Яйца гельминтов атлас паразитологии

Презентация была опубликована 2 года назад пользователемХовалыг Урана

Презентация на тему: " Атлас микропрепаратов по паразитологии для самостоятельной работы студентов Составитель: доцент кафедры медицинской биологии Секерина О.А." — Транскрипт:

1 Атлас микропрепаратов по паразитологии для самостоятельной работы студентов Составитель: доцент кафедры медицинской биологии Секерина О.А.

2 Атлас предназначен для самостоятельной работы студентов при: обучении по индивидуальному плану обучении по индивидуальному плану отработке пропущенных практических занятий отработке пропущенных практических занятий подготовке к практическим занятиям подготовке к практическим занятиям подготовке к контрольным опросам подготовке к контрольным опросам подготовке к экзамену подготовке к экзамену Атлас содержит изображения более 40 микропрепаратов, которые изучаются на практических занятиях.

3 Тело изогнутое, сплющенное, сужено на обоих концах, имеет жгутик, который идет по краю ундулирующей мембраны Тип Sarcomastigophora Trypanosoma brucei gambiense

4 Тип Sarcomastigophora Trichomonas vaginalis Тело овальной формы с заостренным длинным шипом на заднем конце. Размеры до 30 мкм. Имеет 5 жгутиков. Один жгутик идет вдоль ундулирующей мембраны. По середине тела проходит опорный стержень (аксостиль). Ядро расположено в передней части тела.

5 Тип Sarcomastigophora Lamblia intestinalis Грушевидная форма с заостренным задним концом. Размер – мкм, 4 пары жгутиков Два опорных стержня (аксостили), две симметричные половины, имеющие по одному ядру (1) и присасывательному диску (2). 1 2

6 Тип Plathelminthes Класс Trematoda Fasciola hepatica – печеночный сосальщик

7 Fasciola hepatica Форма листовидная, 3-5 см. На передней части тела расположены две присоски – ротовая (1) и брюшная (2). Каналы кишечника сильно разветвлены (3). За брюшной присоской расположена многолопастная матка (4), под ней – яичник (5), по бокам тела – многочисленные желточники (6), среднюю часть занимают ветвящиеся семенники

8 Яйца печеночного сосальщика Яйца крупные (135 х 80 мкм), овальные, желтовато- коричневые, на одном из полюсов имеется крышечка

9 Яйца печеночного сосальщика

10 Opistorchis felineus - кошачий сосальщик

11 Тип Plathelminthes Класс Trematoda Opistorchis felineus - кошачий сосальщик В средней части расположена матка (1), за ней – округлый яичник и бобовидный семяприемник, в задней части тела –два розетковидных семенника (2), между ними S-образно изогнутый канал выделительной системы (3). Кишечник не ветвится, между ним и краем тела расположены желточники (4)

12 Размер зрелых проглоттид в ширину больше, чем в длину Они содержат открытую розетковидную матку. Тип Plathelminthes Класс Cestoda Diphyllobothrium latum – лентец широкий

13 Членики Членики Diphyllobothrium latum

14 Яйца лентеца широкого Яйца широкоовальные, желтовато-коричневого цвета с гладкой поверхностью. На одном из полюсов имеется крышечка, на противоположном – бугорок.

15 Сколекс вооруженного цепня Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taenia solium Сколекс вооруженного цепня

16 Гермафродитная проглоттида содержит трехдольчатый яичник (третья дополнительная долька яичника расположена между маткой и влагалищем) Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taenia solium

17 Зрелая проглоттида содержит матку с 7-12 боковыми ответвлениями с каждой стороны. Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taenia solium

19 Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taeniarhynchus saginatus Сколекс невооруженного цепня

20 Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taeniarhynchus saginatus Гермафродитные проглоттиды имеют двухдольчатый яичник (1). Под яичником расположен желточник (2). Половая клоака открывается на боковой стороне проглоттиды (3)

21 В зрелых члениках матка содержит боковых ответвлений с каждой стороны В матке находится до яиц Тип Plathelminthes Класс Cestoda Taeniarhynchus saginatus

23 Длина от 1 до 5 см, содержит около 200 проглоттид. На сколексе расположены 4 присоски и хоботок с двойным венчиком крючьев. Матка закрытая, но тонкая, стенка проглоттид легко разрушается Тип Plathelminthes Класс Cestoda Hymenolepis nana

24 Тип Plathelminthes Класс Cestoda Hymenolepis nana

25 Тип Nemathelminthes Класс Nematoda Ascaris lumbricoides

26 Тип Nemathelminthes Класс Nematoda Ascaris lumbricoides Поперечный срез самки аскариды

27 Яйца аскариды Яйца размером х мкм. Форма овальная, реже округлая. Оболочка толстая, многослойная, бугристая, темно-желтая. Внутри яйца после первой линьки формируется инвазионная личинка.

29 Тип Nemathelminthes Класс Nematoda Trichocephalus trichiurus Длина самки до 5 см Передний конец тела тонкий нитевидный, задний – утолщен. В переднем отделе находится только пищевод, в заднем – все остальные органы. Самка Самец

32 Тип Nemathelminthes Класс Nematoda Enterobius vermicularis Размеры яиц х мкм. Форма овально- вытянутая, асимметричная (одна сторона выпуклая, другая – более плоская). Оболочка тонкая, гладкая, прозрачная, бесцветная.

34 Тип Nemathelminthes Класс Nematoda Trichinella spiralis Личинки расположены в скелетной поперечнополосатой мышечной ткани. Свернуты спиралью и покрыты соединительнотканной капсулой. Размеры капсулы 0,4 х 0,25 мм

35 Личинки трихинеллы в скелетных мышцах

36 Тип Arthropoda. Класс Arachnoidea. Отряд Аcari Семейство Ixodidae. Род Ixodes Личинка длиной от 0,5 до 1 мм. Имеет 3 пары ходильных ног. Нападает на ящериц, грызунов, птиц. Нимфа клеща имеет 4 пары ходильных ног, не имеет полового отверстия. Нападает на ежей, грызунов, птиц.

37 Тип Arthropoda Класс Arachnoidea Отряд Аcari Семейство Ixodidae Имаго (Самка) клеща рода Ixodes Ротовой аппарат колюще-сосущего типа. На спинной стороне тела есть хитиновый щиток, закрывающий только переднюю часть тела, что обеспечивает большую растяжимость брюшка при кровососании.

38 Тип Arthropoda Класс Arachnoidea Отряд Аcari Семейство Ixodidae Род Dermacentor Личинка Нимфа

39 Тип Arthropoda Класс Arachnoidea Отряд Аcari Семейство Ixodidae Имаго (самец) клеща рода Dermacentor Ротовой аппарат колюще-сосущего типа (виден со спинной стороны). На спинной стороне тела самца расположен хитиновый щиток, который имеет эмалевый рисунок. Он закрывает всю дорзальную поверхность клеща

40 Ротовой аппарат колюще-сосущего типа. На спинной стороне тела хитиновый щиток с эмалевым рисунком, закрывающий только переднюю часть тела. Тип Arthropoda Класс Arachnoidea Отряд Аcari Семейство Ixodidae Имаго (самка) клеща рода Dermacentor

41 Тип Arthropoda Класс Insecta Отряд Anoplura Pediculus humanus capitis (головная вошь) Длина тела самца 2-3 мм, самки – 3-4 мм. Задний конец тела самца закруглен, у самки – раздвоен. Ротовой аппарат колюще- сосущего типа самец самка

42 Тип Arthropoda Класс Insecta Отряд Anoplura Phthirus pubis Размеры до 1,5 мм. Тело короткое, широкое, трапециевидное. Ротовой аппарат колюще-сосущего типа. самка

43 Тип Arthropoda Класс Insecta Отряд Aphaniptera Pulex irritans Тело сплющено с боков, на поверхности тела есть многочисленные волоски, щетинки, зубчики. На голове расположены короткие усики и пара простых глаз. Последняя пара ног длиннее остальных и служит для прыгания. Ротовой аппарат колюще- сосущего типа.

44 Тип Arthropoda Класс Insecta Отряд Diptera Семейство Culicidae Род Culex Головки самок имеют слабо опушенные усики (1). Нижнечелюст ные щупики составляют 1/3-1/4 длины хоботка (2)

45 Тип Arthropoda Класс Insecta Отряд Diptera Семейство Culicidae Род Anopheles Головки самок имеют слабо опушенные усики (1). Нижнечелюстные щупики по длине равны хоботку (2). 1 2

ОСОБЕННОСТИ ИЗГОТОВЛЕНИЯ И СОХРАНЕНИЯ ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ

Цель нашей работы заключалась в освоении различных техник изготовления микропрепаратов. Для достижения поставленной цели нам было необходимо решить следующие задачи: изучить методы выявления яиц различных возбудителей из проб; подобрать условия для накопления и длительного хранения яиц; изготовить фиксированные неокрашенные/окрашенные микропрепараты; освоить технику заливки микропрепаратов глицерин-желатиной.

Выявления и накопление яиц различных возбудителей из проб фекалий [2]

В своей работе для выявления яиц гельминтов [1] мы проводили гельминтоовоскопию проб комбинированным методом Дарлинга. Накопление яиц гельминтов необходимо как для непосредственного изучения их студентами, так и последующего изготовления из них постоянных препаратов. Большим плюсом накопления яиц в глицерине является то, что яйца не изменяют своей структуры, что очень важно для корректного изучения материала. Для приготовления постоянных препаратов свежевыделенные яйца не пригодны. Они должны быть предварительно выдержаны в глицерине. Согласно данной методики, выделенные яйца помещают в 50% водный раствор глицерина, в котором выдерживают не менее 7—10 дней до приготовления препаратов. Сохранение их в глицерине более длительное время (месяцы и даже год) не отражается на структуре яиц. Однако в ней не указано максимальное количество глицерина, в которое должны быть помещены яйца, вследствие чего нами было последовательно проведено 2 опыта по накоплению паразитологического материала. В первом опыте, яйца аскаридий, выделенные из проб свиньи, вместе с поверхностной пленкой были помещены в пенициллиновый флакончик, заполненный 5 мл 50% глицерина. Впоследствии, автоматической пипеткой, из него было взято 3 пробы: с поверхности, из толщи и со дна. Единичное яйцо было обнаружено лишь в пробе со дна флакончика.

Для усовершенствования методики был проведен 2-й опыт. Была взята проба от свиньи, с повышенной концентрацией яиц власоглавов. Как и в прошлый раз, мы собрали поверхностную пленку, однако, на этот раз поместили ее во флакончик меньшего объема, в 1 мл 50% глицерина. В дальнейшем оттуда автоматической пипеткой было также взято 3 пробы: с поверхности со дна и из толщи глицерина после перемешивания слоев. Яйца, были найдены во всех трех пробах, однако их количество было наибольшим в пробе с поверхности, наименьшее же количество яиц наблюдалось в пробе со дна флакончика.

Изготовление постоянных неокрашенных препаратов из круглых червей рода Toxocara [2]

Препараты из взрослых особей токсокар были приготовлены 2 способами:

1) по методике изготовления постоянных неокрашенных фиксированных препаратов (Рис.1);

2) по методике изготовления постоянных фиксированных препаратов, заключенных в глицерин- желатину (Рис.1).

Для фиксации членики были расположены на предметном стекле и погружены в 70° спирт на 24 часа для фиксации. По окончании фиксации токсокар извлекают из спирта и осторожно снимают с поверхности стекол препаровальной иглой в 70% спирт. Затем производят обезвоживание в спиртах восходящей крепости, помещая материал из 70° в 80°, в 96° и еще раз в 96° спирт, выдерживая в каждом из них по 5 мин. После обезвоживания в спиртах препараты должны быть просветлены. С этой целью препараты последовательно проводят через карбол-ксилол, ксилол и еще раз ксилол. В указанных жидкостях препараты должны находиться не более одной минуты в каждой. Затем препараты заключают в канадский бальзам.

Для изготовления препаратов, заключенных в глицерин-желатину, гельминтов помещают в воду на 3 ч для промывания, затем их последовательно проводят через смеси спирта разной крепости и глицерина по следующей схеме:

1-я смесь —20 мл 40° спирта и 2 мл глицерина

2-я смесь—20 мл 50° спирта и 5 мл глицерина

3-я смесь —20 мл 60° спирта и 6 мл глицерина

4-я смесь— 20 мл 70° спирта и 10 мл глицерина

В каждой из указанных смесей гельминты выдерживаются по 24 часа. Сосуд с последней смесью через 24 часа приоткрывают для того, чтобы спирт испарился и откуда их извлекают по одному экземпляру на предметное стекло. На расправленный гельминт наносят расплавленную глицерин-желатину, осторожно накрывают покровным стеклом и слегка придавливают.

Рис.3. Toxocara. изготовленные по 1-й (1) и 2-й (2) методике.

Стоит отметить, что препараты, приготовленные проводкой через спирт позволяют подробно рассмотреть кутикулу паразита, в то время как у токсокар из спирт-глицерина хорошо просматривается содержимое.

Изготовление постоянных фиксированных и окрашенных препаратов [2]

Согласно данной методике нами были изготовлены препараты члеников Dipylidium caninum (Рис.2). Членики выдерживают в воде 12 ч, после чего их раскладывают на предметном стекле, накрывают его другим. Препараты переносят в 70° спирт на 12 ч. По окончании фиксации гельминты осторожно снимают со стекол и погружают в солянокислый кармин на 1 ч, после чего, для удаления излишков краски и выявления деталей строения членики переносят в солянокислый спирт на 10 мин. После того как станут хорошо заметными семенники, яичники и другие детали строения, препараты переносят в чистый 80° спирт.

С целью дальнейшего обезвоживания исследуемые объекты переносят в 96° спирт, дважды меняя порции. В бюксах со спиртами гельминты должны находиться не менее 5—7 мин. После этого объекты проводятся через карбол-ксилол и дважды через ксилол (в каждой жидкости не более 1-2 мин.). По окончанию проводки членики заключают в Канадский бальзам.

Рис.2. Окрашенный препарат членика Dipylidium caninum.

Данный метод позволяет увидеть на препарате такие детали строения, как семяпроводы, семенники и яичники.

Заключение

Список литературы

Материалом для исследования являются: фекалии, дуоденальное содержимое, гной, кровь, мокрота, моча.

Исследование фекалий. Для диагностики кишечных протозойных инвазий берут жидкий и полуоформленный кал как патологический, так и после дачи слабительных средств. При микроскопии обнаруживают вегетативные формы простейших и цисты. Ввиду быстрой гибели вегетативных форм большинства простейших во внешней среде, исследование проводится немедленно (не позднее 1 часа) после их выделения.

1. Метод нативного мазка. Препарат окрашивают раствором Люголя. На предметное стекло на расстоянии 2–4 см разными пипетками наносят по две капли физиологического раствора и раствора Люголя, затем каждую каплю соединяют с гомогенной взвесью исследуемого материала. В каждом случае необходимо микроскопировать 2–3 препарата из разных мест пробы. При сомнительном и отрицательном результате для окончательного заключения требуется произвести не менее 3 анализов на протяжении 1–2 недель.

Существуют методы, повышающие количество цист в исследуемом материале.

2. Метод флотации (всплывания)

Цисты простейших всплывают в насыщенном растворе NaCl (удельный вес 1,2). Образовавшуюся поверхностную пленку изучают под микроскопом.

3. Метод седиментации (осаждения)

Этот метод основан на том, что цисты простейших обнаруживаются в осадке.

Для диагностики яиц и личинок гельминтов существуют:

1. Методы мазка. Кусочек кала величиной со спичечную головку растирают на стекле с несколькими каплями 20 % раствора глицерина. Количество яиц не столь значительно, чтобы они находились в каждом мазке. Поэтому разработаны методы, повышающие концентрацию яиц в исследуемом препарате.

2. Метод обогащения основан на том, что яйца гельминтов всплывают в насыщенном растворе хлорида натрия, имеющем большую, чем они, относительную плотность. Образовавшуюся поверхностную пленку изучают под микроскопом. В растворе всплывают яйца почти всех гельминтов, кроме яиц трематод, тениид, неоплодотворенных яиц аскариды.

3. Метод осаждения основан на том, что яйца гельминтов под действием детергентов в период отстаивания концентрируются в осадке. Детергент – раствор стирального порошка. Взвесь порции фекалий с детергентом оставляют на сутки или центрифугируют. В средней части осадка находятся легкие частицы пищи и яйца гельминтов. Этот осадок переносят на предметное стекло и микроскопируют.

Исследование крови. 1. Метод нативных мазков. Исследуют на обнаружение трипаносом. Первым признаком из наличия является перемещение эритроцитов или других клеток, вызванное движением жгутиков организмов. В этих местах видны и сами трипаносомы, которые имеют вид светлых, удлиненных, волнообразно изгибающихся паразитов.

2. Метод толстой капли крови. Высушенную каплю, крови окрашивают по методу Романовского–Гимза. Используют для обнаружения токсоплазм, лейшманий, трипаносом и малярийных плазмодием.

Исследование крови применяют для диагностики филяриозов с целью обнаружения микрофилярий. Кровь для этих исследований берут днем, ночью или два раза в сутки в зависимости от вида паразита и переносчика.

Исследование дуоденального содержимого. В желчи и дуоденальном содержимом могут быть обнаружены яйца сосальщиков, анкилостомид, кишечной угрицы, а также вегетативные формы лямблий.

Исследование мочи. Для диагностики мочеполового шистосомоза исследуют мочу, собранную с 10 до 14 часов. Мочу отстаивают и осадок центрифугируют. При микроскопии в затемненном поле зрения можно обнаружить яйца кровяных сосальщиков.

Исследование мокроты. Из мокроты готовят нативный мазок и при микроскопии можно обнаружить яйца легочного сосальщика, личинок анкилостомид и аскарид.

Список литературы

1. Атлас по зоопаразитологии. И. В. Чебышев, М. В. Далин, В. К. Гусев. – Москва, 2004 г. – 173 с.: ил.

2. Болотин Е. И., Федорова С. Ю. Пространственно-временная организация инфекционной заболеваемости населения юга Российского Дальнего Востока. – Владивосток: Дальнаука, 2008. – 224 с.

3. Медицинская паразитология. Н. Н. Ильинских, А. И. Венгеровский, А. В. Лепехин и др. – Томск: Печатная мануфактура, 2001. – 335 с.

4. Основы общей и медицинской паразитологии Р. Г. Заяц, И. В. Рачковская, И. В. Карпов. – Ростов-на-Дону: Феникс, 2002. – 223 с.

5. Паразитозы Приморского края: учебное пособие / Каминский Ю. В., В. А. Иванис, А. Ф. Попов, С. А. Петухова. – Владивосток: Медицина ДВ, 2005. – 160 с.: ил.

7. Чебышев Н. В., Гринева Г. Г. и др. Биология. – М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2005 г. – 592 с.: ил.

\|	следующая лекция ==>
Характеристика класса	\|	ПЕДАГОГИКА В СИСТЕМЕ ГУМАНИТАРНЫХ ЗНАНИЙ И НАУК О ЧЕЛОВЕКЕ

Дата добавления: 2019-02-07 ; просмотров: 734 ; ЗАКАЗАТЬ НАПИСАНИЕ РАБОТЫ

Атлас по медицинской паразитологии

1. Систематика простейших

2. Схема строения амебы

3. Схема строения лямблии, трихомонады

4. Строение токсоплазм, малярийного плазмодия

5. Жизненный цикл плазмодия

6. Морфология балантидия

1. Внешний вид трематод

2. Жизненный цикл возбудителей трематодозов

3. Строение цестод (ленточные черви)

4. Строение нематод (круглые черви)

1. Морфология чесоточного зудня и поражения кожи им вызываемые

2. Строение и развитие малярийного комара

Схема строения амебы

Схема строения лямблии, трихомонады

Изображение вегетативной формы лямблии, полученное при помощи сканирующего электронного микроскопа .

Строение токсоплазм, малярийного плазмодия

Жизненный цикл плазмодия

Внешний вид трематод

1 — Busephalus polymorphus, дл. 1—2 мм;

2 — Fasciola hepatica, дл. до 30 мм;

3 — Dicrocoelium lanceatum, дл. ок. 10 мм;

4 — Opishtorchis felineus, дл . ок . 10 мм ;

5 — Echinostoma revolutum, дл. 7—10 мм;

6 — Cyclocoelum mutabile, дл. ок. 12 мм;

7 — Schistosom a haematobium, дл. 12—20 мм; более широкий самец удерживает самку в своем брюшном жёлобе.

Жизненный цикл возбудителей трематодозов

Схема жизненного цикла возбудителей трематодозов : 1 — яйцо трематоды, выделенное с фекалиями или мочой (при мочеполовом шистосомозе) и попавшее в водную среду; 2 — мирацидий, вышедший из яйца в воде; 3 — развитие личинок в моллюске (а — материнская спороциста, б — дочерняя спороциста, в — церкарий); 4 — развитие церкариев в рыбах, раках, крабах — дополнительных хозяевах, в которых формируется покоящаяся инвазионная стадия — метацеркарий (5); 6 — инцистирование церкариев на водных растениях в стоячих или медленно текущих водоемах и превращение их в адолескариев (7); 8 — церкарий шистосоматид, проникающий через кожу.

Строение цестод (ленточные черви).

Цепень невооружённый (общий вид).

Лентец широкий (стрелкой указана головка гельминта).

Строение нематод (круглые черви).

Человеческая аскарида: 1 — самец; 2 — самка

а — половозрелая самка (1 — везикула, 2 — пищевод, 3 — бульбус, 4 — кишечник, 5, 6 — два яичника, 7 — матка, 8 — анус); б — головной конец червя; в — самец; г — яйцо.

Морфология чесоточного зудня и поражения кожи им вызываемые

чесоточный клещ ( Sarcoptes scabiei );

Микропрепарат соскоба чешуек эпидермиса при чесотке:

1 — самка чесоточного клеща; 2 — яйца с эмбрионами

Чесоточные ходы в виде сдвоенных папуловезикул: на коже кистей рук.

Чесоточные ходы в виде сдвоенных папуловезикул: на коже туловища

Строение и развитие малярийного комара

Сидящий малярийный комар

Развитие малярийного комара: а — яйцо; б — личинка; в — куколка.

Цикл развития Plasmodium vivax:

1 — спорозоиты; 2—4 — шизогония в клетках печени; 5—10 — шизогония в эритроцитах; 11 — макрогаметоцит; 11a — молодой микрогаметоцит; 12, 13 — макрогамета; 12а, 14 — зрелый микрогаметоцит; 15 — образование микрогаметы; 16 — слияние макро- и микрогаметы; 17, 18 — оокинета; 19 — проникновение оокинеты через стенку кишечника комара; 20 — ооциста; 21—24 — образование в ооцисте спорозоитов; 25 — спорозоиты в слюнной железе комара.

Выберите книгу со скидкой: