Цитробактер что за инфекция у животных

Марченко Э.В. Луганский национальный аграрный университет, г. Луганск, Украина

Введение. В питомнике, в условиях искусственно созданного биоценоза, иммунная система организма собак, лишившись влияния вирулентной микрофлоры, детренируется и оказывается неспособной выполнять свою прямую функцию по защите организма от проникновения чужеродных микробов. Именно поэтому, на фоне снижения резистентности организма животных чаще регистрируются желудочно-кишечные заболевания, в этиологии которых важную роль играют условно патогенные микроорганизмы, которые ранее считались сапрофитной микрофлорой.

Выявление изменения видового состава и количественного соотношения кишечной микрофлоры, а также взаимоотношения между микроорганизмами, которые происходят в желудочно-кишечном тракте, позволит установить ведущую роль нормальной микрофлоры, которая играет регулирующую и защитную функцию в организме животного, а также изучить механизмы развития дисбиотических состояний у собак [1, 2, 3, 5].

Материалы и методы. Для проведения исследования от собак в возрасте от четырех недель до 12-NB лет с признаками дисбактериоза (диарея, вздутие живота, рвота, отказ от корма, обезвоживание) были отобраны пробы фекалий и биологический материал. У подопытных животных отбирали образцы фекалий для бактериологических исследований.

Бактериологические исследования, а также изучение биологических свойств изолированных культур микроорганизмов проводили в лаборатории факторных инфекций кафедры эпизоотологии, патана-томии и судебной ветеринарии факультета ветеринарной медицины Луганского НАУ, а также на базе Луганской областной государственной лаборатории ветеринарной медицины.

Роль бактериальной микрофлоры в этиологии дисбактериозов собак изучали общепринятыми методами бактериологических исследований клинического материала с использованием искусственных дифференциально-диагностических питательных сред: Эндо и МПА, МПА соляной, ЖСА, среда Клиглера, среда Сименса. Видовую и типовую принадлежность выделенных чистых культур определяли на основе изучения морфологических, культуральных и биохимических свойств [4].

Результаты исследований. С целью установления роли ассоциаций микроорганизмов в механизмах возникновения и развития желудочно-кишечных инфекций у собак проведены бактериологические исследования. Из внутренних органов 36-ти животных, павших в результате парвовироза, изолировано 228 культур 14 видов условно патогенных бактерий.

Из изолированных культур микроорганизмов 98 были грамполо-жительными, а 130 - грамотрицательными. Чаще всего изолировали Staphylococcus aureus (68) и Escherichia coli (35); реже - Streptococcus faecalis (18), Morganella morganii (18), Pseudomonas aeruginosa (15), Staphylococcus epidermidis (12), Enterobacter aerogenes (12) и Proteus vulgaris (10); редко - Citrobacter freundii (9), Proteus mirabilis (7), Enterobacter cloacae (7), Klebsiella pneumoniae (7), Citrobacter koseri (7) и Acinetobacter calcoaceticus (3 культуры). Следует добавить, что по нашим исследованиям установлено, что парвовироз у собак в 100,0% случаев осложняется условно патогенными бактериями.

Результаты анализа по изучению дисбактериоза кишечника у собак, больных парвовирусным энтеритом, осложненным ассоциациями условно патогенных бактерий, в зависимости от степени тяжести болезни приведены в таблице 1.

Таблица 1. Изучение дисбактериоза кишечника у собак, больных парвовирусным энтеритом, осложненным ассоциациями условнопатогенных бактерий, в зависимости от степени тяжести болезни

Клини­чески здоровые собаки,
n=12

Больные собаки с соответствующей степенью тяжести течения болезни

Концентрация бифидобактерий в фекалиях клинически здоровых и больных парвовирусным энтеритом собак при разных степенях тяжести течения заболевания существенно отличались между собой, что установлено анализом Крускала-Уоллиса (Н = 38,3; р Заключение. Резюмируя изменения количества микроорганизмов в фекалиях собак, больных парвовирусным энтеритом, осложненном ассоциациями условно патогенных бактерий, можно констатировать развитие дисбактериоза кишечника, который проявляется уменьшением концентрации лакто- и бифидобактерий и повышением количества эшерихий, стафило-, стрептококков, бацилл, энтеро- и цитробактеры, клебсиелл, протеус, псевдомонас и грибков рода кандида.

1. Апатенко В. М. Проблема паразитоценозов и задачи паразитоценоло-гии / В. М. Апатенко // Проблемы и перспективы паразитоценологии: Материалы 5 межсъездовской конференции паразитоценологов Украины (29-30 октября 1997 г.). - Харьков-Луганск. - 1997. - С. 4-10.
2. Воецька О. 0. Удосконалення технологи виробництва комбiкормiв для собак: автореф. дис. на здобуття наук.ступеня канд. тех. наук: спец. 05.18.02 "Технолопязернових, бобових, круп’янихпродукпв та комбiкормiв" / О. 0. Воецька. - Одеса, 2007. - 15 с.
3. Руденко П. А. Эволюционно экологические аспекты заболеваний животных, вызванных условно-патогенной микрофлорой / П. А. Руденко,В. А. До-ценко, А. Ф. Руденко. - Луганск: Ветеринарные науки, 2001. - С. 69-71.
4. Определитель бактерий Берджи. В 2-х т. Т. 1: Пер. с англ. / Под ред. Дж. Хоула, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилльямса. - М.: Мир, 1997. - 800 с.
5. Хан Э. Р. Микробиоценоз и имунитет при постнатальных инфекциях новорожденных / Э. Р. Хан // НИИ педиатрии Рос. АМН. - М., 1996. - С. 43.

Резюме. В настоящее время наблюдается тенденция к увеличению популяции собак, соответственно, и вопросы ветеринарного обслуживания встают более остро. В данной статье описаны результаты изучения роли бактериальной микрофлоры в этиологии дисбактериозов собак при парвовирусном энтерите различной степени тяжести течения заболевания. Применяли общепринятые методы бактериологических исследований клинического материала, с использованием искусственных дифференциально-диагностических питательных сред: Эндо и МПА, МПА соляной, ЖСА, среда Клиглера, среда Сименса. Видовую и типовую принадлежность выделенных чистых культур определяли на основе изучения морфологических, культуральных и биохимических свойств. Из внутренних органов 36 животных, павших в результате парвовироза, изолировано 228 культур 14 видов условно патогенных бактерий. Изучив изменения количества микроорганизмов в фекалиях собак, больных парвовирусным энтеритом, осложненном ассоциациями условно патогенных бактерий, при различных степенях тяжести, установлено развитие дисбактериоза кишечника, который проявляется уменьшением концентрации лакто- и бифидобактерий и повышением количества эшерихий, стафило-, стрептококков, бацилл, энтеро- и цитробактеры, клебсиелл, протеус, псевдомонас и грибков рода кандида. При анализе критерия Крускала-Уоллиса установлена достоверная корреляция между концентрацией условно патогенных бактерий и степенью тяжести течения болезни.

Ключевые слова: микрофлора, бактерии, парвовироз, условно патогенный, собаки, концентрация, степень тяжести, желудочно-кишечный тракт, критерий Крускала-Уоллиса, питательная среда, дисбактериоз, корреляция.

Цитробактер (лат. Citrobacter) — род грамотрицательных, споронеобразующих, факультативно анаэробных бактерий. Представитель нормальной, условно-патогенной микрофлоры кишечника человека.

Род цитробактер (Citrobacter) входит в семейство энтеробактерии (Enterobacteriaceae), порядок энтеробактерии (Enterobacteriales), класс гамма-протеобактерии (γ proteobacteria), тип протеобактерии (Proteobacteria), царство бактерии.

Род цитробактер включает в себя:

• Citrobacter freundii complex в составе видов: Citrobacter braakii, Citrobacter freundii, Citrobacter gillenii, Citrobacter murliniae, Citrobacter sedlakii, Citrobacter werkmanii, Citrobacter youngae
• а также следующие виды: Citrobacter amalonaticus, Citrobacter bitternis, Citrobacter europaeus, Citrobacter farmeri, Citrobacter intermedius, Citrobacter koseri, Citrobacter pasteurii, Citrobacter rodentium.

Цитробактер является одной из самых частых причин внутрибольничных ангиогенных инфекций и инфекций мочевыводящих путей. Цитробактер способен вызывать вспышки гастроэнтеритов и токсикоинфекций, внутрибольничные инфекции, менингиты, абсцессы мозга, урологические заболевания, гнойные инфекции и сепсис у детей и взрослых людей. В регионах России в последние годы периодически происходят массовые отравления, в том числе в детских учреждениях, вызванные цитробактером, основной причиной которых является нарушение технологии приготовления пищи.

Источником инфекции являются люди и животные. Механизм передачи цитробактера — фекально-оральный. Основной путь передачи — пищевой, через молоко, молочные продукты, масло, кондитерские изделия, мясо птиц и животных. У ослабленных детей раннего возраста возможен контактно-бытовой путь заражения через игрушки, предметы ухода, руки персонала.

Цитобактериоз может протекать по типу пищевого отравления в виде гастрита, энтерита или гастроэнтерита. Инкубационный период цитробактериоза от 2 до 5 часов.

Гастрит начинается остро с тошноты, повторной рвоты, боли в эпигастральной области. Температура тела, чаще всего, в пределах от 37–37,5 до 38–38,5 ° С. Симптомы отравления выражены умеренно. Продолжительность — 1–2 дня.

Гастроэнтерит начинается остро с тошноты, повторной рвоты, болей в животе. Стул частый, жидкий, иногда с примесью слизи, до 10 раз в сутки. Боль в животе в первые дни болезни может быть выраженной, локализуется преимущественно в эпигастральной области, при пальпации определяется болезненность по ходу тонкой кишки. Понос, чаще всего, на несколько часов опережает развитие симптомов отравления. Температура тела повышается до 38° С, сохраняется не более 5 дней. Прогноз благоприятный, продолжительность цитробактериоза — от 4 до 6 дней.

Диагноз на цитробактериоз устанавливается после проведения специальных лабораторных исследований.

Цитробактер способен самостоятельно или в ассоциации с другими микробами вызывать заболевания у домашних и диких животных, рыб и пчёл. В современной России имеются прецеденты, когда циторбактер выявляли в фабрично изготовленном комбикорме. Корма, зараженные цитробактером или с подозрением на цитробактер требуют обязательной проварки при температуре не ниже 100° С не менее часа.

При микробиологическом анализе кала цитробактер рассматривается в комплексе с другими условно-патогенными бактериями, относящимися к семейству энтеробактерий и входящими в состав нормальной микрофлоры кишечника человека (кроме цитробактера это клебсиелла, протей, гафния, серратия, морганелла, провиденция, энтеробактер и др). В норме общее количество этих бактерий (колониеобразующих единиц, КОЕ) в 1 г кала должно быть меньше 10 4 . Большее количество перечисленных бактерий является признаком дисбактериоза.

При избыточном росте цитробактера, как следствии дисбактериоза, при медикаментозной терапии применяются различные пробиотки (Бифидумбактерин, Бифиформ, Лактобактерин, Ацилакт, Аципол и др.) и/или адекватные конкретному штамму цитробактера и причине дисбактериоза бактериофаги и антибиотики.

В образцах злокачественных колоректальных новообразований человека концентрация Citrobacter spp. повышена (Marchesi J.R., Dutilh B.E., Hall N. et al. Towards the human colorectal cancer microbiome. PLoS One 2011; 6: e20447).

Антибактериальные средства (из имеющих описание в данном справочнике), активные в отношении цитробактера: ципрофлоксацин, норфлоксацин, офлаксацин. В отношении Citrobacter koseri и Citrobacter freundii активен левофлоксацин.

Цитробактер слабо чувствителен к нифуроксазиду.

АННОТАЦИЯ

В статье представлены результаты исследований по индикации, идентификации, а также материалы по изучению биологических свойств бактериофагов, выделенных из объектов окружающей среды. Выделено 4 бактериофага - активных в отношении бактерий рода Citrobacter. Описаны результаты изучения их основных биологических свойств: морфологии негативных колоний; литической активности; спектра литической активности; специфичности действия; устойчивости к хлороформу и температурной устойчивости.

ABSTRACT

The article presents the research results according to the indication, identification, and materials for the study of biological properties of bacteriophages isolated from the environmental objects. Selected 4 bacteriophage active against bacteria of the genus Citrobacter. Describes the results of a study of their basic biological properties: morphology negative colonies; lysis; lytic spectrum of activity; the specificity of action; resistance to chloroform and temperature stability.

За сравнительно большой срок существования в качестве отдельной систематической группы, относительно экологии цитробактеров известно не очень много, что объясняется длительным отсутствием подборки дифференцирующих тестов. Очевидно то, что бактерии широко распространены в окружающей среде, так как их обнаруживают в самых разнообразных пищевых продуктах, воде, почве различных стоках. Цитробактеры выделяют из кишечника и мочевыводящих путей человека, лошадей, крупного рогатого скота, свиней, собак, грызунов, птиц, рептилий и насекомых [5 с.29, 8 с.75, 10. с.293, 11 с.188, 12 с.1789].

Заболевания, вызванные бактериями рода Citrobacter, или ассоциацией его с другими возбудителями болезней, могут возникать у рыб, домашних животных, диких животных, пчел. [5 с.30,12 с.1791]

Имеет также еще очень важное значение и то, что цитробактеры проявляют сравнительно высокую химиорезистентность. Наибольшую устойчивость к антибактериальным препаратам проявляет С. freundii (по сравнению с С. koseri и С. amalonaticus). С 90-х гг. XX века отмечен особенно быстрый её рост. Следовательно, возникает значительная проблема при лечении заболеваний, вызванных данным микроорганизмом – необходимо тщательнее подбирать антибактериальные вещества, а лучше подобрать альтернативные способы лечения и профилактики заболеваний с их участием.

Исходя из вышесказанного значение лечебных и профилактических мероприятий, связанных с выше названным патогеном приобретает все большее значение.

Цель исследования: провести индикацию и идентификацию вирулентных фагов бактерий рода Citrobacter в объектах окружающей среды.

Материалом для исследования послужили почва, вода открытых водоемов, сточные воды и песок.

В качестве индикаторных культур использовали бактерии рода Citrobacter (3 штамма), выделенные нами из патологического материала и пищевых продуктов.

Оборудование. Холодильники бытовые; микроскопы МБИ-6, ультратермостаты УТ-15У4,2; термостаты ТС-80М-2; центрифуги лабораторные ОПн-8УХЛ4,2 и ЦЛС-3; аппарат ультрафиолетового облучателя с лампой ДРБ8-18; колбы мерные; лабораторная посуда; стандарты мутности на 0,5 и 1,0 млрд. микробных клеток; фильтры фирмы Millipore (filter type: 0,22 μm GV).

Методы. При выполнении исследований применяли методы выделения бактериофагов из культур, описанные и использованные И.П.Ревенко [7 с.12]. Фаги выделяли из объектов окружающей среды методом, предложенным Адельсон [2 с.186]. Изучение биологических свойств и селекцию бактериофагов, а также повышение их литической активности проводили по методикам, предложенным М.Adams [1 с.521] и описанной в своих исследованиях С.Н. Золотухиным [4 с.58 ] и Пульчеровской Л.П. [6 с.73].

Первым этапом наших исследований была попытка выделить бактериофаги Citrobacter из имеющихся полевых штаммов бактерий рода Citrobacter. Мы предполагали наличие лизогенных культур, а как известно из литературных данных такие бактериофаги обладают более выраженной специфичностью [3 с.9]. Вначале мы использовали методику выделения фагов без воздействия на них индуцирующего фактора, а затем с воздействием индуцирующего фактора, после чего фильтровали через фильтры фирмы Millipore (filter type: 0,22 μm GV). В качестве индуцирующего фактора применяли воздействие на бактерии ультрафиолетовых лучей в течение 30 секунд мощностью которой в области 254нм.

Полученный фильтрат на наличие фага исследовали на имеющихся культурах рода Citrobacter методом агаровых слоев. Результат получили отрицательный.

Свои исследования мы продолжили по методикам выделения фагов из объектов внешней среды, предложенной Гольдфарбом (1961) и описанные в диссертационных работах Золотухиным С.Н. (1996), Пульчеровской Л.П (2004) и Феоктистовой Н.А. (2006) и др.

Исследуемый материал засевали с индикаторными культурами в МПБ во флаконах создавая условия контакта индикаторных культур с искомыми бактериофагами. А именно во флакон, содержащий 0,5 литра мясопептонного бульона, добавили по 1,0 мл 18-ти часовых культур, всех имеющихся у нас штаммов Citrobacter. Флакон ставили в термостат при 37 0 С на сутки. Затем смесь бактерий центрифугировали при 2000 об/мин в течение 30 минут, фильтровали. Полученный фильтрат инактивировали от сопутствующей микрофлоры тремя способами:

- 1-й - прогревали при 60 0 С в течение 30 минут;

- 2-ой – обрабатывали хлороформом в соотношении 1:10 в течение30 минут;

- 3-й – очистку фагов осуществляли методом фильтрации с использованием мембранных фильтров фирмы Millipore (filter type: 0,22 μm GV). Наличие фага в фильтрате выявляли при его посеве на плотные питательные среды методом агаровых слоев.

В результате исследований 7 проб объектов окружающей среды удалось по указанной схеме выявить 4 изолята искомых бактериофагов (CIT-1, CIT-2 CIT-3 CIT-4) методом фильтрации. Результаты опыта представлены в табл. 1.

Таблица 1

Источники выделения бактериофагов Citrobacter

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для прогнозирования развития респираторных болезней у новорожденных телят. Способ предусматривает взятие крови у телят в течение 24 часов после рождения, определение в сыворотке крови содержания кальция и магния, проведение расчета кальций-магниевого соотношения. В случае значений кальций-магниевого соотношения в сыворотке крови меньших, чем 3,50:1, у телят прогнозируют развитие респираторных болезней. Способ позволяет прогнозировать развитие респираторных болезней у новорожденных телят на ранних сроках. 8 табл., 2 пр.

Изобретение относится к области ветеринарии и касается прогнозирования развития респираторных болезней у новорожденных телят.

Респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота широко распространены, наносят большой экономический ущерб и снижают рентабельность животноводства.

В развитии респираторных болезней принимают участие бактерии, вирусы, микоплазмы и другие микроорганизмы в различных сочетаниях [1]. Выше указанные возбудители часто играют роль конечного эффектора болезни, развитие которой изначально определяется различного рода условиями, такими как внешние стресс-факторы, нарушение физиологических механизмов регуляции, окислительный стресс, снижение резистентности организма животного [1, 2].

Из респираторных болезней телят наиболее часто регистрируют трахеит, бронхит и бронхопневмонию [1, 3].

Бронхит - воспаление слизистой и подслизистой оболочки бронхов. По течению бронхиты бывают острые и хронические. В зависимости от локализации патологического процесса в бронхах того или иного размера различают макробронхиты, когда воспалительный процесс локализуется в крупных бронхах, микробронхиты, когда воспаляются мелкие бронхи, и диффузные бронхиты, когда воспаление распространяется по всему бронхиальному дереву. В зависимости от характера воспалительного экссудата бронхиты могут быть катаральными, фибринозными, гнойными, гнилостными и геморрагическими [1, 3].

Трахеит - воспаление слизистой оболочки трахеи. У животных в большинстве случаев регистрируется не как самостоятельное заболевание, а как осложнение ларингита (ларинготрахеит) или бронхита (трахеобронхит).

Воспалительный процесс, начавшись в бронхах, переходит со слизистой оболочки бронхов на альвеолы.

Бронхопневмония - воспаление бронхов и легких, сопровождающееся образованием катарального экссудата, который заполняет просвет бронхов и полости альвеол. Бронхопневмония относится к очаговым пневмониям и характеризуется дольковым распространением процесса [3]. Сначала поражаются бронхи, бронхиолы и дольки, после чего процесс может охватить несколько долек, сегментов и долей легких (мелкоочаговые и сливные пневмонии).

Трахеобронхит и бронхопневмония регистрируются у телят преимущественно от двухнедельного до 2-3-месячного возраста [3].

Среди респираторных болезней телят вирусной этиологии большое значение имеет парагрипп-3 (ПГ-3), инфекционный ринотрахеит (ИРТ), вирусная диарея-болезнь слизистых оболочек (ВД-БС), респираторно-синтициальная (PC) и аденовирусная инфекция, которые часто протекают как смешанная патология и проявляются кератоконъюнктивитом, ринитом, трахеитом, бронхитом, катаральной бронхопневмонией, нередко переходящей в интерстициальную при осложнении условно-патогенной микрофлорой [1].

Известен способ диагностики респираторных болезней на основании результатов клинических, рентгенологических и лабораторных исследований [1, 3]. При парагриппе-3, инфекционном ринотрахеите, вирусной диареи-болезни слизистых оболочек, респираторно-синтициальной и аденовирусной инфекции проводят серологические, вирусологические и (или) молекулярно-генетические исследования, а в случае осложнения бронхопневмонией - и бактериологические [1]. Однако данный способ не позволяет выявлять субклиническое течение респираторных болезней.

Известен способ ранней диагностики респираторных болезней, основанный на записи на магнитную ленту голоса животного и определении его спектрального состава [4]. По соотношению спектров судят о функциональном состоянии респираторной системы животного, а по низким спектральным полосам и распределению в данных полосах интенсивности сигнала - о конкретном виде заболевания. Недостатком данного способа является необходимость использования специального оборудования - микрофона, блока обработки, регистрации, индикации и управления, а также сложность расшифровки аудиозаписи при наличии побочных акустических шумов.

Известен способ ранней диагностики трахеобронхита у новорожденных телят, включающий пальпацию последнего трахеального кольца [5]. При повышении чувствительности при пальпации у телят регистрируют кашель, что позволяет диагностировать раннее проявление трахеобронхита. Недостатком данного способа является то, что пальпация последнего трахеального кольца не позволяет выявить повышения чувствительности слизистой оболочки бронхов, и диагностировать трахеобронхит на более ранних этапах течения болезни.

Известен способ ранней диагностики трахеобронхита у телят, основанный на учете реакции животного на внутривенное введение 0,6% раствора перекиси водорода на 0,9% растворе хлорида натрия в дозе 0,4 мл на кг массы тела [6]. В случае возникновения кашлевой реакции через 1-7 минут после введения указанного раствора диагностируют трахеобронхит. Способ позволяет выявлять повышение чувствительности слизистой оболочки трахеи и бронхов на ранних этапах течения болезни, еще до развития ее клинических признаков.

Наиболее близким техническим решением является способ диагностики и прогнозирования бронхопневмонии у телят, основанный на выявлении диспротеинемии [7]. Основным недостатком данного способа, является то, что он не позволяет прогнозировать развитие бронхопневмонии у новорожденных телят, на ранних стадиях постнатального развития.

Технический результат изобретения - раннее прогнозирование развития респираторных болезней у новорожденных телят.

Технический результат достигается путем взятия крови у телят в течение 24 часов после рождения, определения в сыворотке крови содержания кальция и магния и расчета кальций-магниевого соотношения. При кальций-магниевом соотношении в сыворотке крови менее 3,50: 1 у телят прогнозируют развитие респираторных болезней.

Известно, что кальций и магний регулируют многие физиологические функции в организме, при этом их метаболизм взаимосвязан. Катионы кальция и магния участвуют в регуляции нервно-мышечной возбудимости, сердечного ритма, процессов остеогенеза, регулируют проницаемость клеточных мембран. Считают, что магний, действуя, как физиологический антагонист кальция, конкурирует с ним за потенциалзависимые и рецепторуправляемые каналы. Увеличение содержания магния в цитозоле блокирует центростремительный ток кальция, уменьшает центробежный перенос натрия и управляет длительностью потенциала действия, влияя на каналы калия [8, 9]. Магний участвует в регуляции мукоцилиарного клиренса, обмене фосфорэргических соединений, входит в состав различных ферментных систем [9, 10].

Установлено, что нарушение кальций-магниевого гомеостаза является фактором риска развития бронхиальной астмы у людей, способствуют формированию синдрома гиперреактивности бронхов и определяет тяжесть течения заболевания [8]. Установлена роль нарушений гомеостаза катионов кальция и магния в патогенезе хронической обструктивной болезни легких [10] и внебольничной пневмонии [11].

Сущность способа поясняется примерами.

Обоснование прогнозирования развития респираторных болезней у новорожденных телят.

В хозяйстве, длительно неблагополучном по респираторным болезням, часто протекающим в виде бронхита и бронхопневмонии, подобрали 20 новорожденных телят.

В первые 1,5-2 часа после рождения у телят определяли уровень жизнеспособности: учитывали время реализации уверенной позы стояния, появления сосательного рефлекса, определяли температуру тела, частоту сердечных сокращений и дыхательных движений, наличие хрипов, одышки, цвет видимых слизистых оболочек, мышечный тонус. В течение полутора месяцев жизни за животными вели ежедневное клиническое наблюдение. Определяли температуру тела (Т), частоту сердечных сокращений (ЧСС) и дыхательных движений (ЧДД), состояние видимых слизистых оболочек, аппетит, чувствительность гортани, трахеи и межреберных промежутков при пальпации, время появления и характер кашля, хрипов, одышки, носовых истечений. Для оценки функции внешнего дыхания у телят проводили спирометрию: определяли дыхательный объем (ДО) и минутный объем дыхания (МОД).

В зависимости от уровня жизнеспособности, времени появления первых клинических признаков респираторной патологии и развития симптомокомплекса макро- и микробронхита у животных, телят разделили на пять групп. В первую группу вошли телята с пониженной жизнеспособностью, заболевшие микробронхитом (n=4), во вторую - жизнеспособные телята, заболевшие микробронхитом (n=4). В третью и четвертую группы вошли жизнеспособные телята, заболевшие макробронхитом до (n=3) и после перевода их из профилактория (n=5) соответственно (Табл. 1). В пятую группу вошли жизнеспособные телята, не заболевшие респираторными болезнями на протяжении всего периода наблюдения (n=4).

Из данных, представленных в таблице 1, видно, что у телят 1-й и 2-й групп, впоследствии заболевших микробронхитом, первые клинические признаки болезни регистрировались на 5,8±0,48 и 5,8±1,25 сутки соответственно. При этом температура тела, частота сердечных сокращений и дыхательных движений, минутный объем дыхания и дыхательный объем у телят с нормальной (2-я группа) и пониженной (1-я группа) жизнеспособностью в этом возрасте статистически достоверно не различались. Однако, развитие симптомокомплекса микробронхита у телят 1-й группы происходило на 8,8 суток раньше (Р 3,50:1

Классы МПК:	G01N33/49 крови
Автор(ы):	Черницкий Антон Евгеньевич (RU) , Рецкий Михаил Исаакович (RU) , Золотарёв Александр Иванович (RU) , Ефанова Лариса Ивановна (RU) , Алёхин Юрий Николаевич (RU) , Давыдова Виктория Владимировна (RU)
Патентообладатель(и):	Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИВИПФиТ Россельхозакадемии) (RU)
Приоритеты:
Количество телят, голов (%)	25 (100)	7 (100)
Из них заболело респираторными болезнями, в том числе:	25 (100)	-
- Макробронхитом:	9 (36)	-
Первые симптомы болезни, возраст (сутки)	7,0±0,41	-
Развитие симптомокомплекса болезни, возраст (сутки)	15,2±0,57	-
- Микробронхитом:	12 (48)	-
Первые симптомы болезни, возраст (сутки)	6,7±0,36	-
Развитие симптомокомплекса болезни, возраст (сутки)	15,8±0,37	-
- Бронхопневмонией:	4 (16)	-
Первые симптомы болезни, возраст (сутки)	7,3±0,85	-
Развитие симптомокомплекса болезни, возраст (сутки)	29,8±2,14	-

Из данных, представленных в таблице 8, видно, что из 25 телят с кальций-магниевым соотношением в сыворотке крови в течение 24 часов после рождения ниже 3,50: 1 заболели респираторными болезнями 25 (100%) животных. В том числе макробронхитом - 9 (36%), микробронхитом - 12 (48%), бронхопневмонией - 4 (16%) телят.Первые клинические признаки макробронхита у телят выявляли на 7,0±0,41 сутки, микробронхита - 6,7±0,36 и бронхопневмонии - на 7,3±0,85 сутки жизни. Развитие симптомокомплекса макробронхита, микробронхита и бронхопневмонии регистрировали соответственно на 15,2±0,57, 15,8±0,37 и 29,8±2,14 сутки после рождения.

Из 7 телят, у которых кальций-магниевое соотношение в сыворотке крови в течение 24 часов после рождения было выше 3,50:1, в течение полутора месяцев наблюдения не заболело ни одного животного.

Проведенные опыты показали эффективность и осуществляемость заявляемого способа. По величине кальций-магниевого соотношения в сыворотке крови в течение 24 часов после рождения у телят можно прогнозировать развитие респираторных болезней и своевременно проводить лечебно-профилактические мероприятия.

3. Анохин Б.М. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных / Б.М. Анохин, В.М. Данилевский, Л.Г. Замарин.- М.: Агропромиздат, 1991. - С.124-178.

7. Кондрахин И.П. Методика диагностики и прогнозирования бронхопневмонии телят по биохимическому тесту // Ветеринария. - 1997. - № 12. - С.43-45.

8. Емельянов А.В., Петрова М.А., Лаврова О.В. и др. Нарушения минерального метаболизма на различных этапах развития бронхиальной астмы // Тер. арх. - 1995. - № 8. - С.45-47.

9. Федорова М.В. Диагностика и лечение внутриутробной гипоксии плода. - М.: Медицина, 1982. - 208 с.

10. Corradi М., Acampa O., Goldoni М. et al. Metallic elements in exhaled breath condensate and serum of patients with exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease // Metallomics. - 2009. - N. 1. - P.339-345.

11. Турна А.А., Тогузов Р.Т., Колышкина Н.А. и др. Состояние минерального обмена при различных патогенетических вариантах воспаления // Артериальная гипертензия. - 2010. - Т. 16, № 1. - С.82-87.

13. Шахов А.Г., Рецкий М.И., Сашнина Л.Ю. и др. Роль метаболического статуса в возникновении и развитии респираторных заболеваний поросят // Вестник РАСХН. - 2010. - № 2. - С.59-62.

14. Рецкий М.И., Шахов А.Г., Близнецова Г.Н. и др. Тест для оценки пассивного переноса колостральных иммуноглобулинов // Ветеринария. - 2008. - № 6. - С.48-50.

15. Неонатология: Учебн. пособие: В 2 т. / Н.П. Шабалов. - Т.1. - 3-е изд., испр. и доп. - М.: МЕДпресс-информ, 2004. - 608 с.

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ

Способ прогнозирования развития респираторных болезней у новорожденных телят, включающий взятие крови у телят, отличающийся тем, что кровь берут в течение 24 ч после рождения, определяют в сыворотке крови содержания кальция и магния, проводят расчет кальций-магниевого соотношения, и в случае значений кальций-магниевого соотношения в сыворотке крови меньших, чем 3,50:1, у телят прогнозируют развитие респираторных болезней.