Вакцина против бруцеллеза шт 82 инструкция по применению в ветеринарии
К.В. Шумилов, О.Д. Скляров, А.И. Климанов,Д.С. Зверев
И.Л. Никифоров
Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов (ФГУ "ВГНКИ"), г. Москва
Алтайский государственный аграрный университет, г. Барнаул
Заражению бруцеллезом подвержены все виды млекопитающих, в том числе человек. Бруцеллез имеет тенденцию к широкому распространению и проявляется в виде массовых абортов, бесплодия и яловости маточного поголовья, снижения жизнеспособности приплода, уменьшения продуктивности животных. Это обусловлено приспособляемостью и способностью возбудителя бруцеллеза размножаться в организме животных и долго сохранять жизнеспособность во внешней среде.
В России бруцеллез крупного рогатого скота впервые зарегистрировали в 1902 году. Заболевание животных было связано с импортом больного племенного скота.
Анализ эпизоотологических данных с 1946 года по настоящее время показывает, что бруцеллез крупного рогатого скота на территории России не регистрировался только в Камчатской области.
До 1952 года борьба с бруцеллезом в стране сводилась к проведению диагностических исследований и удалению из стад больных животных, без применения противобруцеллез-ных вакцин. В связи с осложнением эпизоотической ситуации в 1953 году в систему противобруцеллезных мероприятий была включена иммунизация животных вакциной из штамма В. аЬогт.и5 19. Вакцину применяли до 1970 года. За время применения вакцины многие хозяйства, и даже целые области, были оздоровлены от болезни. Однако, в регионах с широким распространением бруцеллеза эффективность оздоровительных мероприятий оказалась недостаточной. В первую очередь это было обусловлено высокой агглютиногенностью вакцины. Агглютинины и комплементсвязывающие антитела сохраняются в организме иммунизированных животных до 5-8 лет, что чрезвычайно осложняет дифференциацию таких животных от больных бруцеллезом.
С 1974 года в России в общем комплексе противобруцеллезных мероприятий применяются вакцины из штаммов В. аЬог1из 82 и 19, а с 1997 года еще и из штаммов В. аЬоПиз 75/79-АВ и 17/100.
За 33 года проведения противобруцеллезных мероприятий с применением указанных вакцин и смены 5-6 поколений коров количество неблагополучных по бруцеллезу пунктов в стране значительно скоратилось. Так, если на конец 1974 года в России числилось 5570 неблагополучных пунктов, то на 1 января 2008 года их осталось 68. За 33 года работы с применением этих вакцин и смены 5-6 поколений коров к 2008 году количество неблагополучных пунктов по бруцеллезу и заболевших животных значительно сократилось.
Вакцина против бруцеллеза крупного рогатого скота из штамма В.аЬогШз 75/79-АВ сухая живая (ФГУ "ВГНКИ" и Алтайская НИВС) и инактивированная адъювант-вакцина против бруцеллеза крупного рогатого скота из штамма В.аоогтиз КВ 17/100 (ФГУ "ВГНКИ") были разработаны с учетом формирования новых форм собственности и складывающейся эпизоотической ситуации по бруцеллезу, обусловивших необходимость иммунизировать ранее не вакцинированных стельных коров и нетелей.
Исходная культура вакцинного штамма В.аоогтиз 75/79-АВ была выделена в 1979 году от коровы, в 1974 г. иммунизированной и в 1976 г. реиммунизированной вакциной из штамма В.аЬогтиз 82. В результате целенаправленной селекции выделенной культуры путем многократных пассажей через организм морских свинок и телок и на питательных средах был получен штамм В.аЬоПиз 75/79-АВ.
В ходе комиссионного изучения на морских свинках и крупном рогатом скоте разного возраста было установлено, что культура вакцинного штамма приживляется в организме привитых животных в сравнительно короткие сроки, расселяясь в генерализованной форме в течение 60 дней у морских свинок и 30 дней у телок. Штамм не вызывает в лимфатических узлах и внутренних органах морских свинок патологических изменений, характерных для бруцеллеза, не мигрирует от иммунизированных на неиммунизированных животных.
По результатам исследования сывороток крови в РА и РСК с 5 -бруцеллезным антигеном крупный рогатый скот к 90-му дню после иммунизации вакциной из штамма В. аЬоПиз 75/79-АВ почти полностью утрачивает агглютинины и комплементсвязывающие антитела.
Не зарегистрировано случаев выделения культуры вакцинного штамма из молока от коров периодически исследованных в течение 3 месяцев после иммунизации.
С целью изучения абортогенных свойств за 1004 коровами и нетелями (стельными телками) с разным сроком стельности, иммунизированными вакциной 75/79-АВ наблюдали до отела. Из указанного числа абортировали 2 коровы на 7 и 30 сутки после иммунизации, что было не связано с введением вакцины.
Иммуногенные свойства вакцины были изучены на морских свинках и телках.
В первом опыте использовали 74 морские свинки живым весом 350-400 г., сформированные в группы, в том числе три опытные - по 20 животных в каждой и одна - контрольная, насчитывающая 14 животных. Морских свинок первой группы иммунизировали культурой штамма 75/79-АВ, второй - штамма 19, третьей - штамма 82, четвертой - не иммунизировали. Через 90 дней после иммунизации всех животных заразили вирулентной культурой В. аЬоПиз 54, а через 35-37 дней убили для бактериологического исследования. Согласно полученным результатам, заражению противостояли 88,8 % животных, иммунизированных вакцинной из штамма В. аЬогтиз 75/79 - АВ, 65,0 % - из штамма 82 и 84,2 % - из штамма 19. Все контрольные морские свинки заразились.
Три опыта было проведено с использованием 95 телок. В первом - на телках 4-х месячного возраста, сформированных в 3 опытные и одну контрольную группы, была определена оптимальная иммунизирующая доза вакцины (табл. 1).
Животным опытных групп ввели вакцину в разных дозах. Спустя 6 месяцев телок опытных и контрольной групп заразили стандартной культурой вирулентного штамма В. abortus 54-М-ВГНКИ, суспендированной в физиологическом растворе, конъюнктивально в дозе 15 млн. микробных клеток из расчета по 7,5 млн. м. кл. в каждый
глаз в объеме 0,1 мл.
Через 48 дней после заражения животных убили. Для бактериологического исследования были отобраны лимфатические узлы и внутренние органы, по 21 пробе патологического материала от каждой.
Как видно из материалов таблицы, оптимальная иммунизирующая доза вакцины составляет 100 млрд. м. к. Вакцина в указанной дозе обеспечила защиту от заражения культурой вирулентного штамма бруцелл 100 % иммунизированных животных при заражении всех контрольных неиммунизированных телок.
Второй опыт был посвящен сравнительному изучению иммуногенных свойств вакцины из штамма В. abortus 75/79-АВ, адъювантвак-цины из штамма В. melitensis "Невский-13" и вакцины из штамма В. abortus 82. Для исследований из 26 телок 15-18-ти месячного возраста сформировали 4 группы животных. В первых трех группах было по 7 голов и в четвертой (контрольной) - 5 голов. Схема и результаты опыта приведены в таблице 2.
Телок первой группы иммунизировали суспендированной в физиологическом растворе двухсуточной агаровой культурой штамма В. abortus 75/79-АВ, подкожно в область средней трети шеи в дозе 100 млрд. м. к. в объеме 5 мл, животных второй группы - такой же культурой из штамма 82. Адъювантвакцину ввели телкам третьей группы подкожно в область подгрудка в дозе 450 млрд. м. к. в объеме 3 мл. Телок контрольной группы не иммунизировали.
Через 35 дней после иммунизации всех животных заразили путем нанесения на конъюнктиву каждого глаза по 0,1 мл взвеси стандартной культуры вирулентного штамма В. abortus 54-М-ВГНКИ в дозе 15 млн. м. к.
Убой и бактериологическое исследование патологического материала от подопытных и контрольных животных провели через 39 дней после заражения.
Согласно результатам опыта, вакцины из штаммов В. abortus 75/79-АВ и 82 обеспечили защиту от заражения культурой вирулентного штамма бруцелл 28,6 % иммунизированных животных, а адъювантвакцина из штамма В. melitensis "Невский-13" - 42,8 %, при 100 %-ном заражении неиммунизированных животных.
В третьем опыте проведен сравнительный контроль иммуногенных свойств производственных серий вакцин из штаммов KB 17/100, 75/79-АВ, 19, изготовленных на Щелковском биокомбинате.
Штамм В. abortus KB 17/100, находящийся в R - форме, получен путем целенаправленной селекции по культуральным, морфологическим, биохимическим и антигенным свойствам из культуры вакцинного штамма В. abortus 104-М в S - форме.
Штамм безвреден для лабораторных животных. При введении мышам в дозе 250 млн. микробных клеток и морским свинкам в дозе 2*10э он не вызывает у них патологических изменений, характерных для бруцеллеза.
Остаточная вирулентность штамма ниже, чем у исходного штамма, ИД50 для мышей линии С57Блек/6 составляет 5500 микробных клеток.
Вакцина из штамма KB 17/100 представляет собой эмульсию типа "вода в масле". При введении вакцины в дозе 2*109 микробных клеток морским свинкам и в дозе 7*109 микробных клеток кроликам у животных вырабатываются только R -антитела в титрах от 1:160 до 1:3200.
В опыте по определению иммуногенности использовали
35 телок в возрасте 14-17 месяцев из хозяйства, благополучного по бруцеллезу крупного рогатого скота по данным серологического исследования животных перед вакцинацией и с учетом эпизоотической ситуации.
Каждой вакциной иммунизировали по 10 телок. Адъю-вант-вакцину вводили животным подкожно в область подгрудка в объеме 3 мл (4,5* 10" м. к.), вакцину из штамма В. abortus 19 - подкожно в область задней трети шеи в дозе 80 млрд. м. к. в объеме 4 мл, вакцину из штамма В. abortus 75/79-АВ подкожно в область задней трети шеи, в дозе 100 млрд. м. к. в объеме 5 мл. Через 6 месяцев всех иммунизированных и контрольных (неиммунизированных) телок заразили вирулентной культурой В. abortus 54-М-ВГНКИ конъюнктивально в дозе 10 млн. м. к.
Через 30 дней после заражения телок убили, а внутренние органы и лимфатические узлы (25 объектов) от них подвергли бактериологическому исследованию (табл. 3).
В результате проведенного опыта существенных различий между количеством животных, иммунизированных испытуемыми вакцинами, и защищенных от заражения культурой вирулентного штамма не установлено.
В производственных условиях Саратовской области применение вакцины вакцины из штамма KB 17/100 было начато в 1998 году. В течение последующих 3-х лет вакциной было иммунизировано 197590 голов крупного рогатого скота, что позволило в относительно короткое время (8-24 месяца) оздоровить хозяйства 6-ти районов от бруцеллеза крупного рогатого скота.
В целом, полученные резульгаты позволяют заключить, что вакцина из штамма В. abortus 75/79-АВ является иммуно-генной, слабоагглютиногенной и неабортогенной и, таким образом, удовлетворяет основным современным требованиям, предъявляемым к живым противобруцеллезным вакцинам.
К одной из самых перспективных противобруцеллез-ных вакцин следует отнести адъювант-вакцину из штамма KB 17/100, которая не индуцирует синтез S - бруцеллезных антител в диагностических титрах у несенсибилизированных бруцеллами животных, но индуцирует его у крупного рогатого скота с латентной формой бруцеллеза, что позволяет за счет быстрого удаления из стад таких животных, ускорить оздоровление неблагополучных хозяйств; не обладает абортогенными свойствами и может быть использована для иммунизации стельных коров и нетелей, и, будучи инактивированной, не представляет экологической опасности.
Бруцеллёз не только крупного, но и мелкого рогатого скота на протяжении многих лет остается одним из самых распространённых заболеваний в Казахстане. Как предотвратить болезнь с помощью вакцинации – читайте в интервью с доктором ветеринарных наук, профессором, академиком НАН РК Николаем Петровичем Ивановым (на снимке).
– Почему одной из самых распространённых болезней среди КРС в Казахстане на протяжении многих лет остается бруцеллёз?
– Согласно данным ветеринарной статистики, около 20% имеющегося поголовья сельскохозяйственных животных является неблагополучным. Проблема повсеместной ликвидации бруцеллеза среди животных представляет значительные трудности из-за: его широкого распространения, способности возбудителя к обитанию в организме самых разнообразных видов живых существ, а также, в ряде случаев, латентного (не проявляя себя) течения инфекции и связанные с ним сложности диагностики и специфической профилактики заболевания.
– Первое, что нужно предпринять с целью недопущения заражения скота бруцеллёзом?
-Выполнять полный комплекс организационно-хозяйственных, ветеринарно-санитарных и специальных ветеринарных мероприятий. Все эти меры должны быть отражены в плане противобруцеллезных мероприятий, который должен быть комплексным (воздействовать на все три звена эпизоотической цепи), своевременным и реально выполнимым (согласно имеющимся финансовым и материально-техническим средствам). В нем должны быть указаны мероприятия, сроки их исполнения и ответственные лица.
– А, что нужно предпринять уже в случае появления болезни среди крупного рогатого скота?
-При появлении инфекции нужно:
- заменить все неблагополучное поголовье здоровыми, то есть не инфицированными животными;
- проводить регулярные (через каждые 15-20 дней) диагностические исследования с последующим выделением и убоем выявленных больных животных;
- применять вакцинные препараты с последующими, поствакцинальными исследованиями, согласно инструкции по применению вакцины.
– Какие, в данном случае, существуют виды и назначения вакцин?
– Существующие противобруцеллёзные вакцины условно подразделяются на следующие группы, которые различаются по антигенности, реактогенности, иммуногенности и другим признакам.
1.Агглютиногенные. Эти препараты являются иммуногенами. Но их применение не рекомендуется для взрослого поголовья, так как они индуцируют антитела, которые в последующем не позволяют проводить диагностические исследования.
2.Слабоагглютиногенные. Они выгодно отличаются от первой группы, так как создают возможность проводить диагностические исследования в относительно короткие сроки поствакцинального периода. Одной из наиболее распространённых в нашей стране вакцин для иммунизации против бруцеллёза крупного рогатого скота является вакцина из штамма В.abortus 82. Отрицательная сторона этого препарата – чрезмерная реактогенность. В организме беременных животных эта вакцина вызывает аборты, что сдерживает её применение на стельном поголовье крупного рогатого скота.
3.Неагглютиногенные. Наз- ванные вакцины обладают выраженными провоцирующими свойствами. В организме латентно больных животных они обостряют течение инфекции, то есть позволяют выявить максимальное количество инфицированных особей.
4.Инактивированные вакцины. К н им о тносятся п репараты из агглютиногенных и неагглютиногенных штаммов. Эти вакцины, в том числе Казахского НИВИ находятся на стадии производственных испытаний и пока не имеют широкого практического применения.
– В каких областях Казахстана наиболее распространена болезнь?
– Наибольшее число неблагополучных пунктов и количество больных животных среди КРС отмечается в северных и центральных регионах страны, а мелкий рогатый скот чаще поражён на юге и юго-востоке республики. В некоторых областях возрастает число случаев заболевания людей.
– Что включают в себя противобруцеллёзные мероприятия?
– Специальные противобруцеллёзные мероприятия включают своевременную и качественную диагностику, в особых случаях применение средств специфической профилактики и антибактериальных препаратов. Для выявления источника инфекции, с целью последующей его ликвидации, используют различные диагностические приёмы. К примеру, серологические методы и аллергическая проба базируются на иммунологических реакциях. Следует особо отметить, что иммунологическая реактивность животных тесно связана с видовыми, индивидуальными и возрастными особенностями организма.
Помимо этого,содержать невакцинированное поголовье к настоящему времени возможно только при отсутствии угрозы заражения животных. В других хозяйствующих субъектах должна быть предусмотрена иммунизация молодняка (после предварительного сероаллергического исследования) и возможна повторная вакцинация половозрелых животных за 2-3 месяца до осеменения.
А главное, во всех случаях нужно использовать вакцины и методы их применения, разрешённые для иммунизации животных на территории Республики Казахстан.
– Кто наиболее чувствите лен к бруцеллёзной инфекции?
– Есть ли какие-то новые современные методы вакцинации КРС против бруцеллёза?
Важнейшим и перспективным методом борьбы с инфекционными болезнями является иммунопрофилактика. Первой массово применяемой вакциной против бруцеллеза была вакцина из штамма B rucella abortus 19, которая широко применялась в СССР, США и многих других странах мира. В СССР долгое время использовали вакцину из штамма B. abortus 82. Существенным недостатком этих вакцин является наличие в крови вакцинированных животных антител, таких же, как и у истинно больных животных.
Патогенные (вызывающие заражение животных и человека) бруцеллы имеют на своей поверхности S-антиген. Но точно такой же S-антиген имеется и у бактерии вакцинных штаммов (№19 и №82). Поэтому при вакцинации вакцинами шт.19 и шт.82 у животных в крови появляются антитела к S-антигену. Эти антитела обнаруживаются у животных около года при исследовании сыворотки крови методом РСК (реакция связывания комплемента) и в течении нескольких лет при исследовании методом ИФА (ИФА-иммуноферментный анализ – реакция в несколько раз чувствительная чем РСК).
В случаях, когда исследуемая кровь оказалась положительной в РСК или ИФА специалисты ветеринарной лаборатории не могут твердо ответить, чем вызвана положительная реакция: вакциной, или животное заражено патогенными бруцеллами. Если посчитать, что положительная реакция вызвана вакциной, то животное будет считаться здоровым. Но нет гарантии, что это животное не больное (положительная реакция вызвана патогенными бруцеллами). Тогда это животное, оставленное в стаде, будет продолжать перезаражать остальных животных.
Но возможен вариант, когда вакцинированное животное посчитают больным и отправят на забой.
В нынешних постперестроечных условиях большинство поголовья скота находится в мелких хозяйствах и пасется на общих выпасах, усилилась миграция скота между областями. В таких условиях отследить вакцинированных животных и доказать что это вакцинированные а не больные животные становится невозможным.
Обидно будет тем фермерам, кто купит скот, вакцинированный шт.82 или шт.19, отрицательный при продаже, но в дальнейшем этот скот могут признать положительно реагирующим на бруцеллез в ИФА. А ведь этот скот может оказаться больным, замаскированным вакциной.
Вакцина РБ-51. Более 20 лет в США была разработана оригинальная вакцина на основе штамма B. abortus RB-51. Эта вакцина отличается тем, что в отличии от штаммов 19 и 82, не имеет в своем составе S-антиген. То есть при введении вакцины РБ-51 не образуются антитела к S-антигену. Если при исследовании крови реакция РСК или ИФА будут положительными (обнаружены антитела к S-антигену), то это животное заражено патогенными бруцеллами.
То есть введение вакцины не мешает постановке точного диагноза. Да и сам факт введения вакцины РБ-51 не определяется никакой серологической реакцией из применяемых в ветлабораториях, при этом обеспечивая иммунитет в стаде крупного рогатого скота при уровне защиты в диапазоне от 75 до85% в зависимости от возраста, способа введения вакцины и преобладание бруцеллеза в вакцинированном стаде.
Применение вакцины РБ-51 позволило полностью оздоровить США и Канаду - а это сотни миллионов голов скота. Сейчас вакцина РБ-51 широко применяется в Бразилии, Мексике, Аргентине – странах с многомиллионным поголовьем скота.
После проведенных регистрационных испытаний, вакцина РБ-51 зарегистрирована в Реестре ветеринарных препаратов РК и разрешена к применению Комитетом ветеринарного надзора и контроля МСХ РК (№РК-ВП-1-2043-12 от 22.10.2012).
Вакцина РБ-51 применяется однократно (не требуется ежегодной повторной вакцинации). Желательно вакцинировать животных в первом году жизни начиная с 4-месячного возраста, так как у молодых животных лучше вырабатывается иммунитет. Допускается вакцинация взрослых животных. Разрешена и повторная вакцинация – это только усилит иммунную защиту организма.
Животным всех возрастов вводится одинаковый объем вакцины РБ-51 – 2мл (1 разведенная доза). Подкожно, в нижнюю треть шеи.
Перед вакцинацией необходимо провести серологическое исследование крови на бруцеллез. Вакцинировать только отрицательно реагирующих животных
Внимание: вакцина РБ-51 профилактирует бруцеллез, но не излечивает. Поэтому, если Вы вакцинировали больное животное, то оно останется больным. Если Вы вакцинировали животное, которое ранее было вакцинировано вакциной шт.19 или шт.82, то антитела от прежних вакцин будут присутствовать в организме животного. При исследовании сыворотки крови в ветлаборатории будет наблюдаться положительная реакция на бруцеллез.
Противопоказания: в связи с небольшим возможным риском (около 1%) аборта не рекомендуется прививать глубоко стельных животных. Риск возникновения абортов у вакцин шт.19 и шт.82 значительно выше. Нельзя вакцинировать больных, ослабленных, истощенных животных.
Бруцеллез сельскохозяйственных животных является одной из основных проблем ветеринарной науки и практики, актуальность которой определяется, прежде всего, опасностью для здоровья человека, а также широкой распространенностью, регистрируется на территории Республики Саха (Якутия), Ямало-Ненецкого и Чукотского автономных округов, Хабаровского и Красноярского краев, Тюменской, Магаданской, Камчатской и Амурской областей. Сотрудниками ВНИИЭВ им. Я.Р.Коваленко (М.П. Альбертян, М.И. Искандаров, А.И. Федоров 2013), разработана инструкция по применению слабоагглютиногенной вакцины САВ, лабораторный регламент по производству, контролю и применению слабоагглютиногенной вакцины САВ. Проведено изучение основных биологических свойств слабоагглютиногенной вакцины (САВ) на морских свинках и овцах установлено, что вакцина САВ обладает выраженными иммуногенными свойствами при реиммунизации через 45 дней после иммунизации, а также серопозитивность выпадает через месяц в сыворотке крови лабораторных животных. В связи с этим, изучение иммунологической реактивности при вакцинации оленей слабоагглютиногенной вакциной САВ является актуальной задачей [1, 2, 3, 4].
Целью исследований явилось изучение динамики антителообразования при иммунизации северных оленей слабоагглютиногенной вакциной САВ.
В качестве диагностических тестов в опыте при исследовании сыворотки крови северных оленей применяли РБП, РА (классическую), пластинчатую РА, РСК и РИД с О-ПС антигеном. При анализе материалов использованы общепринятые методы корреляционного анализа и статистической обработки по методу Стьюдента. В сыворотке крови определяли уровень специфических антител в зависимости от дозы введения вакцины САВ.
Таблица 1
Схема опытов по иммунологической реактивности оленей
групп
Серологические исследования сывороток крови провели через 30, 60 и на 90 дни после иммунизации по РБП, РА, РСК и РИД.
Результаты исследований. У иммунизированных животных было отмечено в сыворотках крови антителообразование, то есть подъем и угасание титров антител в сыворотке крови, определяли методом РБП, РА и РСК на 30, 60 и 90 дни после иммунизации.
При исследовании сыворотки крови опытных животных в РА была отмечена определенная закономерность сроков появления, максимального подъема и угасания титров антител в зависимости от дозы вакцин (0.2, 0.5, и 0.7 мл).
Повышение местной и общей температуры тела не наблюдалось.
При введении вакцины САВ в сыворотке крови опытных животных титр на 30 день был отмечен в дозе 0,5 мл 1:25-1:50 – агглютинирующих, 1:5-1:10 – комплементсвязывающих антител. Максимальный титр антител наблюдался третьей группе в дозе 0,7 мл 1:50 – агглютинирующих, 1:10 – комплементсвязывающих. На 60 день был отмечен в дозе 0,7 мл 1:25 – агглютинирующих, 1:5 – комплементсвязывающих. На 90 день агглютинирующие и комплементсвязывающие антитела не обнаружены. РИД показала отрицательный результат, т.е. не выявлено положительно реагирующих оленей. Вместе с тем, титр зависит от дозы введения вакцины.
В последующем в течение 18 месяцев была прослежена динамика показателей в сыворотке крови на РА, РСК и РИД. При этом у животных первой и четвертой контрольной группы на РБП, РА, РСК и РИД наличие титров антител не выявлялись.
При введении вакцины САВ в дозе 0,7 мл специфические антитела в диагностических титрах сохраняется до 90 дней. В результате наших исследований установлено, что динамика агглютинирующих и комплементсвязывающих антител зависит от дозы вакцины. Таким образом, иммунизированные животные третей группы сохранили поствакцинальные реакции в низких титрах (Таблица 2).
Таблица 2
Результаты серологических исследований сывороток крови на северных оленях
гр
бруцеллеза
Выводы. При иммунизации северных оленей против бруцеллеза слабоагглютиногенной вакциной САВ динамика агглютинирующих и комплементсвязывающих антител находится в прямой зависимости от дозы вакцины. Максимальный титр антител наблюдался в третьей группе в дозе 0,7 мл 1:50 – агглютинирующих, 1:10 – комплементсвязывающих. На 60-й день был отмечен в дозе 0,7 мл 1:25 – агглютинирующих, 1:5 – комплементсвязывающих. На 90 день агглютинирующие и комплементсвязывающие антитела не обнаружены. Динамика антителообразования находится в прямой зависимости от дозы вакцины. Вакцина САВ не имеет реактогенных свойств и обладает сохранением титра антител в дозе 0,7 мл до 90 дней.
Сообщи о коррупции
Реформа контрольной и надзорной деятельности
Опрос населения о деятельности руководителей
Реестр государственного имущества Челябинской области
2. Определить угрожаемой зоной по бруцеллёзу крупного рогатого скота село Подгорное Троицкого муниципального района Челябинской области.
6. Главному управлению по делам печати и массовых коммуникаций Челябинской области (Федечкин Д.Н.) опубликовать настоящее распоряжение в официальных средствах массовой информации.
7. Организацию выполнения настоящего распоряжения возложить на заместителя Губернатора Челябинской области Феклина И.Е.
8. Настоящее распоряжение вступает в силу со дня его подписания.
от 04.07.2012 г. № 796-р
организационно-хозяйственных, ветеринарно-санитарных, специальных мероприятий
I. Организационно-хозяйственные и ветеринарно-санитарные мероприятия
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
Введение ежедневного осмотра поголовья, при выявлении случаев абортов – принятие срочных мер для уточнения диагноза с обязательным исследованием патологического материала в ветеринарной лаборатории
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
до 1 августа 2012 года, в течение 15 дней после выявления и убоя больных животных
немедленно, со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
перед отменой ограничительных мероприятий
через каждые 15-30 дней до получения двукратного отрицательного результата
глава Кособродского сельского поселения Троицкого муниципального района
Запрещение использования в течение 3 месяцев пастбищных участков, на которых выпасались больные бруцеллёзом животные
немедленно, со дня подписания распоряжения
Запрещение использования непроточных водоёмов для водопоя здорового скота в течение 3 месяцев после прекращения поения из них животных, больных бруцеллёзом
немедленно, со дня подписания распоряжения
II. Специальные мероприятия
со дня подписания распоряжения каждые 15-30 дней до отмены ограничительных мероприятий
со дня подписания распоряжения каждые 15-30 дней до отмены ограничительных мероприятий
Немедленная изоляция положительно реагирующих на бруцеллёз животных и их убой на санитарной бойне
в течение 15 дней со дня выявления больных животных
При получении двукратного (подряд) отрицательного результата по стаду – проведение иммунизации коров против бруцеллёза сухой живой вакциной из штамма 82 Brucella abortus согласно наставлению по применению
немедленно, при получении результата
Проведение вакцинации тёлок против бруцеллёза сухой живой вакциной из штамма 82 Brucella abortus согласно наставлению по применению в 4-5-месячном возрасте, проведение ревакцинации строго через 10 месяцев после первой вакцинации. Тёлок после осеменения формировать в отдельную группу
Перед первым введением вакцины у тёлок 4-5-месячного возраста, а также перед вторым введением вакцины в 14-15-месячном возрасте в обязательном порядке брать кровь для проведения исследования на бруцеллёз
Коров первого отёла формировать в отдельную группу и исследовать на бруцеллёз не позднее, чем через 1-2 месяца после растёла животных всей группы. При получении отрицательного результата по всей группе коров первого отёла незамедлительно вакцинировать против бруцеллёза сухой живой вакциной из штамма 82 Brucella abortus согласно наставлению по применению
III. Охрана здоровья людей
Обследование всех работников животноводства в неблагополучном пункте на бруцеллёз
в течение 15 дней
со дня подписания распоряжения
Проведение инструктажа, обеспечение работников животноводства средствами личной гигиены и индивидуальной защиты (умывальниками, мылом, дезинфицирующими средствами для обработки перчаток, полотенцами, халатами, резиновыми перчатками, клеенчатыми фартуками, специальной обувью)
со дня подписания распоряжения до отмены ограничительных мероприятий
Ведение активной санитарно-просветительской работы среди населения Троицкого муниципального района
Читайте также: