, директор
Л.А. TAJIJIEP, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник
Г.М. ДЮСЕНОВА, кандидат биологических наук, научный сотрудник
Т.А. ВАССИМИРСКАЯ, аспирант Е.Ю. СЕКИН, кандидат ветеринарных наук, научный сотрудник
Ключевые слова: туберкулез, диагностика, патогенные микобактерии
Сегодня основные методы массовой диагностики туберкулеза у сельскохозяйственных животных, в том
числе и крупного рогатого скота, — аллергический, патологоанатомический и бактериологический [1,2]. Их чаще применяют в комплексе и сроки постановки диагноза в этом случае составляют один-три месяца. Кроме того, надежность таких методов часто колеблется в пределах 50. 70 % [2, 3, 4 и др.].
В то же время, имеющиеся достижения биофизики, иммунологии и молекулярной биололии свидетельствуют, что надежность диагностики большинства инфекционных болезней человека и животных, в том числе и туберкулеза, можно существенно повысить, а сроки исследований сократить. В частности, это достигается путем измерения биохемилюменес-ценции (БХЛ), то есть сверхслабого квантового излучения (свечения) иммунокомпетентных клеток и плазмы крови, тканевых макрофагов и других биоструктур.
Основываясь на этих достижениях современной биоинженерии, было решено создать такие методы диагностики туберкулеза, которые позволяли бы определить диагноз в течение трех-семи или даже одних суток.
Для этого потребовалось изучить динамику хеми-люминесценции (ХЛ) у различных структур иммунной системы здоровых и зараженных возбудителями туберкулеза (больных) животных, разработать ХЛ-ме-тод ранней диагностики туберкулеза и апробировать его в производственных условиях.
В качестве объектов исследования для разработки ХЛ-метода мы использовали клетки и плазму (сыворотку) крови лабораторных животных (кролики, морские свинки) и крупного рогатого скота разного возраста (телята, коровы).
В процессе поиска приемлемых для научных и практических целей методик хемилюминесцентных
ны этапы выделения и исследования клеток крови, учитывали лишь XJ1 биоструктур сыворотки.
На первом этапе исследований, проведенном на лабораторных животных, было установлено, что у морских свинок и кроликов, после заражения возбудителями бычьего и человеческого видов (М. bovis и М. tuberculosis), абсолютная частота ХЛ лейкоцитов резко возрастает. В первые 3. 7 дней после введения возбудителей она увеличилась в 3-10 раз, через
14. 21 дней - в 15. 18 раз. Кконцу первого месяца (26. 28 дни) активность XJI лейкоцитов несколько снижается, но все же в 3-7 раз превышает велечину этого показателя у здоровых животных (табл. 1).
исследований были изучены четыре варианта (базо- Таблица 1. Абсолютные значения максимальных показателей ХЛ лейкоцитов крови выйитримодифицирован-М0Рских свинок, экспериментально зараженных М.Ьото штЛ4, при ее стимуляции ных) различными антигенами микобактерий (имп./сек.*), М+ш
При базовом варианте
3-й день 7-й день 14-й день 21-й день 28-й день Контроль
пробы крови брали из яремной вены и стабилизировали ее цитратом натрия или трилоном Б. После доставки проб в лабораторию из крови выделяли полиморфноядерные лейкоциты,добавляли люминол и опсони-зированный зимозан, а затем определяли жизнеспособность и функциональную активность (способность к хемилюминесценции) выделенных лейкоцитов. В заключение в исследуемую популяцию лейкоцитов вносили индуктор специфической хемилюминисцен-ции (антиген микобактерий). Для учета активности (частоты импульсов в секунду) ХЛ использовали 36-канальный хемилюминометр СЬ-3604 с соответствующей автоматической программой управления и регистрацией цифровых и графических показателей на персональном компьютере (ПК).
В лучшем из модифицированных вариантов в качестве объекта исследования использовали сыворот-
Сроки взятия крови после заражения Опытная группа
молекулярный антиген патогенных микобактерий (ВНИИБТЖ) поверхностные антигены живых микобактерий БЦЖ поверхностные антигены инактивированных микобактерий БЦЖ
6882,33±3323,63 14780*4701,74 23433,16±2669,7 38605,5±10,308,4 10357±6589,0 1514±362
16627,6±9815,9 9306,8±1109,76 31608,6±2002,67 43772,5±14110,5 не исследовали 1756±566,0
7881,3±348,91 34936,33±11560,2 47213±11832,76 43371 ±7978,3 16673±1572,0 2040±243,71
ку крови. В этом случае естественно, были исключе-
* число импульсов ХЛ в течение одной секунды
Эта закономерность подтвердилась при экспериментальном заражении телят четырех-пятимесячно-го возраста (см. рисунок) и коров старше трех-четы-рех лет.
Исследования, проведенные в отдаленные сроки (3. 6 месяцев и более) после заражения, показали, что у больного (зараженного М.bovis или М.tuberculosis) крупного рогатого скота, в сравнении со здоровым, уровень XJ1 остается увеличенным минимум в 2-5 раз. Время непосредственно ХЛ исследования (без учета времени на доставку проб) было доведено до четырехшести часов.
Цель наших исследовани й—производственная ап-
а) ^ ^ не« ледевания (и мии)
Рис. Т. Графическое изображение химилюминесцениии (имп/с) лейкоцитов подопытного теленка № 001: а) до за заражения возбудителем туберкулеза; б) на 28 день после заражения возбудителем туберкулеза; НСФ — неспецифическая фаза ХЛ (после внесения люминола и зимозана), Аг - внесение в исследуемую пробу лейкоцитов антигена, извлеченнного из патогенных бактерий (начало специфической фазы ХЛ - СПФ), К - контроль (ХЛ лейкоцитов здорового теленка).
робация разработанного экспресс-метода.
ХЛ-метод применяли в качестве дополнительно ускоренного дифференциального теста для уточнения инфекционного статуса животных, реагирующих на ППД-туберкулин. При этом его сравнивали с другими традиционными тестами (патологоанатомическим, бактериологическим, пальпебральная проба ППД-туберкулином), рекомендуемыми в таких сомнительных случаях.
диагностики с помощью патологоанатомического метода 15 животных, имевших положительные аллергические кожные или пальпебральные реакции было подвергнуто выборочному убою.
Наименование хозяйства Чис- ло, гол Положительные рез ультаты при использовании
внутри- кожной аллерги- ческой пробы пальпеб- ральной аллерги- ческой пробы патолого- анатоми- ческого метода бакте- риологи- ческого метода* ХЛ- ме- тода
* исследовано 15 биоматериалов (животных)
аллергической пробы ППД-туберкулином и равнозначна патологоанатомическому и бактериологическому методам. Причем сроки постановки диагноза в случае применения ХЛ-метода значительно (в 20-40 раз) меньше, чем при бактериологическом методе. А по сравнению с патологоанатомическим методом, при использовании ХЛ-метода не требуется убоя исследуемых животных.
Разработанный во ВНИИБТЖхемшиоминесцен-тный метод обладает необходимой специфичностью и чувствительностью и может быть использован при ранней диагностике туберкулеза у крупного рогатого
скота. Он позволяет в 78. 100 % случаев надежно поставить диагноз через 4. 6 часов после доставки в лабораторию проб нитрированной крови или сыворотки крови от животных, подлежащих исследованию.
1. Наставление по диагностике туберкулеза животных (утв. Департаментом ветеринарии МСХ РФ, 23.03.2002 г.), Москва, 2002. - 22 с.
2. Донченко А.С., Овдиенко Н.П., Донченко НА. Диагностика туберкулеза крупного рогатого скота. - Новосибирск, 2004. — 309 с.
3. Донченко В.II., Ионина С.В. Скорость и интенсивность роста М. bovis (uim.8 ВИЭВ) на различных питательных средах/ Материалы Всероссийской научной конференции по проблеме хронических инфекций (16-17 мая 2001г.): Сборник научных трудов. СО РАСXII ВНИИБТЖ. - Омск - 2001. - С.159-160.
4. Найманов А.Х., Овдиенко Н.П., Осипова Е.П. и др. ПЦР при диагностике туберкулеза крупного рогатого скота// Ветеринария. - 2004. - №10. - С. 19-23.
DIFFERENTIAL DIAGNOSIS OF TUBERCULOSIS WITH APPLICATION OF CHEMILUMINESCENT
V.G. Oschepkov, L.A. Taller, G.M. Dyusenova, T.A. Vassimirskaya, E.Yu. Sekin
Key words: tuberculosis, diagnostics, pathogenic mycobacterium
ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ПРЕПАРАТОВ НАИММУНОБИОХИМИЧЕСКУЮ РЕАКТИВНОСТЬ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
В. В. ХРАМЦОВ, доктор ветеринарных наук, зав. лабораторией
H.A. ОСИПОВА, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник
Т. А. АГАРКОВА, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник
Н.Г. ДВОЕГЛАЗОВ, кандидат ветеринарных наук, научный сотрудник ИЭВСиДВ
Резюме. Изучено влияние биологически активных препаратов (БАП), прежде всего випраксина, на им-мунобиохимическую реактивность животных. Ключевые слова: иммуномодуляторы, биологически активные препараты, альнорин, вестин, корригин, випраксин, иммунобиохимическая реактивность, антигенная нагрузка, интактный, гемопоэз.
В условиях изменения окружающей среды увеличивается влияние биотических и абиотических факторов на адаптивные реакции организма животных, зависящие главным образом от резервов их иммун-
ной системы, основная задача которой — контроль постоянства внутренней среды и защита от экзо- и эндоантигенов [11,12].
Согласно сведениям из специальной литературы, у животных чаще всего встречается функциональная иммунологическая недостаточность, когда организм не в состоянии противодействовать антигенной нагрузке, вызванной, как правило, ассоциациями бактерий, грибов, вирусов и других биологических агентов [3].
При лейкозе крупного рогатого скота также развивается иммунологическая недостаточность, обусловленная влиянием ВЛКРС [5, 6, 9]. Это определяет необходимость количественной или качественной коррекции иммунной системы, в том числе с помощью биологически активных препаратов.
Испытания иммуномодулирующих средств, проведенные ранее при инфекционных и незаразных болезнях животных, показали разную степень их эффективности [1,4, 13].
Цель наших иследований — дальнейшее изучение свойств и характеристик биологически активных препаратов, а также возможности их обоснованного и рационального использования в системе противоэпи-
УКД 619:616.98:636.2
Н.И. Прокопьева, Н.А. Федорова (ГНУ Якутский НИИ сельского хозяйства СО РАСХН), Н.С. Иванова (Управление ветеринарии г. Якутска)
КОНТРОЛЬ БЛАГОПОЛУЧИЯ СТАД КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ПО ТУБЕРКУЛЕЗУ
Широкое распространение неспецифических аллергических реакций у крупного рогатого скота осложняет контроль благополучия животноводческих хозяйств Республики Саха (Якутия) по туберкулезу.
Большинство авторов основными причинами неспецифических реакций считают сенсибилизацию организма животных атипичными микобактериями, широко распространенными в окружающей среде [1,2], другие указывают на определенную зависимость выявления реагирующих животных от сезонов года в зонах с умеренным климатом [3], а также от поражений животных инвазиями [4].
Неспецифическая сенсибилизация в значительной степени снижает диагностическое значение внутрикожной туберкулиновой пробы.
Цель исследований - уточнение эпизоотической ситуации по туберкулезу в благополучных стадах крупного рогатого скота.
Материалы и методы. Исследование проводили в течение 2 лет (2002-2003 гг.), в 2 хозяйствах, благополучных по туберкулезу крупного рогатого скота, где при плановых аллергических исследованиях выделяют животных, реагирующих на ППД туберкулин для млекопитающих. При диагностическом убое таких животных типичных для туберкулеза изменений не обнаруживают, а при лабораторных исследованиях получают отрицательный результат. Плановые диагностические исследования проводили согласно "Наставлениям по диагностике туберкулеза животных" (2002), в схеме дифференциальной диагностики использовали феномен выпадения туберкулиновых реакций при повторных исследованиях реагирующих животных половинной дозой туберкулина (5000 МЕ) и пальпебральную пробу. От реагирующих животных брали пробы молока и фекалий на бактериологические исследования и фекалий на гельминтологические исследования.
В зависимости от сезонов года проводили забор проб с объектов животноводческих помещений и почвы с территорий летних ферм и пастбищ.
Бактериологические исследования проводили согласно ГОСТ 26072-84 "Методы лабораторной диагностики туберкулеза" и ГОСТ 27318-87 "Методы идентификации атипичных микобактерий", дополнительно использовали метод газожидкостной хроматографии (1987). Гельминтологические исследования проводили по общепринятым методикам.
Результаты исследований. При исследовании 5948 животных было выявлено 84 (1,41%), реагирующих на ППД туберкулин для млекопитающих. Реагировали в основном коровы, у молодняка реакции отмечали в единичных случаях. Результаты дифференциальной диагностики туберкулиновых реакций представлены в табл.
| Таблица |
| Результаты дифференциальной диагностики туберкулиновых реакций у крупного рогатого скота |
 |
Анализ результатов плановых аллергических исследований показал, что за исследуемый период из 84 реагирующих животных выявлено 18 (21,4%) при весенних аллергических исследованиях, тогда как осенью - 66 (78,6%) реагирующих животных. При этом у большинства животных реакции на туберкулин исчезали при каждом последующем исследовании и появлялись впервые у новых животных. Из 84 реагирующих животных реакции повторились у 13 (15,4%) животных на стандартную дозу ППД туберкулина, однако на половинную дозу (5000 МЕ) они выпали.
При диагностическом убое 4 животных изменений, характерных для туберкулеза, не отмечено.
При исследовании 72 проб молока от коров, реагирующих на туберкулин в стандартной дозе, выделено 18 (25,0%) культур, основную часть которых составляли микобактерии III группы по классификации Раньона, нокардии и родоккоки. В 3 случаях эти виды микроорганизмов выделены из молока коров, давших повторно реакции. При этом проявление кожных реакций от вида выделяемых культур не зависело.
Из 72 проб фекалий реагирующих животных выделены микобактерии III и IV групп по Раньону, нокардии и родоккоки, а также дрожжевые грибы и рода аспергилл.
При бактериологическом исследовании 240 проб с объектов животноводческих помещений, почвы территорий летних ферм и почвы пастбищ выделено 45 (18,7%) культур, основную часть которых представляли микобактерии III и IV группы (71,0%) и 13 (28,8%) культур отнесены к нокардиям и родоккокам.
В отдельных случаях отмечены ассоциации микобактерий и грибов рода аспергилл, микобактерий и дрожжевых грибов, а также родококков и дрожжевых грибов. Ни в одном случае возбудитель туберкулеза выделен не был.
При сопоставлении результатов гельминтологических исследований 72 проб фекалий от реагирующих и 72 - не реагирующих животных и внутрикожных туберкулиновых реакций не установили достоверной взаимосвязи между ними. Гельминты и их сочетания были обнаружены в равной степени как у реагирующих, так и не реагирующих на ППД туберкулин животных.
Заключение. Исследования показали, что атипичные микобактерии и близкородственные микроорганизмы более широко распространены в окружающей среде, чем патогенные формы. Попадая в организм животного, они персистируют в нем, вызывая кратковременную сенсибилизацию к туберкулину. Особенностью этих реакций является нестабильность их проявления. В конечном итоге, при каждом исследовании на туберкулез в стаде реагирует определенный процент здоровых животных.
Таким образом, проведение комплексных исследований в благополучных хозяйствах, где выделяют животных, реагирующих на ППД туберкулин для млекопитающих, позволяет выяснить природу аллергических реакций, источники сенсибилизации животных к туберкулину и контролировать благополучие стад крупного рогатого скота по туберкулезу.
Литература
1. Созинов В.А. Роль атипичных микобактерий в эпизоотическом процессе/ В.А. Созинов, В.П. Федоряка, И.Т. Нечваль // Ветеринария. - 1996. - № 3. - С.27-30.
2. Найманов А.Х. Дифференциация аллергических реакций на туберкулин / А.Х. Найманов // Ветеринария. - 2002. - № 3. - С.10-13.
3. Ходун Л.М. О сезонной зависимости аллергических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота/ Л.М. Ходун, В.П. Курдюк // Ветеринария. - 1987. - №12. - С.38-39.
4. Харитонов М.В. Неспецифические реакции на туберкулин у крупного рогатого скота благополучных по туберкулезу хозяйств / М.В. Харитонов, М.А. Сафин // Проблемы инфек. и инваз. болезней в животноводстве на современном этапе. - М., 1999. - С.178-179.
Возбудитель: Mycobacterium tuberculosis был открыт Робертом Кохом в 1882 г . Возбудитель туберкулеза человека — М. Tuberculosis ; крупного рогатого скота — М. Bovis ; птиц — М. Avium , это тонкие, прямые, чаще слегка изогнутые палочки, располагающиеся одиночно или группами, аэроб, неподвижен, спор и капсул не образует. Для выращивания возбудителя туберкулеза применяют глицериновые МПА, МПБ, картофель, яичные и синтетические среды. Микобактерии сохраняют жизнеспособность в навозе 7 мес, в фекалиях — 1 год, в воде — 2 мес, в масле — 45 дней, в сыре — 45—100, в молоке — до 10 дней. Нагревание до 70°С убивает за 10 минут, а кипячение инактивирует через 3—5 минут.
Эпизоотология. Течение и симптомы.
Восприимчивы: все виды животных.
Источник возбудителя: больные животные и вирусоносители.
Пути передачи: аэрогенный; через поврежденную слизистую ротовой полости, реже через соски вымени и влагалище, факторы передачи — корма, навоз, вода, подстилка, предметы ухода.
Инкубационный период: от 2—6 недель до появления аллергических реакций.
Туберкулез протекает в основном хронически и бессимптомно.
У крупного рогатого скота чаще поражаются легкие или кишечник. Туберкулез легких сопровождается кашлем и др. признаками поражения легких и плевры. При туберкулезе кишечника наблюдаются диарея, сменяющаяся запорами, выделение с фекалиями слизи с примесью крови. При поражении вымени у крупного рогатого скота увеличены лимфоузлы, вымя становится бугристым. Туберкулез половых органов у коров проявляется усилением охоты, у быков — орхитами. При генерализованном туберкулезе наблюдается увеличение поверхностных лимфоузлов, животные сильно худеют, быстро утомляются. У них пропадает аппетит, слизистые оболочки анемичны.
У овец и коз туберкулез протекает, как и у крупного рогатого скота. У свиней — увеличение подчелюстных, заглоточных и шейных лимфоузлов. У лошадей туберкулез встречается редко, и в основном протекает латентно. Туберкулез птиц протекает с неясными клиническими признаками. Наблюдают исхудание, малоподвижность, побледнение и сморщенность гребня, атрофия грудных мышц. Генерализация процесса сопровождается поражением кишечника.
Патолого-анатомические изменения. Характерным для туберкулеза является наличие в разных органах и тканях животного специфических узелков (туберкул) величиной от просяного зерна до куриного яйца и более. Туберкулезные очаги окружены соединительнотканной капсулой, содержимое их напоминает сухую, крошковатую массу (казеозный некроз). При длительном переболевании туберкулезные узелки могут обыз-вествляться.
Диагностика. Патологический материал направляют как при жизни животного (истечения из носа, бронхиальную слизь, молоко, особенно при увеличении надвыменных лимфоузлов, фекалии, мочу), так и посмертно (пораженные части органов и лимфоузлы бронхиальные, заглоточные, средостенные, предлопаточные, надвыменные. Труп птицы (или тушку) направляют целиком — исследуют пораженные печень, селезенку, легкие, яичники. Проводят туберкулинизацию, гистологические, бактериологические исследования, биопробу, серологические исследования (РСК).
Дифференциальная диагностика. Пастереллез, паратуберкулез, акти-номикоз, диктиокаулез, у свиней — лимфадениты, вызываемые атипичными микобактериями, у птиц — лейкоз.
Профилактика и лечение туберкулеза
Лечение не проводится, больных и положительно реагирующих животных-уничтожают..
Профилактика и меры борьбы основаны на охране благополучных хозяйств от заноса инфекции, систематического исследования животных для выявления больных, оздоровлении неблагополучных по туберкулезу хозяйств, охране людей от заражения туберкулезом. В благополучных хозяйствах основной метод исследования животных — плановая поголовная внутрикожная туберкулинизация. Всех животных, поступивших в хозяйство, карантируют в течение 30 суток. Туберкулез считают установленным, если у животных, реагирующих на туберкулин, диагноз подтверждается патолого-анатомическими данными и лабораторными исследованиями. Оздоровление неблагополучных по туберкулезу хозяйств проводят путем убоя больных животных, изолированного выращивания молодняка, осуществления ветеринарно-санитарных и организационно-хозяйственных мероприятий. Хозяйство считают оздоровленным от туберкулеза после прекращения выявления больных животных, получения отрицательных результатов контрольных исследований, заключительной дезинфекции животноводческих помещений и комплекса хозяйственных мероприятий, предусмотренных специальной инструкцией.
Ветеринарно-санитарная экспертиза. Тощие туши при обнаружении в них любой формы поражения туберкулезом органов или лимфоузлов, а также туши, независимо от состояния упитанности, головы, внутренние органы, в том числе и кишечник, при генерализованном туберкулезном процессе — направляют на утилизацию.
Туши нормальной упитанности, кроме туш свиней, при наличии туберкулезного поражения в лимфоузлах или других тканях направляют на выработку мясных хлебов, консервов или проварку. Внутренний жир перетапливают.
Пораженные органы и ткани утилизируют. При обнаружении в свиных тушах туберкулезных обызвествленных очагов только в подчелюстных лимфоузлах последние удаляют, голову вместе с языком направляют на проварку, а туши, внутренние органы и кишечник выпускают без ограничений. При поражении только брыжеечных лимфоузлов на утилизацию направляют только кишечник, а тушу и остальные внутренние органы выпускают без ограничения.
При обнаружении в лимфоузлах свиных туш туберкулезоподобных поражений, вызванных коринобактериями, тушу и органы выпускают без ограничений после удаления пораженных лимфоузлов. При обнаружении туберкулезного поражения в костях все кости скелета направляют на утилизацию, а мясо (при отсутствии туберкулезных поражений) — на проварку или в консервы.
Паратуберкулез (паратуберкулезный энтерит, болезнь Йоне) – хроническое инфекционное заболевание жвачных животных, вызванное возбудителем Mycobacterium paratuberculosis. Болезнь характеризуется истощением и гибелью животных, в результате диффузного утолщения слизистой и подслизистой оболочек кишечника. Происходит образование поперечных и продольных складок, нарушая всасывающие функции.
Этиология
Возбудителем заболевания паратуберкулеза является Mycobacterium paratuberculosis. Тонкая, полиморфная, грамположительная, неподвижная палочка, длина которой 0,5-1,5 мкм, ширина – 0,2-0,5 мкм. Она устойчива к кислотно-спиртовой среде, химическим дезинфицирующим средствам и различным проявлениям внешней среды. Способна сохранять патогенность в земле и навозе практически 1 год.
Паратуберкулез поражает крупный рогатый скот, овец, коз, оленей, диких жвачных животных, верблюдов, кроликов. Бактерионосителями могут оказаться свиньи и лошади.
Основными носителями возбудителя заболевания являются животные с открытой и скрытой формой течения паратуберкулеза. С калом, больные животные выделяют огромное количество микобактерий, происходит инфицирование пастбищ, водопоев, кормов, подстилок, помещений и прочих объектов, являющихся факторами передачи этого заболевания.
Прежде всего, паратуберкулез опасен для молодняка до шести месяцев, заражение которого происходит через корм, питье, соски вымени, известна и межвидовая передача.
Симптомы течения паратуберкулеза
Период заражения (инкубации) от 1 месяца до нескольких лет. Специалисты выделяют латентную (скрытую) и открытую (клиническую) формы течения заболевания. Скрытая форма паратуберкулеза отличается отсутствием признаков болезни. Возможен переход данной формы течения болезни в клиническую форму. Чаще всего это происходит после отела (окота) животного. У животного наблюдается общая слабость, снижение удоя, потеря веса, температура тела стабильная, начинается понос. Кал жидкий, с обильной слизью, пузырьками газа и кровью. Болезнь истощает животное, оно не в состоянии стоять, наблюдается шилозадость. Болезнь может длиться несколько месяцев.
Диагностика
Латентная форма течения болезни у животных не диагностируется. Используются бактериоскопические, аллергические (когда в организм вводят птичий туберкулин или паратуберкулин и исследуют результат аллергической пробы) и серологические методы прижизненной диагностики паратуберкулеза.
Дифференциальный диагноз
Для того, чтобы специалисту поставить правильный диагноз больному животному необходимо исключить кокцидиоз, туберкулез, глистные инвазии и диетические поносы. Характерной особенностью диетических поносов является массовость. Глистные инвазии и кокцидиоз подтверждается в результате копрологического исследования, особенность кокцидиоза – кал содержит много крови, понос кратковременный. При туберкулезе энтерит распространен не часто, наблюдается поражение лимфоузлов и кахексия.
Лечение
Лечение паратуберкулеза на сегодняшний день не найдено.
Профилактика
Для комплектования стада и при завозе поголовья скота необходимо выбирать благополучные по паратуберкулезу хозяйства, так как носителями заболевания являются латентно больные животные. Кормление и содержание поголовья должно соответствовать зоогигиеническим требованиям. Для своевременного выявления очагов паратуберкулеза, рекомендовано тщательно осматривать кишечник после убоя животного и поступления на мясокомбинат.
При диагностике паратуберкулеза на хозяйство накладываются ограничения. Клинически больные животные должны своевременно сдаваться на убой. Для выявления скрытой формы заболевания животных рекомендовано проводить аллергические пробы и серологический метод диагностики. Молоко молодняку давать только после кипячения и пастеризации. Навоз сжигать или подвергать биотермическому обеззараживанию в течение двух лет. Если в хозяйстве подтверждено заболевание животных паратуберкулезом, необходимо провести дезинфекцию сельхозпомещений. Карантин снимают с хозяйства, если получены отрицательные результаты исследования птичьим туберкулином или серологическим методом диагностики паратуберкулеза в течение 1 года.
По материалам пресс-службы ФГБУ "Краснодарская межобластная ветеринарная лаборатория" Россельхознадзора
12 мая 2014 г.
Найманов А. Х., Калмыков В. М.
Характеристики
Описание товара
Обобщены результаты научных исследований авторов и других отечественных и зарубежных ученых, а также изложены основные современные представления об эпизоотологии, диагностике, профилактике и мерах борьбы с туберкулезом сельскохозяйственных и некоторых видов диких животных.
Авторы выражают искреннюю благодарность и признательность научным и практическим ветеринарным специалистам, принимавшим участие в научных исследованиях по данной проблеме.
Предисловие
Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. Я. Р. Коваленко является ведущим научным учреждением страны в области инфекционной патологии животных.
26 апреля 1922 г. в Москве в ГИЭВ (далее — ВИЭВ) был открыт отдел по изучению туберкулеза, который впоследствии стал основоположником борьбы с туберкулезом животных в России.
Первым заведующим этого отдела стал профессор С. Н. Вышелесский (1922–1928). Затем отдел возглавил профессор П.П.Вишневский (1928–1935, 1938–1949). В последующем в разные годы отелом по изучению туберкулеза руководили профессор М. К. Юсковец (1937–1941, 1949–1956), профессор И. В. Поддубский (1956–1971), профессор В. Е. Щуревский (1971–1981), профессор Н. П. Овдиенко (1981–2001). С 2001 г. и по настоящее время теперь уже лабораторией микобактериозов руководит профессор А. Х. Найманов.
За 95-летнюю деятельность лаборатории микобактериозов было создано научное направление — научная школа, объединившая в исследовательский коллектив не только научных сотрудников ВИЭВ, но и ученых других организаций. Это сообщество единомышленников — исследователей, соратников и учеников, объединенных решением задачи по совершенствованию средств и методов диагностики, оздоровительных и профилактических мероприятий при туберкулезе и паратуберкулезе животных. Особенностью научной школы лаборатории микобактериозов является общность и защита научных идей, тесная связь с практическими ветеринарными специалистами, комплексное, коллективное выполнение крупной задачи, недоступной для решения одним ученым, подготовка молодых кадров ученых и преемственность поколений. За годы существования научной школы по изучению проблемы диагностики и профилактики туберкулеза и паратуберкулеза животных в ВИЭВ были защищены 17 докторских и 78 кандидатских диссертационных работ.
С 2001 г. бессменным руководителем этой научной школы является профессор Али Хусинович Найманов. Вся научная деятельность А. Х. Найманова с 1975 г. связана со Всесоюзным, затем Всероссийским институтом экспериментальной ветеринарии им. Я. Р. Коваленко, где он работал младшим, старшим, ведущим научным сотрудником, а с 2001 г. — заведующим лабораторией микобактериозов. В настоящее время А. Х. Найманов является ведущим ученым Российской Федерации по микобактериальным болезням животных. Он опубликовал 270 научных работ, в том числе 4 монографии, является соавтором 10 патентов и авторских свидетельств, 4 методических рекомендаций и пособий. Под руководством профессора А. Х. Найманова защищены 10 кандидатских диссертаций, он является научным консультантом четырех соискателей ученой степени доктора наук.
Проведены исследования по совершенствованию методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота в индивидуальных хозяйствах. Предложен специальный комплекс методов диагностики туберкулеза для индивидуальных хозяйств, а также индивидуальный учет симультанной пробы по каждому исследованному животному.
Внедрение в широкую ветеринарную практику основных положений утвержденных нормативных документов позволило значительно уменьшить проблему туберкулеза крупного рогатого скота. Так, в 1987 г. в Российской Федерации насчитывалось 1945 неблагополучных по туберкулезу пунктов, а на 01.01.2017 — только 6 неблагополучных.
Следует отметить, что в последние годы по мере сокращения количества неблагополучных пунктов и заболевших туберкулезом животных, т. е. улучшения эпизоотической ситуации, увеличивается выявление реагирующих животных с неспецифическими реакциями на туберкулин в благополучных хозяйствах. В последние годы в стране сложилась такая ситуация, когда количество реагирующих животных в благополучных хозяйствах в 9 раз превышает количество таковых в неблагополучных хозяйствах.
Коллектив лаборатории микобактериозов ВИЭВ достойно продолжает дело отдела по изучению туберкулеза ГИЭВ.
Читайте также:
