Методы обеззараживания инфицированного материала

3.5.5. ДЕЗИНФЕКЦИОННЫЕ СРЕДСТВА И ТЕХНОЛОГИИ

Обеззараживание исследуемого материала, инфицированного
бактериями I-IV групп патогенности, при работе методом ПЦР

Дата введения 2001-10-01

1. РАЗРАБОТАНЫ Российским научно-исследовательским противочумным институтом "Микроб" (Куличенко А.Н., Касьян И.А., Гаранина С.Б., Майоров Н.В., Тучков И.В., Еремин С.А., Дроздов И.Г., Кутырев В.В.).

2. УТВЕРЖДЕНЫ Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации - Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 23.05.01.

3. ВВЕДЕНЫ ВПЕРВЫЕ

1. Область применения

В настоящих указаниях предложены способы обеззараживания материала, зараженного или подозрительного на зараженность бактериями I-IV групп патогенности, при проведении генодиагностических исследований методом ПЦР.

Указания предназначены для специалистов санитарно-гигиенических, лечебно-профилактических учреждений, генодиагностических центров и лабораторий, применяющих метод ПЦР для обнаружения ДНК возбудителей инфекционных заболеваний.

2. Введение

Внедрение в практику лабораторной диагностики инфекционных болезней полимеразной цепной реакции (ПЦР) должно быть обеспечено соответствующими методами подготовки проб, предусматривающими обеззараживание исследуемого материала.

Используемые обычно в практике табельные средства стерилизации (растворы формалина, хлорамина, перекиси водорода и др.) не могут быть применены при ПЦР-анализе вследствие повреждающего действия на ДНК или ингибирования реакции.

В существующих СП 1.2.011-94* "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности" не предусмотрено выполнение современных генетических методов, в т.ч. полимеразной цепной реакции, которая в настоящее время широко используется для обнаружения различных микроорганизмов, включая и возбудителей опасных инфекций.
________________
* На территории Российской Федерации действуют СП 1.3.1285-03. Здесь и далее по тексту. - Примечание изготовителя базы данных.

В настоящих методических указаниях для работы с не образующими споры бактериями I-II групп патогенности предлагается обработка объектов мертиолятом натрия и затем лизирующим буфером с гуанидинтиоцианатом. При работе с возбудителем холеры может быть использован метод прогревания при 100 °С в течение 30 мин.

Для инактивации не образующих споры микроорганизмов III-IV групп патогенности может быть использован метод термической обработки при 100 °С в течение 30 мин или лизирующим буфером с гуанидинтиоцианатом.

Для обеззараживания материала, содержащего спорообразующие микроорганизмы в т.ч. Bacillus anthracis применяют методический подход, заключающийся в герминации спор с последующей обработкой пенициллином, прогреванием при 100 °С и обработкой лизирующим буфером с гуанидинтиоцианатом.

Разработанные способы инактивации приводят к полному обеззараживанию материала, не повреждают ДНК и не ингибируют ПЦР.

3. Нормативные ссылки

СП 1.2.011-94 "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности" (М., 1994).

СП 1.2.731-99 "Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами" (М., 1999).

Инструкция по контролю специфической стерильности экспериментальных препаратов, приготовленных из культур чумного или холерного микробов (Саратов, 1982).

Временная фармакопейная статья (ВФС) 42-62-ВС-86 для диагностикума бруцеллезного жидкого для реакции агглютинации.

Методические указания "Современные методы микробиологической диагностики туберкулеза" (М., 1975).

Руководство по профилактике чумы (Саратов, 1992).

4. Описание метода

Рекомендуемые средства стерилизации материала при ПЦР-анализе имеют следующие механизмы антимикробного действия. Мертиолят натрия необратимо связывается с SH-, NН и СООН-группами белковых молекул с дальнейшим ингибированием дыхательной цепи микроорганизма.

Купить МУ 3.5.5.1034-01 — бумажный документ с голограммой и синими печатями. подробнее

Распространяем нормативную документацию с 1999 года. Пробиваем чеки, платим налоги, принимаем к оплате все законные формы платежей без дополнительных процентов. Наши клиенты защищены Законом. ООО "ЦНТИ Нормоконтроль"

Наши цены ниже, чем в других местах, потому что мы работаем напрямую с поставщиками документов.

Срочная курьерская доставка (1-3 дня)
Курьерская доставка (7 дней)
Самовывоз из московского офиса
Почта РФ

В указаниях предложены способы обеззараживания материала, зараженного или подозрительного на зараженность бактериями I - IV групп патогенности, при проведении генодиагностических исследований методом ПЦР. Указания предназначены для специалистов санитарно-гигиенических, лечебно-профилактических учреждений, генодиагностических центров и лабораторий, применяющих метод ПЦР для обнаружения ДНК возбудителей инфекционных заболеваний

5.1. Материал (кровь, другие биологические жидкости, экстракты органов, смывы с поверхностей, фильтраты почвы), подозрительный на зараженность не содержащими споры бактериями I - II групп патогенности

5.2. Материал, подозрительный на зараженность не содержащими споры бактериями III - IV групп патогенности

5.3. Материал, подозрительный на зараженность содержащими споры бактериями II - IV групп патогенности

Дата введения	01.10.2001
Добавлен в базу	01.01.2019
Завершение срока действия	05.04.2010
Актуализация	01.02.2020

Раздел Экология
- Раздел 11 ЗДРАВООХРАНЕНИЕ
  - Раздел 11.080 Стерилизация и дезинфекция
    - Раздел 11.080.01 Стерилизация и дезинфекция в целом

23.05.2001	Утвержден	Главный государственный санитарный врач Российской Федерации
Издан	Минздрав России	2001 г.
Разработан	Российский научно-исследовательский противочумный институт Микроб Минздрава России

Чтобы бесплатно скачать этот документ в формате PDF, поддержите наш сайт и нажмите кнопку:

3.5.5. ДЕЗИНФЕКЦИОННЫЕ СРЕДСТВА И ТЕХНОЛОГИИ

Обеззараживание исследуемого материала, инфицированного бактериями I—IV групп патогенности, при работе методом ПЦР

Методические указания МУ 3.5.5.1034—01

013 Обеззараживание исследуемого материала, инфицированного бактериями I—IV групп патогенности, при работе методом ПЦР: Методические указания.—М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2001.—8 с.

2. Утверждены Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации - Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации Г. Г. Онищенко 23.05.01.

3. Введены впервые.

Редакторы Кожока Н. В., Акопова Н. Е. Технический редактор Климова Г. И.

Подписано в печать 19.11.01 Тираж 3000 экз.

Печ. л. 0,5 Заказ 46

ЛР№ 021232 от 23.06.97 г.

Министерство здравоохранения Российской Федерации 101431, Москва, Рахмановский пер., д. 3

Оригинал-макет подготовлен к печати и тиражирован Издательским отделом Федерального центра госсанэпиднадзора Минздрава России 125167, Москва, проезд Аэропорта, 11. Отделение реализации, тел. 198-61-01

1. Область применения. 4

3. Нормативные ссылки. 5

4. Описание метода. 5

5. Способы обеззараживания материала,

исследуемого методом ПЦР. 7

УТВЕРЖДАЮ Главный государственный санитарный врач Российской Федерации - Первый заместитель Министра здравоохранения Российской Федерации

Дата введения: 1 октября 2001 г.

3.5.5. ДЕЗИНФЕКЦИОННЫЕ СРЕДСТВА И ТЕХНОЛОГИИ

1. Область применения

В настоящих указаниях предложены способы обеззараживания материала, зараженного или подозрительного на зараженность бактериями I—IV групп патогенности, при проведении генодиагностических исследований методом ПЦР.

Указания предназначены для специалистов санитарно-гигиенических, лечебно-профилактических учреждений, генодиагностических центров и лабораторий, применяющих метод ПЦР для обнаружения ДНК возбудителей инфекционных заболеваний.

2. Введение

Используемые обычно в практике табельные средства стерилизации (растворы формалина, хлорамина, перекиси водорода и др.) не могут быть применены при ПЦР-анализе вследствие повреждающего действия на ДНК или ингибирования реакции.

различных микроорганизмов, включая и возбудителей опасных инфекций.

В настоящих методических указаниях для работы с не образующими споры бактериями I—II групп патогенности предлагается обработка объектов мертиолятом натрия и затем лизирующим буфером с гуанидинтио-цианатом. При работе с возбудителем холеры может быть использован метод прогревания при 100 °С в течение 30 мин.

Для инактивации не образующих споры микроорганизмов III—IV групп патогенности может быть использован метод термической обработки при 100 °С в течение 30 мин или лизирующим буфером с гуани-динтиоцианатом.

Для обеззараживания материала, содержащего спорообразующие микроорганизмы, в т. ч. Bacillus anthracis применяют методический подход, заключающийся в терминации спор с последующей обработкой пенициллином, прогреванием при 100 °С и обработкой лизирующим буфером с гуанидинтиоцианатом.

Разработанные способы инактивации приводят к полному обеззараживанию материала, не повреждают ДНК и не ингибируют ПЦР.

3. Нормативные ссылки

Инструкция по контролю специфической стерильности экспериментальных препаратов, приготовленных из культур чумного или холерного микробов (Саратов, 1982).

Временная фармакопейная статья (ВФС) 42—62-ВС-86 для диа-гностикума бруцеллезного жидкого для реакции агглютинации.

Руководство по профилактике чумы (Саратов, 1992).

4. Описание метода

Рекомендуемые средства стерилизации материала при ПЦР-анализе имеют следующие механизмы антимикробного действия. Мер-тиолят натрия необратимо связывается с SH-, NH₂- и СООН-группами белковых молекул с дальнейшим ингибированием дыхательной цепи микроорганизма.

Инактивирующий эффект лизирующего буфера обусловлен действием хаотропного агента - гуанидинтиоцианата, обеспечивающего разрушение клеточных мембран и лизис клеток с последующим выходом ДНК.

Метод обеззараживания содержащих споры микроорганизмов основан на прорастании споры в вегетативные клетки при культивировании в благоприятных для терминации условиях. Далее под воздействием температуры (для сибиреязвенного микроба еще и пенициллина) происходит разрушение клеточной мембраны и выход ДНК.

Материально-техническое обеспечение Средства измерения

• Весы PG 203 - прецизионные одночашечковые электронные цифровые с функцией обнуления тары и другими вспомогательными функциями, стандартного уровня, максимальная загрузка - 210 г, погрешность при измерении - 0,001 г, (Mettler, Швейцария);

• иономер pH-150 (рН-метр-милливольтметр); используется для определения pH буферных растворов, диапазон pH от 1 до 14, точность 0,01 pH, температура анализируемой среды от 10 до 100 °С (Белоруссия).

• Дистиллятор А1013 - производительность 7,6 л/ч (Barustead, США);

• термостат ЕВ - объем от 18 до 1000 л с регулируемым диапазоном температур от 5 до 80 °С (Jouan, Франция);

• встряхиватель V-4 типа вортекс-регулируемый (Elmi, Латвия);

• баня водяная J-12 (18,30) с корпусом из нержавеющей стали с термометром, на 12, 18, 30 л, вместимостью соответственно 72, 108 и 192, пробирки диаметром 16 мм; максимальная температура 100 °С (Jouan, Франция).

Вспомогательные изделия и материалы Вата медицинская ГОСТ 5556-81

Колбы мерные 50, 100, 200 мл ГОСТ 12738-77

Лабораторный штатив ТУ 64—17—07—72

* Указанные средства измерения и оборудование могут быть заменены на аналогичные по характеристикам производства других фирм.

1—20, 20—200, 200—1000 мкл;

Пробирки ГОСТ 10515—75

Пипетки мерные ГОСТ 20292—74

Цилиндры мерные 1—25, 1—100,

1—1000 мл. ГОСТ 1770—74

Реактивы и растворы Вода деионизованная стерильная ЭДТА (этиле ндиаминтетрауксусная кислота) Натрия гидроокись

5. Способы обеззараживания материала, исследуемого методом ПЦР

Отобранные для исследования пробы могут быть инактивированы следующими способами.

5. 1. Материал (кровь, другие биологические жидкости, экстракты органов, смывы с поверхностей, фильтраты почвы), подозрительный на зараженность не содержащими споры бактериями I—II групп патогенности

Обработка мертиолятом натрия с прогреванием при температуре 56 °С: к исследуемым образцам добавляют мертиолят натрия, проверенный на бактерицидное действие, до концентрации 1 : 10000 (0,01 %) с последующим прогреванием их при 56 °С в течение 30 мин.

Обработка лизирующим буфером с гуанидинтиоцианатом и прогреванием при температуре 65 °С: к 100 мкл обработанных мертиолятом натрия образцов (и. 1.1), разлитым в микроцентрифужные пробирки типа

ПЦР выполняют по общепринятой методике в соответствии с указаниями к ПЦР-наборам изготовителя.

Приготовление лизирующего буфера с гуанидинтиоцианатом

Гуанидингиоцианат (конечная концентрация 6М ) - 18 г, дигиотрей-тол (0,2М) - 95 мг и ЭДТА (0,5М) 1мг растворяют в 30 мл дистиллированной воды. Готовый раствор, проверенный на бактерицидное действие, хранится в темной посуде в холодильнике до 6 месяцев.

5.2. Материал, подозрительный на зараженность не содержащими споры бактериями III—IV групп патогенности

Прогревание при 100 °С в течете 30 мин (кроме ПЦР-анализа крови).

После лизиса гуанидинтиоцианатом для выделения ДНК используют метод нуклеосорбции на силикагеле, начиная с этапа добавления сорбента.

ПЦР выполняют по общепринятой методике в соответствии с указаниями к ПЦР-наборам изготовителя.

5.3. Материал, подозрительный на зараженность содержащими споры бактериями II—IV групп патогенности

Герминация спор с обработкой пенициллином и прогреванием при 100 °С в течение 10 мин: исследуемый материал в количестве 0,1 мл засевают в пробирки с 0,9 мл бульона Хоттингера pH 7,6 и инкубируют с аэрацией при температуре 37 °С в течение 2,5 ч. Добавляют пенициллин (1000 ед/мл) и инкубируют при 37 °С 15 мин. Затем прогревают на водяной бане при температуре 100 °С в течение 10 мин.

обеззараженным. Далее для выделения ДНК используют метод нукле-осорбции. начиная с этапа добавления сорбента.

ПЦР выполняют в соответстствии с указаниями к ПЦР-наборам изготовителя.

После инактивации проб любым из вышеописанных способов дальнейшие исследования проводятся, как с обеззараженным материалом.

Информация о документе
Дата добавления:
Размер:
Доступные форматы для скачивания:

№ 130 от 17.03. 2006 г.

Цель : Обеззараживание потенциально инфицированного материала

Показания: любые медицинские манипуляции, связанные с заготовкой крови, ее компонентов и

Обеспечивают мероприятия по защите медицинского персонала

Принятые вновь на работу сотрудники должны пройти:

• первичный профилактический медицинский осмотр с обследованием крови на маркеры вирусных гепатитов и ВИЧ, далее ежегодно 1 раз в год, согласно приказ № 70

• инструктаж о правилах техники инфекционной безопасности при работе с кровью.

Персонал, работающий с кровью, должен быть вакцинирован против гепатита В. Случаи отказа от вакцинации, оформлять документально

Проводятся плановое обучение персонала (не реже одного раза в год) по вопросам соблюдения правил безопасности при работе с кровью с последующей аттестацией.

Кровь, плазму, сыворотку следует рассматривать как потенциально инфицированный материал

Медперсонал работающий с кровью обязательно должен использовать средства индивидуальной защиты :

В отдельных случаях (мытье, обработка, вероятность разбрызгивания и др.) обязательное использование:

Защитных очков или экрана -щитка

Хозяйственные перчатки, устойчивые к проколам

Использованная спецодежда снимается до выхода из рабочей зоны, помещается в специальный контейнер, стирается, как потенциально инфицированная.

Медперсонал соблюдает гигиену рук

Мытье рук обязательно:

- перед выходом из рабочей зоны

-между физическим исследованием доноров

-сразу после загрязнения кровью

-после снятия перчаток

- после пользования туалетом

Мыть руки необходимо с мылом под проточной водой в течение 10-15 секунд и высушивать одноразовым или бумажным полотенцем или дать им высохнуть на воздухе,

или в случае если на руках нет видимых загрязнений

Протереть руки 3-5 мл антисептика (спиртовой раствор или один из указанных ниже антисептиков) до полного высыхания раствора на руках

При аварийных ситуациях с кровью проводят мероприятия по локализации и ликвидации последствий аварии

При авариях с патогенным материалом работу немедленно прекращают, ставят в известность руководителя отделения или лицо замещающее его.

Проводится обеззараживание места аварии. Объем и вид дезинфекции определяются характером аварии или как указано ниже

При обработке места аварии персонал надевает спецодежду и перчатки устойчивые к проколу

при попадании крови на кожу и слизистые

В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2-х минут тампоном, смоченным 70 о спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть одноразовым полотенцем.

При подозрении попадания биологических жидкостей на слизистые оболочки глаз их немедленно промывают слабым раствором марганцовокислого калия в разведении 1:10000, и закапывают раствор альбуцида

При попадании на слизистую носа - промывают струей воды и обрабатывают 1,5% раствором протаргола

При попадании на слизистые ротовой полости - прополаскивают 70 о спиртом и сплевывают в дезраствор

При попадании на поврежденную кожу или порезе, проколе: выдавить первую каплю крови в месте пореза, обработать спиртом, затем йодом. Заклеить лейкопластырем, надеть напальчник, а также обеспечить введение иммуноглобулина против вируса гепатита В (ИГГВ) в течение 24 часов.

Дезинфекция при проливах крови на рабочую поверхность

Залить участок пролива дезинфектантом 1:5, оставить на 15-20 минут

Очистить поверхность, используя моющее средство

Дезинфекция при проливах крови в центрифугу

Крышку центрифуги можно открывать только после полной остановки центрифуги, открывают только через 30-40 минут (после оседания аэрозоля).

Надеть спецодежду, перчатки устойчивые к проколам

Вылить содержимое центрифужного стакана в дезинфицирующий раствор

Погрузить поврежденный гемоконтейнер (разбитое стекло) в дезинфицирующий раствор.

Погрузить центрифужные стаканы в другую емкость с дез. раствором, время выдержки во всех случаях 1 час.

Неповрежденные контейнеры с кровью обработать 6 % перекисью водорода и передатъ для продолжения дальнейших технологических операций

Обработать поверхность крышки, внутренние части центрифуги, ее наружную поверхность д 6% перекисью водорода, затем вымыть 0,5% моющим раствором.

Проводить дезинфекцию центрифуги после отключения от электросети.

локтевого сгиба донора в месте венепункции

кожа локтевого сгиба донора в месте венепункции протирается дважды стерильными ватными тампонами, обильно смоченными 1 % раствором йодопирона или др.разрешенные антисептики,(интервал между протиранием не менее 1 минуты)

наносить антисептик следует от места венепункции, перемещаясь кнаружи концентрическими кругами от центра к периферии

после того, как кожа подготовлена к венепункции ее нельзя трогать или пальпировать

если игла удалена и венепункция выполняется повторно, то обработка места венепункции повторяется заново

Дезинфекция помещений заготовки крови (боксы, предбоксы,

Ежедневно до начала работы с донорами в помещениях, где проводится процесс заготовки крови, ее компонентов и препаратов (боксы, предбоксы, процедурные) на 2 часа включаются бактерицидные ультрафиолетовые облучатели, и регистрируются в специальном журнале.

В конце рабочего дня медперсонал ответственный за уборку помещений проводит:

проветривание помещений - открывает окна, двери

влажную уборку с дезинфекцией стен, потолка, пола применяя 3% перекись водорода с 0,5 % раствора моющего средства

После окончания влажной уборки:

Закрывает окна, двери

Включает бактерицидный ультрафиолетовый облучатель на 2 часа

Регистрирует в журнале

Отключает облучатель от электросети

плазмаэкстракторы, весы, разновесы, стойки для подвеши-

Ежедневно в конце рабочего дня протирают или моют 3% перекисью водорода с 0,5 % раствора моющего средства.

Внутреннюю часть холодильника – полки, где хранятся кровь, компоненты и препараты обрабатываются только 6 % перекисью водорода, путем двукратного протирания, интервал 15 минут.

Использованный инструментарий, лабораторная посуда должны быть обеззаражены путем полного погружения в емкость с дезинфицирующим раствором на 1 час

После дезинфекции инструментарий должен быть промыт в проточной воде

После полоскания инструментарий полностью погружают в моющий раствор, состоящий из смеси 0,5% раствора перекиси водорода с 0,5% раствором одного из разрешенных моющих средств в течение 15 минут.

Тщательно промывают каждый инструмент в том же моющем растворе с использованием щеток или ватно-марлевых тампонов

Споласкивают сначала под проточной водой (3-10 мин.) и затем дистиллированной водой в течение 30 секунд.

Просушивают и направляют на стерилизацию.

Блоки кювет-анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры и т.д. обеззараживаются только 6% раствором перекиси водорода и промываются проточной водой

Предметные стекла с мазком крови после проведения микроскопии дезинфицируют погружением в дез. раствор на 60 минут.

Дезинфекция кровяных сгустков

Осторожно собрать сгустки крови из пробирок в специально предназначенную и маркированную емкость с плотно закрывающейся крышкой

Засыпать одним из имеющихся дезинфицирующих средств в соотношении к крови 5:1

Размешать, закрыть крышку и оставить на 1 час

Затем вылить в канализацию

Обработать емкость одним из дезсредств

Промыть чистой водой и высушить

Хранить в специально предназначенном месте

Обработать дезсредством перчатки, при необходимости экран – щиток, затем снять спец. одежду

Дезинфекция и удаление медицинских отходов

Перед началом рабочего дня, необходимо:

подготовить емкости для сбора медицинских отходов:

сбрасывать отработанные одноразовые скарификаторы, системы, иглы, пробирки, наконечники к автоматическим пипеткам, плашки, шприцы, ватные шарики со следами крови в течение рабочего дня в металлический контейнер. ЗАПРЕЩАЕТСЯ разрезать системы, ломать, сгибать иглы.

В конце рабочей смены ответственный за сбор и дезинфекцию медицинских отходов обязан: надеть спецодежду (халат) и плотные технические перчатки

обернуть отработанный материал в крафт – бумагу, не надавливая и не уплотняя обвязать шнуром

закрыть крышку металлического бикса

доставить в автоклавную

обеззараживать в специальном автоклаве для уничтожения медицинских отходов при режиме 2 атм.,132 0 С в течение – 60 минут.

При отсутствии возможности выделения специального автоклава, данные отходы должны быть полностью подвергнуты сжиганию.

Кровь, компоненты крови:

- с маркерами гемотрансмиссивных инфекций

крови и ее компонентов, осуществляется заведующими отделений заготовки крови.

Забракованная кровь и ее компоненты регистрируются в специальном журнале с указанием номера образца крови и характера брака.

После снятия этикеток брак крови укладывается в упаковочную бумагу

Передается в автоклав на обеззараживание

Обеззараживание производят в специально выделенном автоклаве при режиме 2 атм. в течение – 60 минут.

При отсутствии возможности выделения специального автоклава, данные отходы должны быть полностью подвергнуты сжиганию

Дезинфекция одежды персонала при загрязнении кровью

Обеззараживание спец. одежды загрязненной кровью, можно проводить одним из нижеприведенных способов:

- кипячение в 2 % растворе кальцинированной соды или 0,5 % растворе моющего средства в течение 30 минут

- погружение в один из разрешенных дезсредств с последующей стиркой

- обеззараживание в паровом стерилизаторе при режиме 126 0 С, время выдержки – 30 минут.

Дезинфекция защитных очков или экрана - щитка

Протереть 6 % раствором перекиси водорода дважды, интервал – 15 минут

Дезинфекция металлического инструментария (зажимы, ножницы,

Подвергаются обеззараживанию путем:

-обеззараживания в паровом стерилизаторе при режиме132 0 С, время выдержки - 20 минут.

Обеззараживание твердых осадков

Твердые осадки – остатки белковых фракций, обеззараживаются двумя путями:

1.Осадки разводятся водой, прогреваются в закрытой емкости при 60 0 С в течение 10 часов

2.Заливаются гипохлоритом кальция из расчета, что содержание активного хлора в растворе должно быть не менее 0,5%, выдержать 1 час, затем вылить в канализацию

Если отработанный центрифугат не подвергается ректификации спирта, то он подвергается обработке гипохлоритом кальция, содержание активного хлора в растворе должно быть не менее 0,5% экспозиция 1 час, затем вылить в канализацию

Большие емкости (100 литровые баки), используемые в процессе фракционирования плазмы, перед запуском и в течение 5 последующих дней фракционирования:

- обжигаются 96 о спиртом

-ополаскиваются бидисстилированной водой

По окончания фракционирования:

- ополаскиваются проточной водой

-обеззараживаются в автоклаве, режим 132 о С 60 минут

Стерилизация производится в соответствии со стандартами

Флаконы, пробирки стерилизуют в 2-х слойных бязевых мешках, помещенных в стерилизационные биксы в паровом стерилизаторе при режиме 2 атм. Экспозиция – 20 минут, или же

- в сухожаровом шкафе при температуре 180 о С в течение 1 часа.

Паровой стерилизатор, режим - 120 0 С в течение 45 минут

Паровой стерилизатор при режиме 120 0 С в течение 45 минут

Вирусологическая безопасность препаратов крови

Вирусологическая безопасность препаратов крови (альбумина, протеина) достигается путем пастеризации в течение 10 часов

Стерилизующая фильтрация обеспечивает стерильность выпускаемых растворов.

Информация о документе
Дата добавления:
Размер:
Доступные форматы для скачивания:

№ 130 от 17.03. 2006 г.

Цель : Обеззараживание потенциально инфицированного материала

Показания: любые медицинские манипуляции, связанные с заготовкой крови, ее компонентов и

Обеспечивают мероприятия по защите медицинского персонала

Принятые вновь на работу сотрудники должны пройти:

• инструктаж о правилах техники инфекционной безопасности при работе с кровью.

Кровь, плазму, сыворотку следует рассматривать как потенциально инфицированный материал

Медперсонал работающий с кровью обязательно должен использовать средства индивидуальной защиты :

В отдельных случаях (мытье, обработка, вероятность разбрызгивания и др.) обязательное использование:

Защитных очков или экрана -щитка

Хозяйственные перчатки, устойчивые к проколам

Медперсонал соблюдает гигиену рук

Мытье рук обязательно:

- перед выходом из рабочей зоны

-между физическим исследованием доноров

-сразу после загрязнения кровью

-после снятия перчаток

- после пользования туалетом

или в случае если на руках нет видимых загрязнений

При аварийных ситуациях с кровью проводят мероприятия по локализации и ликвидации последствий аварии

При обработке места аварии персонал надевает спецодежду и перчатки устойчивые к проколу

при попадании крови на кожу и слизистые

При попадании на слизистую носа - промывают струей воды и обрабатывают 1,5% раствором протаргола

При попадании на слизистые ротовой полости - прополаскивают 70 о спиртом и сплевывают в дезраствор

Дезинфекция при проливах крови на рабочую поверхность

Залить участок пролива дезинфектантом 1:5, оставить на 15-20 минут

Очистить поверхность, используя моющее средство

Дезинфекция при проливах крови в центрифугу

Надеть спецодежду, перчатки устойчивые к проколам

Вылить содержимое центрифужного стакана в дезинфицирующий раствор

Погрузить поврежденный гемоконтейнер (разбитое стекло) в дезинфицирующий раствор.

Погрузить центрифужные стаканы в другую емкость с дез. раствором, время выдержки во всех случаях 1 час.

Проводить дезинфекцию центрифуги после отключения от электросети.

локтевого сгиба донора в месте венепункции

после того, как кожа подготовлена к венепункции ее нельзя трогать или пальпировать

если игла удалена и венепункция выполняется повторно, то обработка места венепункции повторяется заново

Дезинфекция помещений заготовки крови (боксы, предбоксы,

В конце рабочего дня медперсонал ответственный за уборку помещений проводит:

проветривание помещений - открывает окна, двери

После окончания влажной уборки:

Закрывает окна, двери

Включает бактерицидный ультрафиолетовый облучатель на 2 часа

Регистрирует в журнале

Отключает облучатель от электросети

плазмаэкстракторы, весы, разновесы, стойки для подвеши-

Ежедневно в конце рабочего дня протирают или моют 3% перекисью водорода с 0,5 % раствора моющего средства.

После дезинфекции инструментарий должен быть промыт в проточной воде

Споласкивают сначала под проточной водой (3-10 мин.) и затем дистиллированной водой в течение 30 секунд.

Просушивают и направляют на стерилизацию.

Дезинфекция кровяных сгустков

Засыпать одним из имеющихся дезинфицирующих средств в соотношении к крови 5:1

Размешать, закрыть крышку и оставить на 1 час

Затем вылить в канализацию

Обработать емкость одним из дезсредств

Промыть чистой водой и высушить

Хранить в специально предназначенном месте

Обработать дезсредством перчатки, при необходимости экран – щиток, затем снять спец. одежду

Дезинфекция и удаление медицинских отходов

Перед началом рабочего дня, необходимо:

подготовить емкости для сбора медицинских отходов:

обернуть отработанный материал в крафт – бумагу, не надавливая и не уплотняя обвязать шнуром

закрыть крышку металлического бикса

доставить в автоклавную

Кровь, компоненты крови:

- с маркерами гемотрансмиссивных инфекций

крови и ее компонентов, осуществляется заведующими отделений заготовки крови.

После снятия этикеток брак крови укладывается в упаковочную бумагу

Передается в автоклав на обеззараживание

Обеззараживание производят в специально выделенном автоклаве при режиме 2 атм. в течение – 60 минут.

Дезинфекция одежды персонала при загрязнении кровью

Обеззараживание спец. одежды загрязненной кровью, можно проводить одним из нижеприведенных способов:

- кипячение в 2 % растворе кальцинированной соды или 0,5 % растворе моющего средства в течение 30 минут

- погружение в один из разрешенных дезсредств с последующей стиркой

- обеззараживание в паровом стерилизаторе при режиме 126 0 С, время выдержки – 30 минут.

Дезинфекция защитных очков или экрана - щитка

Протереть 6 % раствором перекиси водорода дважды, интервал – 15 минут

Дезинфекция металлического инструментария (зажимы, ножницы,

Подвергаются обеззараживанию путем:

-обеззараживания в паровом стерилизаторе при режиме132 0 С, время выдержки - 20 минут.

Обеззараживание твердых осадков

Твердые осадки – остатки белковых фракций, обеззараживаются двумя путями:

1.Осадки разводятся водой, прогреваются в закрытой емкости при 60 0 С в течение 10 часов

- обжигаются 96 о спиртом

-ополаскиваются бидисстилированной водой

По окончания фракционирования:

- ополаскиваются проточной водой

-обеззараживаются в автоклаве, режим 132 о С 60 минут

Стерилизация производится в соответствии со стандартами

- в сухожаровом шкафе при температуре 180 о С в течение 1 часа.

Паровой стерилизатор, режим - 120 0 С в течение 45 минут

Паровой стерилизатор при режиме 120 0 С в течение 45 минут

Вирусологическая безопасность препаратов крови

Стерилизующая фильтрация обеспечивает стерильность выпускаемых растворов.

Читайте также:

Методы обеззараживания инфицированного материала

1. Область применения

2. Введение

3. Нормативные ссылки

4. Описание метода

Оглавление

1. Область применения

2. Введение

3. Нормативные ссылки

4. Описание метода

5. Способы обеззараживания материала, исследуемого методом ПЦР