Паразитарные болезни рептилий васильев

Является членом ARAV (Международная ассоциация ветеринаров, практикующих с амфибиями и рептилиями).

Круг научных интересов: паразитология, общая и сравнительная патология, диагностическая визуализация, экспериментальная хирургия, клиническая фармакология.

- В террариум Московского зоопарка я пришел еще студентом. Меня очень увлекала работа с рептилиями, но я совершенно не собирался заниматься их лечением. В дальнейшем, я прошел стажировки в Тракийском университете в г. Стара Загора, где изучал патанатомию и вскрывал павших змей в серпентариях; в ветеринарном отделе зоопарка Skansen в Стокгольме; в Московской ветеринарной академии по индивидуальной программе сразу на 4-х кафедрах: паразитологии, патанатомии, микробологии и вирусологии.

Зоопарк - очень удобное место для того, чтобы собирать первичный материал, потому что здесь много животных, которые болеют. Но накопленный материал должен быть обработан и пройти анализ, чтобы из него можно получить научный продукт. К сожалению, зоопарк – и для меня это огромная проблема - относится к Министерству культуры и не является научным и лечебным заведением, где есть все необходимое для научных исследований. Мне приходится заниматься наукой и преподавательской деятельностью в ущерб основной работе. Научные исследования невозможно выполнить одному и, тем более, не имея для этого соответствующей базы. Когда я был моложе, мне приходилось бесконечно обращаться в различные клиники и институты – помню, одновременно я имел контакты с 16 организациями, где у меня было много друзей. Немало времени я провел, разбираясь с опухолями в Онкологическом центре, во многих московских больницах: Филатовской, 1-й Градской; отраслевых институтах: исследовательском институте морфологии человека, ВИГИСе…

Я расплачивался за помощь личным общением, приглашениями на экскурсии в зоопарк и т.д. Людям, которые мне помогали, я очень признателен. Статьи и книги, мною написанные, создавались, благодаря этому. И конечно, энтузиазму. Сейчас мне кажется, что я много истратил времени вхолостую, с низким КПД. Когда бы я мог этому научиться - я бы сэкономил лет 10, а то и 20, своей жизни.

Накопление первичного материала – это задача для молодого человека, а процесс синтеза, осмысления требует более зрелого возраста, но сил становится меньше и энтузиазма уже не хватает. Я страдаю от нехватки времени, потому что не успеваю читать всю литературу, которая ко мне приходит, иностранную в первую очередь. Если ты читаешь только специализированную литературу, то деградируешь как личность, и если ты не сложился к 30-ти годам в качестве академически образованного профессионала, то уже вряд ли сложишься.

- Весы. Я сомневающийся, часто не верящий себе. В науке это хорошо.

О чтении детективов

- Задачи исследовательского характера нам, в зоопарке, приходится выполнять самостоятельно. К примеру, у нас заболела проехидна, а ни один зоопарк мира на тот момент ее не держал. Как ей вводить антибиотики? Сколько уколоть проехидне? Это нельзя узнать нигде. Я посчитал по методу аллометрического скейлинга дозу для сумчатых, нашел формулу, коэффициенты, чтобы понять, сколько ей нужно уколоть байтрила, какие должны быть интервалы дозирования – по скорости метаболизма ехидна находится где-то посередине между сумчатыми рептилиями. В итоге, мы ее вылечили.

Бывает очень часто, когда ты вдруг цепенеешь у микроскопа или над вскрываемым животным и не можешь ответить на возникающий вопрос. Пока ты не решишь эту задачу, она спать не дает. Это как чтение увлекательного детектива, который не можешь бросить, не дочитав.

Потом, путем долгих поисков и, иногда, колоссальных затрат времени происходят маленькие открытия, которые помогают в лечении и дают возможность разобраться, несет ли данный исследуемый объект какой-то патогенный потенциал для конкретных животных.

- К рептилиям плохо применимы методы специальной диагностики. Это животные, у которых очень широкие нормы многих физиологических показателей. Ко мне часто обращаются из фирм с просьбой испытать различные препараты, хорошо показавшие себя на других животных. Но я редко это могу сделать, потому что очень сложно подобрать критерии, по которым можно формализовать исследования, чтобы они стали научными. Улучшение общего состояния и исправление симптомов – недостаточное заключение для формирования научных выводов, как не крути. Наука с ними - иная, на другом уровне. Эти животные совершенно иначе решают проблемы, которые перед ними ставит жизнь, среда обитания и т.д. Своим стажерам я привожу такой простой пример. Нормальная температура человеческого тела всегда – 36,6º, это дает нам возможность не умереть при перепадах до -30º или до +30º. На жесткий гомеостаз направлена вся физиология млекопитающего. Рептилия же, чтобы не умереть, должна замерзнуть до -30 или нагреться до +30. В ее физиологии, наоборот, нет никакого гомеостаза, а есть возможность выживать при экстремальных ситуациях. Животное может голодать 2 года. При этом, биохимический профиль почти не меняется. И, наоборот, при других условиях, например, беременности или изменении сезона, он может заметно измениться и у здоровых животных. В связи с этим многие параметры и результаты бывает сложно интерпретировать.

К таким, плохо изученным с точки зрения классической ветеринарии объектам, очень сложно применить стандартные алгоритмы, принятые для других животных. Их надо видеть, чтобы разбираться в болезнях, потому что симптомов ярких, патогномоничных, манифестных – немного - и они, как правило, невыразительны.

Их несут, потому что они не едят и вялые. Мы можем сделать рентген, но кроме случаев перелома костей и инородных тел рентген ничего не покажет. УЗИ - мало информативно, а полная биохимическая панель предоставит заметные изменения параметров, только тогда, когда будут намечены значительные органные нарушения. Для работы с этими животными нужен большой клинический опыт, основанный на постоянном наблюдении за их поведением и пониманием того, что является нормой в их поведении.

- Я очень радуюсь, когда мои ученики правильно и грамотно впитывают то, что я в них вкладываю, и быстро движутся дальше.

Для того, чтобы молодой специалист начал самостоятельные практические шаги, достаточно 2-х недельной стажировки. Многие возвращаются, потому что у них появляются другие, более осмысленные вопросы.

Мне приятно вспомнить, как одна из моих учениц из Екатеринбурга была приглашена на постоянную работу в Штаты к очень известному там специалисту по амфибиям – Кевину Райту. Она смогла удивить его своими знаниями и навыками.

- Микозы – это область моих отдельных интересов. Это нередкая проблема у моих пациентов, причем доля диссеминированных микозов, обусловленных такими патогенами, как CANV или Fusariumspp. в последние годы заметно возрастает. Проблемы микозов для рептилий – наболевшие, свежие, я их решаю с помощью Лаборатории микозов ВГНКИ, почти единственной, умеющей грамотно высевать из материала от рептилий грибы.

О достижениях Московского зоопарка

- У нас достижения вполне серьезные. В террариуме очень богатая коллекция ядовитых змей, есть очень редкие виды, то, чего нет нигде в мире. Многие виды разведены впервые, например я разводил почти все виды кобр, - более 12. У нас была коллекция из 240 видов рептилий. В 1998 году мы получили красноголового крайта - змею, которая нигде в неволе не размножалась. Это ядовитая ночная змея - очень красивая - питается только змеями. Известный немецкий террариумнист Людвиг Трутнау очень удивился, когда увидел у нас эту змею. У него красноголовый крайт прожил 1,5 года, и он этим очень гордился. В Московском зоопарке они до сих пор живут и размножаются.

У нас 10 лет жили черные питоны, - более 1,5 лет они не жили ни в одном зоопарке. Для этого мне пришлось съездить в Новую Гвинею, жить целый месяц с папуасами, изучать, как живет черный питон. Это сложный, изолированный, реликтовый вид, живущий высоко в горах. Питон непрерывно болеет, как только его отлавливают и перевозят жить в условиях города. У него очень интересный состав паразитов, этому я посвятил целый раздел в своей кандидатской диссертации. Я разобрался в том, какие паразиты живут у питонов, в их жизненных циклах, чем надо лечить этих змей. После этого они у нас прижились.

У зоопарка очень много личных контактов по всему миру с крупнейшими организациями, зоопарками, институтами. Когда я сюда пришел работать, мы получали 10-15 посылок в год из Центральной Африки, из других мест. Теперь многие регионы закрыты из-за ящура или из-за чумы свиней, где-то урезаны квоты, и рептилий из природы нельзя получить, только по эксклюзивным разрешениям правительств.

Многие крупные авиакомпании отказываются возить змей, даже в специальных ящиках. Очень сложно оформляются ветеринарные документы, большие проблемы с ветеринарной службой, какие-то страны требуют немыслимые прививки, в то время как для рептилий никаких прививок не существует вообще. Бумажная волокита затягивается на годы. С таможней большие сложности. Раньше мы все получали с борта самолета. Животные не могут зимой стоять на поле, они погибали из-за этого.

Слава богу, я паразитологией занимался, когда было полно змей, рептилий и их легче было получить из природы.

В Туркмении я ловил гюрз для серпентария, мы несколько лет проводили здесь учет численности этих змей. На Дальнем Востоке мне приходилось ловить змей для официального зоопарковского обмена. Я несколько раз по приглашению зооторговых фирм ездил в Индонезию, разбирался, почему происходит падеж тех или иных животных. Здесь я просиживал целый месяц с микроскопом, вместо того, чтобы разгуливать по джунглям.

Об ответственности за тех, кого приручили

- Почему заводят дома экзотов?

Когда человек держит много ядовитых змей, это вызывает подозрения.

- Это необычные люди?

- Кажется, что у них есть какой-то подвох. Хотя ко мне ходят разные, как правило, совершенно нормальные люди со змеями, с ядовитыми змеями также. Есть блестящие специалисты, которые их разводят, интересуются. И ядовитые змеи у них живут, потому что это красиво.

В наше время как-то выделиться подобным образом довольно сложно. Вот, в 90-е годы я видел классических новых русских, которые обязательно держали питонов, пираней. Попадались такие книжные персонажи. Например, дамы, которые в 20-е годы прошлого века делали бы революцию, у них обязательно была ядовитая змея, курили они огромные пахитоски. Это все человеческие психотипы.

- Пытаться оперировать экзотических животных, особенно рептилий, на золетиле, нереально. У него очень небольшая терапевтическая широта, маленький интервал доз. Кетамин можно применять для вводного наркоза и при малых операциях, кто умеет - можно использовать пропофол. Более приемлемым вариантом является изофлюран. Я горжусь, тем, что сделал обоснование по поводу усыпления рептилий изофлюраном без наркозного аппарата - им не нужен кислород. К примеру, в Индонезии, в полевых условиях, я делал кесарево сечение с применением изофлюрана на ферме, где разводили редких хамелеонов. Все мои ученики умеют это делать и развезли технологию, что позволяет пока выйти из положения.

Вопрос наркоза – больная тема, а для экзотов – особенно. Животные от этого страдают. Мне иногда хочется, чтобы все ветеринарные врачи объявили, наконец, забастовку и перестали оперировать хотя бы неделю! Может быть, тогда нас услышат!

- Змеи болеют реже других рептилий?

- Наоборот, змеи болеют чаще других рептилий. Змей реже разводят, они часто попадают в неволю из природы, поэтому у них много паразитарных заболеваний. Для меня – это самый интересный объект. Змея – самый лучший объект для паразитолога, она имеет очень разнообразную паразитофауну, в отличие от черепах, у которых фауна паразитов гораздо беднее. Змея - мечта хирурга и кошмар анестезиолога, ей достаточно сложно давать наркоз, она непросто из него выходит. Технику УЗИ лучше всего тренировать на змее, потому что у нее органы расположены линейно, а труднее всего - на черепахе. У змей гораздо больше болезней, чем у других рептилий: онкология встречается во много, в сто раз чаще, больше вирусных, достаточно много метаболических болезней.

- Наступающий, 2013, по восточному календарю – год змеи. Что в связи с этим вы хотели бы пожелать нашим читателям?

- Для Востока змея, прежде всего – олицетворение ума и мудрости, она должна нести удачу людям интеллектуальным, стремящимся к совершенствованию.

Мне хочется пожелать коллегам успехов в работе, постоянного обновления своих знаний, новых достижений в своей профессии и творческого долголетия.

Для многих пресмыкающихся эндопаразиты – один из основных факторов, вызывающих дизадаптацию и гибель в первые недели содержания. При стрессах, отловах, транспортировке, некомпетентной передержке, нарушении температурного режима у таких животных возможна суперинвазия и, вследствие нее, накопление токсичных продуктов жизнедеятельности гельминтов, что приводит к быстрой гибели животных. Большинство эндопаразитарных заболеваний протекает субклинически. Без копрологических исследований нативных мазков диагноз поставить затруднительно. Большую опасность представляют гельминты с прямым циклом развития. Их концентрация значительно увеличивается за счет закрытости системы террариума.

В экспозициях зоопарков смертность от гельминтозов составляет около 13 % (Barnard, 1994), уступая по количеству погибших животных лишь алиментарным факторам, таким как жировые дистрофии. Поэтому тема гельминтозов, их лечения и профилактики является крайне важной для герпетокультуры в целом.

Материалы и методы

Результаты и обсуждение

Наиболее распространенными гельминтозами у обследованных животных оказались заражение оксиурами, аскаридами и представителями подотряда спирурат, а также различные внекишечные нематодозы.

Патогенность оксиур невелика и при умеренной интенсивности инвазии не вызывает серьезных проблем. Наиболее часто в нашей практике мы сталкивались с оксиурами у растительноядных видов черепах, хамелеонов, агам и игуан. Все виды оксиур являются геогельминтами, имеют прямой жизненный цикл, и их полное развитие занимает не более 40 дней (Васильев, 2000). В неволе происходит многократное заражение животных гельминтами, что приводит к накоплению их биомассы в организме хозяина. Количество паразитов в одном животном может превышать несколько тысяч особей.

Аскариды, характерные для хищников, выявлены у хамелеонов, варанов и змей. Заражение происходит при заглатывании промежуточных хозяев – лягушек, ящериц, мелких грызунов. У видов, инвазирующих хамелеонов, развитие личинки происходит в беспозвоночных (Chabaud, 1962). Заражение аскаридами вызывает воспаление в местах локализации, анемию, иногда серозный целомит. Основным методом диагностики аскаридозов является микроскопия, так как яйца всех аскарид имеют типичную для них морфологию.

Для представителей подотряда спирурат рептилии могут являться окончательными и резервуарными хозяевами. Промежуточными хозяевами этих биогельминтов служат ракообразные и насекомые. Взрослые спирураты, в основном, локализуются в стенке желудка, проксимальном отделе кишечника (Jones, 1995). Наиболее часто мы встречали спирурат у варанов, сцинков, водных черепах и других плотоядных рептилий.

Внекишечные нематодозы характерны для животных, полученных из природы, так как переносятся комарами и клещами.

Нематоды циркуляторного русла, представители подотряда Filariata, встречаются у тропических змей, ящериц и черепах. Для мадагаскарских хамелеонов специфичен такой вид, как Filaria furcata. Заражение происходит только трансмиссивно при помощи комаров Culicidae, а также клещей Hirstiella trombidiformis. Взрослые филярии локализуются под кожей, где их патогенное влияние незначительно. Также бывает комбинированная локализация гельминтов, когда головным концом паразит находится под кожей, а хвостовым – в органе (Васильев, 2005). Такую локализацию следует учитывать при хирургическом удалении гельминтов. Их следует удалять, не повреждая покровов, иначе содержимое целома проникнет под кожу, что приведет к гибели животного вследствие интоксикации. Для этого необходимо пальпаторно определить локализацию гельминта, сделать разрез в нескольких миллиметрах от этого места, сдвинуть кожу в сторону гельминта и извлечь его с помощью иглы от шприца и пинцета (рис. 1).

Рис. 1. Извлечение филярии с подкожной локализацией.

Легочные нематоды в нашей практике были обнаружены только у одной особи йеменского хамелеона (Chameleo calyptratus), которая содержалась совместно с животными, полученными из природы, в общем террариуме.

Заражение цестодами не представляет большой опасности при террариумном содержании ввиду отсутствия промежуточного хозяина. Случаи цестодозов были отмечены нами только у Phelsuma grandis, полученных из Мадагаскара.

В результате проведенной работы было показано, что наиболее частыми из обнаруженных гельминтных инвазий являются оксиуры (около 60 % от общего количества). Все обследованные животные, полученные из природы, были заражены филяриями, что составило около 15 % от общего количества случаев (табл. 1). У всех животных с филяриозами гельминтов удаляли хирургическим путем, при этом у каждого животного было обнаружено от 2 до 17 филярий с подкожной локализацией.

Таблица 1. Соотношение видов гельминтных инвазий у обследованных рептилий

Группа гельминтов	Хозяева	Частота встречаемости, % от общего кол-ва случаев
Оксиуры	Растительноядные черепахи, хамелеоны, агамы, игуаны	55-60 %
Аскариды	Хамелеоны, вараны, змеи	10-12 %
Спирураты	Вараны, сцинки, водные черепахи	8-12 %
Филярии	Змеи, ящерицы, черепахи из природы	15-17 %
Легочные нематоды	Хамелеоны	Крайне редко
Цестоды	Гекконы	Крайне редко

В многовидовых коллекциях необходимо учитывать пути и способы заражения животных гельминтами. Рептилии, получающие живые корма из природы, черепахи, для которых характерна копрофагия, будут инвазированы на сто процентов, тогда как змеи, рожденные в неволе, содержащиеся отдельно и получающие в качестве корма лабораторных грызунов, заражаются в исключительных случаях. По нашим данным, животные, полученные из природы, всегда являются носителями от одной до семи различных групп гельминтов.

Таблица 2. Препараты, применяемые при различных гельминтозах

Антигельминтный

препаратДозировка, способ и кратность введенияПоказания к применениюПримечанияАльбендазол30-50 мг/кг, п/о, повтор через месяцПри аскаридозах, оксиурозах, стронгилятозах, стронгилоидозах, спируратозахКроме некоторых спируратозовФенбендазол50-100 мг/мл, п/о, каждые 10 дней,

4 разаУ черепах20-50 мг/кг, п/о,

внутримышечно, повтор через

2 неделиКапилляриозы, микрофилярии, нематоды циркуляторного руслаПредварительно извлечь подкожных филярийЛевамизол5-10 мг/кг,

интрацеломически, повтор через

2 неделиДля черепах применять ограниченно

Важнейшую роль в комплексе противопаразитарных мероприятий, кроме собственно дегельминтизации, является дезинвазия террариумов. Для их обработки применяется кипяток, где это возможно (камни, коряги и пр.) и Vircon S 2%-й раствор с 24-часовой экспозицией для всех остальных декоративных частей и всего террариума. При данной обработке погибают абсолютно все яйца гельминтов и дегельминтизацию можно считать выполненной.

Заключение

Васильев Д. Б. Ветеринарная герпетология: ящерицы. – М.: Проект-Ф, 2005.
Васильев Д. Б. Паразитарные болезни рептилий (гельминтозы и пентастомозы, их диагностика, терапия и профилактика). Автореф. дисс. на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук, М., 2000. – С. 1-24.
Васильев Д. Б. Паразитарные болезни рептилий в условиях многовидовой ассоциации зоопарка. Материалы XI ММВК, 2003.
Barnard S., Upton S. A veterinary guide to the parasites of reptiles. Krieger Publishing Co, FL, 1994.
Chabaud A., Brygoo E., Petter A. Cycle evolutif de l’Ascaride des Cameleons malgaches. Bull. Soc. Zool. France, 1962.
Jones H. Pathology associated with Physalopterid larvae (Nematoda: Spirurida) in the gastric tissues of Australian reptiles. J. Wildl. Dis., vol. 31, No 3, 1995.

Статья Васильева Д.Б. ""Криптоспоридиоз у рептилий: современное состояние проблемы"

"Криптоспоридиоз у рептилий: современное состояние проблемы"

Д. Б. Васильев(1), Е. В. Блинова(2)

1Московский зоопарк, 2РУДН, кафедра ветеринарной патологии
Криптоспоридиоз – протозойная болезнь с подострым или хроническим течением, характеризующаяся дисфункцией желудка и тонкого кишечника и выделением ооцист. Болезнь медленно прогрессирует и почти всегда приводит к гибели чувствительных животных, у других видов (возможно, параспецифических хозяев) проявляясь, как оппортунистическая инвазия, развивающаяся в комплексе с другими инфекционными и паразитарными патогенами. Криптоспоридиоз вызывают протозойные паразиты рода Cryptosporidium, которых раньше считали кокцидиями, близкими к семейству Eimeriidae. В настоящее время их статус остается спорным, так как недавно проведенный филогенетический анализ олигонуклеотидных последовательностей рибосомальных РНК криптоспоридий, полученных с помощью ПЦР, показал их близкое родство с грегаринами беспозвоночных (Carreno et al., 1999). Правда, в более поздней работе, выполненной также с помощью ПЦР, но на других праймерах, было показано сходство криптоспоридий с эймериями, хотя сравнительный анализ с грегаринами в этом исследовании не проводили (Sulaiman et al., 2002).
В пределах рода систематика криптоспоридий основана на морфологических, генетических и биологических особенностях. Различные виды отличаются по размерам и форме ооцист, которые могут быть круглыми или овальными, диаметром от 3 до 8 мкм. Кроме того, криптоспоридии отличаются по своей гостальной специфичности (т.е. паразитируют у разных видов животных), органной локализации, патогенности, длительности прелатентного периода и интенсивности выделения ооцист. Генетические различия определяются олигонуклеотидными последовательностями хорошо охарактеризованных генов. В будущем, также как в ситуации с хламидиями, генетические тесты могут выявить значительно большее видовое разнообразие в этой группе, чем предполагалось ранее. Это может объяснить, почему криптоспоридиоз, хорошо диагностируемый и успешно поддающийся терапии в одной группе животных, значительно хуже диагностируется и лечится у других животных того же вида.
До недавнего времени выделяли 8 валидных видов криптоспоридий, за последний год этот список расширился до 12 видов (см. таблицу 1).
Такие виды, как C. muris, С. canis, C. felis и C. meleagridis относят к оппортунистическим патогенам человека. Некоторые виды криптоспоридий являются высоко специфичными, другие поражают много видов животных, третьи проявляют патогенность только у иммунодепрессивных особей. C. serpentis до недавнего времени считали единственным видом, инвазирующим рептилий (Cranfield et al., 1999). Сейчас принято считать, что у рептилий паразитирует 3 вида криптоспоридий: C. serpentis, C. saurophilum (Koudela, Modry, 1998) и C. muris (Egyed et al., 2003). Первые два специфичны для змей и ящериц соответственно, второй вид также инвазирует черепах. Выделение ооцист С. muris у рептилий, питающихся мышами, считают псевдопаразитизмом. Во всяком случае, клинического криптоспоридиоза, вызванного этим видом, у рептилий пока не наблюдали
Таблица 1. Валидные виды криптоспоридий, паразитирующие на позвоночных (по T.K. Graczyk, 2004)
Вид криптоспоридий Дефинитивные хозяева
C. parvum Человек, новорожденные мыши, жвачные
C. hominis Человек
C. muris Грызуны, человек
C. andersoni Жвачные
C. felis Кошки, человек
C. canis Собаки, человек
C. wrairi Морские свинки
C. meleagridis Индюки, человек
C. baileyi Птицы
C. nasorum Рыбы
C. serpentis Змеи
C. saurophilum Ящерицы, черепахи

Терапия и профилактика
Строго говоря, успешная терапия криптоспоридиоза не разработана, хотя для этих целей пытались использовать множество препаратов. Лечение может приводить к купированию клинического заболевания и выделения ооцист, но, по-видимому, не вызывает полной элиминации паразита. Для терапии разные авторы предлагали галофугинон, спирамицин, бисептол, толтразурил (Cranfield et al., 1999), паромомицин (Pare et al., 1997), азитромицин, празиквантел и миразид (Allam, Shehab, 2002; Kadappu et al., 2002), бензидол – 4,9-хинон (Kayser et al., 2002), нитазоксанид (Amadi et al., 2002) и гипериммунное коровье молозиво (Graczyk et al., 1999, 2000). В настоящее время криптоспоридиоз у рептилий лечат, в основном, паромомицином. В гуманной медицине его назначают при лечении амебиаза и цестодозов. По фармакокинетике этот препарат близок к неомицину, то есть почти не всасывается в кишечнике, но при язвенном колите возможно его ото- и нефротоксическое системное действие. На ранних стадиях криптоспоридиоза при сильном увеличении доз (до 300 и даже 800 мг/кг в сутки) возможно улучшение, хотя этот препарат, также как и остальные, не профилактирует это заболевание и не препятствует его распространению. Бисептол при длительном курсовом применении (до месяца и более) также вызывает временное улучшение, не препятствуя выделению ооцист. Ремиссия может длиться от нескольких месяцев до двух и более лет. Более успешно действует разработанная нами схема с комбинацией спирамицина, бисептола и метронидазола. Складывается впечатление, что антибиотики, возможно, влияют не на самих криптоспоридий, а на секундарную микрофлору, купируя диарейный синдром и регургитацию. Кокцидиостатики, применяемые для терапии птиц, такие как галофуразона гидробромид или толтразурил (Байкокс), имеют очень небольшую терапевтическую широту. Байкокс иногда назначают черепахам, у которых он не дает побочных эффектов, в случае обычных кокцидиозов, чаще с положительным результатом. Для змей же этот препарат высоко токсичен и вызывает у них острый гепатит и смерть. Наиболее успешной на сегодняшний день оказалась терапия гипериммунным коровьим молозивом. Этот препарат, разработанный для лечения криптоспоридиоза человека, получают от отелившихся коров, иммунизированных к C. parvum в стельный период. Для рептилий доза 10 мл/кг дается внутрь каждые 7 дней. Курс составляет 6 доз. Лечение было высоко эффективным для змей и варанов, у которых после лечения был получен отрицательный результат при окраске фекалий имунофлуоресцентными антителами. Менее впечатляющие результаты были достигнуты при лечении гекконов и черепах (Cranfield et al., 1999). Рекомендации по лечению см. в таблице 3.
Таблица 3. Рекомендации по лечению криптоспоридиоза у рептилий.
Препараты Схема применения Авторы
Бисептол
Спирамицин 40 мг/кг ежедневно, 4 недели300 000 ЕД/кг ежедневно, 2 недели Васильев, 2003
Паромомицин 100-360 мг/кг, ежедневно, 2 недели 300-800 мг/кг ежедневно (для гекконов) Cranfield et al., 1999 Coke, Tristan, 1998
HBC (гипериммунное коровье молозиво) 10 мл п/о,1 раз в неделю х 6 Graczyk et al., 1998
Кокцидиостатики
Толтразурил (байкокс) 15 мг/кг, каждые 48 часов х 3 (для черепах)4,5 мг/кг, каждые 24 часа х 2 (для всех рептилий) Frye, Williams, 1995Schoemaker, 2001
Галофугинон ? Cranfield et al., 1999 Токсичны для змей
Галофуразона гидробромид ? Cranfield et al., 1999 Токсичны для змей

Уральский государственный аграрный университет

Iowa State University of Science and Technology

ISSN 2308-0426

Материалы для бесплатной публикации отправлять сюда: m-nauka@mail.ru

А. Р. Ахметьянова, студент, В. М. Усевич, кандидат ветеринарных наук, доцент, Уральский государственный аграрный университет. Рецензент: И. М. Мильштейн, кандидат ветеринарных наук, доцент

протозоозы, рептилии, эндопаразиты

1. Васильев Д. Б. Гельминтозы рептилий в неволе и современные паразитицидные препараты, используемые в террариумной практике/Научные исследования в зоологических парках. 1995. Вып. 5. С. 96-117.

2. Васильев Д. Б. Экспериментальное применение антигельминтиков вальбазена и цитина для рептилий в Московском зоопарке // Научные исследования в зоологических парках. 1996. Вып. 6. С. 17-25.

3. Васильев Д. Б., Тимерпн И. В. Ветеринарные аспекты содержания редкого вида г ИОВ - питона Белена (Morelia Ьое1еп1) // Научные исследования в зоологических пар. 1997. ВЫП. 9. С. 134-148.

4. Васильев Д. Б. Черепахи: болезни и лечение. Сер. "Практика ветеринарного вр; Научное издание. Изд. "Аквариум", М. 1999. 421 с.

5. Васильев Д. Б., Балакина О. В. Гематологические исследования при инфекционно-паразитарных болезнях редкого вида питонов, Morelia boeleni // Научные исследования в зоологических парках. 1999. Вып. 11 (В печати).

6. Васильев Д. Б. Паразитарные болезни рептилий // Диссертация канд. вет. наук. 1999.

7. Васильев Д. Б. Ветеринарная герпетология. М.: Аквариум Принт, 2016. С. 246-269.

8. Васильев Д. Б.Паразитарные болезни рептилий: Гельминтозы, пентастомозы, их диагностика, терапия и профилактика // Диссертация и автореферат по ВАК РФ 03.00.19, кандидат ветеринарных наук Васильев Дмитрий Борисович. М., 2000.

9. Федоров К. П., Донченко А. С. Основы общей и прикладной ветеринарной паразитологии. Новосибирск, 2004. 1044 с.

10. Горохов В. В., Романенко Л. Н., Козлова Г. А., Москвин А. Е., Васильев Д. Б., Вол А.Н. Пентастомы - паразиты животных и человека // Труды Всеросс. ин-та Гельмин. 1999. № 35. С. 46-56.

11. Горохов В. В., Романенко Л. Н., Козлова Г. А., Москвин А. Е., Васильев Д. Б., Горе Е. В. Пентастомы - паразиты человека и животных // Ветеринария, 1999. № 1. С. 30.

12. Brown, C. (2004) Emerging zoonoses and pathogens of public significance – an overview. Revue Scientifique et Technique, Office International Epizooties, 23:435-442.

13. Brown, R. (1969) Snapping turtles. Herpetology, 3:9-12.

14. Cooper, J.E., Ewbank, R., Platt, C., & Warwick, C. (1989) Euthanasia of amphibians and reptiles, Universities Federation for Animal Welfare/World Society for the Protection of Animals.

15. Conant, R. (1975) Reptiles and Amphibians: Eastern/Central North America. Peterson Field Guides. Houghton Mifflin Co Boston.

16. Frye, F.L. (1995) Salmonellosis. Reptilian, 1.

17. Frye, F.L. (1991) Biomedical and Surgical Aspects of Captive Reptile Husbandry, 2 Vols., Krieger Publishing, New York.

18. Geue, L., & Löschner U. (2002) Salmonella enterica in reptiles of German and Austrian origin. Vet Microbiol 84(1-2):79-91.

19. 19. Johnston, J.J., Savarie, P.J., Primus, T.M., Eisemann, J.D., Hurley, J.C., & Kohler, D.J. (2002). Risk Assessment of an Acetaminophen Baiting Program for Chemical Control of Brown Tree Snakes on Guam: Evaluation of Baits, Snake Residues, and Potential Primary and Secondary Hazards. Environ. Science Technology, 36: 3827-3833.

20. Kolbe, J.J., Larson, A., & Losos, J.B. (2007) Differential admixture shapes morphological variation among invasive populations of the lizard Anolis sagrei. Molecular Ecology, 16:1579-1591.

21. Krauss, H., Weber, A., Appel, M., Enders, B., Graevenitz, A.V., Isenberg, H.D., Schiefer, H.G., Slenczka, & W., Zahner, H. (2003) Zoonoses. Infectious Diseases Transmissible from Animals to Humans. 3rd Edition, 456 pages. ASM Press. American Society for Microbiology, Washington DC, US.

22. Mermin, J., Hutwagner, L., Vugia, D., Shallow, S. et al. (2004) Reptiles, amphibians, and human Salmonella infection: A population-based, case-control study Clinical Infection Disease, 38:253-261.

23. Pinya, S., & Carretoro, M.A. (2011) The Balearic herpetofauna: a species update and a review on the evidence. Acta Herpetologica, 6(1):59-80.

24. Bardi A. Parasitological Survey on Captive Reptiles./E.Bardi, S. Zanzati, M. Bielli, S. Graci, E. lubian, M. T. Manfredi // International Conference on Avian, Herpetological and Exotic mammal medicine. – Venice, 2017/ - p/ 404-405.

27. Duszynski D. W. The Biology and Identification of the Coccidia (Apicomplexa) of Turtles of the World / D. W. Duszynski, J. J. Morrow // Elsevier, 2014. 210 p.

28. Megia-Palma, R. Phylogenetic relationsgips of Isospora, Lankesterella, and Caryospora species (Apicomplexa: Eimeriidae) infecting lizards./ R. Megia-, J. Martinez, I. Nasri, J. Javier et al./ Organisms Diversity & Evolution. 2016. Vol.16. Issue 1. P. 275-288.

Читайте также:

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!
При симпотмах заболевания - обратитесь к врачу.