Питательные среды для микоза

Владельцы патента RU 2407783:

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано в диагностических целях для выделения и идентификации возбудителей микозов у животных. Способ предусматривает смешивание ферментативного пептона, глюкозы, янтарной кислоты, агара и дистиллированной воды в заданном соотношении компонентов с получением питательной среды. Полученную питательную среду нагревают до кипения. После нагревания и расплавления агара среду фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Вновь доводят до кипения и охлаждают до 45-50°С. Изобретение позволяет сократить сроки приготовления питательной среды и повысить ее селективность. 2 ил., 1 табл.

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано в диагностических целях для выделения и изучения свойств возбудителей микозов у животных.

Возбудителями микозов у животных могут быть различные совершенные грибы из класса фикомицетов - плесневые грибы, дрожжеподобные грибы, а также дерматомицеты (Ветеринарная микробиология и иммунология. / Под ред. Н.А.Радчука. - М.: Агропромиздат, 1991. - С.341).

По своим физиологическим свойствам они не требовательны к питательным средам, поэтому могут расти на простых искусственных средах, широко используемые в микробиологии - мясо-пептонном бульоне и мясо-пептонном агаре. Однако интенсивность их развития из споровой до вегетативной формы составляет несколько дней, поэтому при посеве патологического материала (пораженные волосы и чешуйки кожи) раньше вырастают различные сапротрофные бактерии (т.к. период деления многих из них составляет 15-30 мин), которые являются конкурентами и антагонистами грибов. Данное обстоятельство побуждает микробиологов использовать специальные среды.

Одной из наиболее близких сред к заявляемому способу (прототип) для выделения и выращивания возбудителей микозов человека и животных является среда Сабуро (Н.И.Розанов Микробиологическая диагностика заболеваний сельскохозяйственных животных / М.: Государственное из-во сельскохозяйственной литературы, 1952. - С.106;

Достоинством известной среды является то, что за счет высокого содержания углевода в ней, а следовательно, высокой осмотичности, сдерживается рост бактериальной микрофлоры, в отличие от грибной, которая хорошо развивается.

Между тем среда Сабуро имеет недостатки, которые заключаются в следующем:

1. Приготовление среды связано со значительными временными затратами, поскольку смешанные ингредиенты сначала кипятятся до расплавления агара, затем среда фильтруется, разливается по флаконам (колбам) и автоклавируется. Весь цикл приготовления среды занимает 3-4 ч.

2. Поскольку среда не содержит специальных селективных добавок, а ее рН находится в пределах 6,5-7,5, то на ней все же через 18-24 ч развиваются бактерии, чаще всего это представители рода Bacillus, характеризующиеся малым временем генерации и образованием колоний большого размера, часто слизистых, быстро заполняющих поверхность агаровой пластинки и тем самым препятствующих росту грибов, активная вегетация которых начинается только на 3-4 сутки, а спороношение, по которому идентифицируются большинство микроскопических грибов, только на 5-7 сутки. В связи с этим известно, что для диагностики грибных болезней (Диагностика грибных болезней животных / Под ред. А.Х.Саркисова. - М.: Колос, 1971. - С.13) перед посевом пораженных волос или кожных корочек их предварительно обрабатывают в течение нескольких минут в 60° этиловом спирте, после чего промывают стерильной водой и подсушивают. Но для выделения дрожжеподобных грибов этот метод не годится, т.к. они чувствительны к спирту.

Техническим решением задачи является обеспечение сокращения времени приготовления среды, повышение ее селективных свойств и экономичности.

Поставленная задача достигается тем, что в способе приготовления питательной среды для выделения возбудителей микозов у животных, включающем смешивание ферментативного пептона, глюкозы, агара, их растворение в дистиллированной воде, нагрев смеси до кипения, согласно изобретению добавляют янтарную кислоту при следующем соотношении компонентов, мас.%:

ферментативный пептон	9-11
глюкоза	10-20
янтарная кислота	1-2
агар	14-16
дистиллированная вода	остальное,

затем полученную среду фильтруют через фильтр, вновь доводят до кипения, охлаждают и фасуют.

Новизна заявляемого предложения состоит в том, что разработана специальная питательная среда для выделения из патологического материала возбудителей микозов животных. Предварительной обработки патматериала спиртом не требуется, т.к. селективность в отношении микроскопических грибов обеспечивается за счет ввода янтарной кислоты, которая подавляет рост сопутствующей бактериальной флоры (бациллы, стафилококки, энтеробактерии, псевдомонады и др.). Бактерии на данной среде не растут в связи с тем, что рН среды находится в пределах 3,8-4,0, что не приемлемо для них, но для грибов кислая среда даже предпочтительней. Кроме того, янтарная кислота обеспечивает не только селективность за счет снижения рН среды, но и является активным стимулятором роста для грибов, поскольку относится к эрготропным веществам, участвующим в энергетическом обмене (цикле Кребса) эукариотических клеток. Приготовление среды исключает автоклавирование, т.к. кипячение обеспечивает полностью стерильность среды, что сокращает не только время получения среды, но и энергозатраты, а следовательно, является экономически более целесообразной.

Сущность изобретения поясняется фото, где на фото 1 представлен рост грибов на заявляемой питательной среде, где выросли только Aspergillus niger и Trichophyton rubrum; на фото 2 - рост грибов на среде Сабуро: помимо гриба Microsporum на среде выросли колонии бацилл (белого цвета) и микрококков (желтого цвета).

Способ приготовления питательной среды для выделения возбудителей микозов у животных осуществляется следующим образом.

Сухие ингредиенты среды растворяют в теплой воде и доводят до кипения, после расплавления агара среду фильтруют через ватно-марлевый фильтр, повторно доводят до кипения, а затем охлаждают до 45-50°С и разливают в стерильные чашки Петри. Готовая среда прозрачна, светло-желтого цвета.

На данной среде хорошо растут грибы из рода Candida, Microsporum, Trichophyton, Aspergilus, Mucor, Penicillum, Altemaria и др. Результаты сравнительного анализа заявляемого изобретения и аналога представлены в таблице, из которой видно, что заявляемая среда более выгодно отличается от аналога, т.к. на ней микроскопические грибы дают видимый рост и спорообразование в более ранние сроки, на ней полностью подавляется развитие сапротрофных бактерий, время приготовления среды в 5 раз короче, чем аналога. Кроме того, следует отметить, что в предлагаемой среде содержание глюкозы в 2 раза меньше, а следовательно, это также уменьшает стоимость среды. Данные обстоятельства позволяют считать заявляемую питательную среду как патентоспособную.

Таблица.
Качественные характеристики сред для выделения грибов
Показатель	Заявляемая среда	Среда Сабуро (аналог)
Время приготовления 1 л среды, включая розлив в чашки Петри	1 ч	5 ч
Образование видимого роста плесневых грибов и дерматомицетов	Через 24-36 ч	Через 48-72 ч
Образование конидий (спороношение)	Через 68-80 ч	Через 96-168 ч
Наличие сопутствующего роста сапротрофных бактерий	Отсутствует	Имеется
Требуется внесение в среду антибиотиков или обработка патматериала спиртом	Не требуется	Требуется

Количественное значение ввода в среду глюкозы и янтарной кислоты было подобрано экспериментально. При вводе янтарной кислоты в количестве 0,5-0,8 г на среде вырастали не только грибы, но и появлялись колонии бактерий. При увеличении ввода янтарной кислоты в количестве 2,2-2,5 г задерживался рост самих грибов. При уменьшении количества глюкозы до 5-8 г рост грибов замедлялся, а при увеличении ввода до 3-4 г - никак не сказывалось на ростовых характеристиках среды. Готовая для употребления (разлитая в чашки Петри) среда может храниться без изменения своих свойств в условиях холодильника в течение 10-15 дней, а разлитая в стерильные флаконы - до 6 месяцев.

Удовлетворительного результата добиваемся за счет оптимизации количественного ввода в среду янтарной кислоты. На полученной среде плесневые грибы и дерматомицеты дают видимый рост уже через 24-36 ч инкубации при комнатной температуре, а дрожжеподобные грибы через 12-20 ч при температуре 37°С. Окончательную оценку выросших колоний и идентификацию плесневых грибов и дерматомицетов можно осуществлять через 68-80 ч.

Способ приготовления питательной среды для выделения возбудителей микозов у животных, включающий смешивание ферментативного пептона, глюкозы, агара растворение их в дистиллированной воде, нагрев смеси до кипения, отличающийся тем, что добавляют янтарную кислоту при следующем соотношении компонентов, мас.%:

Изобретение относится к биотехнологии. Питательная среда для выращивания мицелиальных грибов-дерматомицетов из клинического материала содержит глюкозу, агар бактериологический, пептон мясной, гидролизат казеина, дрожжевой экстракт, хлористый натрий, углекислый натрий, L-цистин, тиогликолевую кислоту и дистиллированную воду в заданном соотношении компонентов. Изобретение позволяет сократить сроки выращивания мицелиальных грибов-дерматомицетов из клинического материала. 1 табл., 2 ил., 4 пр.

Рисунки к патенту РФ 2527074

Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано для выделения из клинического материала наиболее значимых возбудителей - патогенных грибов-дерматомицетов, возбудителей микозов человека и животных.

Суть изобретения заключается в составлении эффективной плотной полусинтетической питательной среды для получения первичных культур грибов-дерматомицетов из клинического материала с учетом их потребностей в элементах питания и физиологических особенностей.

Однако на сегодняшний день процент положительных результатов культурального исследования дерматомицетов на среде Сабуро при положительном ответе в прямой микроскопии и несомненной клинической картине остается невысоким. По сообщениям А.Ю. Сергеева, выделить культуру возбудителя в 1994-1996 гг. удавалось в 36% случаев [3], что не может считаться оптимальным для лабораторной диагностики. Существуют зарубежные фирменные среды для трихофитонов (Mycosel, Mycobiotic) с аналогичными показателями по высеваемости грибов из первичного клинического материала. Это, вероятно, связано с рядом особенностей данного рода грибов. Во-первых, сравнительно медленным ростом - в отличие от большинства мицелиалькых грибов, рост трихофитонов начинается на 5-7 день после посева (плесневых грибов на 2 день), во-вторых, более высокими пищевыми потребностями трихофитонов. Большинство видов дерматомицетов для начала роста требует наличия в питательной среде полного набора витаминов и белков животного происхождения.

Целью заявленного изобретения является разработать плотную полусинтетическую питательную среду для получения первичных культур грибов-дерматомицетов из клинического материала, удовлетворяющую установленным критериям эффективности, что является необходимым условием надежных результатов любого клинического микробиологического исследования, и обеспечивающую получение точных и объективных результатов.

Технический результат предлагаемого изобретения заключается в получении плотной полусинтетической питательной среды для получения первичных культур грибов-дерматомицетов из клинического материала.

Осуществление изобретения достигается приготовлением питательной среды, содержащей на 1 литр дистиллированной воды: глюкоза - 30,0 г, агар бактериологический - 20,0 г, пептон мясной - 5,0 г, гидролизат казеина - 2,5 г, дрожжевой экстракт - 0,8 г, хлористый натрий - 0,4 г, углекислый натрий - 0,16 г, L-цистин - 0,12 г, кислота тиогликолевая - 0,08 г, pH среды - 6,5.

Компоненты последовательно растворяют в воде, вносят агар и подогревают до расплавления агара. При необходимости среду фильтруют. Затем добавляют глюкозу, тщательно перемешивают и устанавливают pH 6,5. После этого разливают в стерильную посуду и стерилизуют 60 мин при 120°С.

Пример 1. Способ получения композиции. В 1 л дистиллированной воды растворяли навески: пептон мясной - 5,0 г, гидролизат казеина - 2,5 г, дрожжевой экстракт - 0,8 г, хлористый натрий - 0,4 г, углекислый натрий - 0,16 г, L-цистин - 0,12 г, кислота тиогликолевая - 0,08 г. Перемешивали полученный раствор. К растворенным компонентам добавляли агар бактериологический - 20,0 г и подогревали до расплавления агара. Фильтровали при необходимости (в случае присутствия нерастворимых частиц). Затем добавляли глюкозу - 30,0 г и тщательно перемешивали. Устанавливали pH 6,5.

Готовую среду разливали в стерильную посуду и стерилизовали 60 мин при 120°С.

Свежеприготовленную среду разливали в чашки Петри в количестве не менее 20 мл и в тот же день производили посев материала.

Отличие предлагаемого состава среды заключается в том, что с целью повышения эффективности высева дерматомицетов в среду добавляются L-цистин и углекислый натрий для нейтрализации свободных радикалов и снижения окислительно-восстановительного потенциала среды и тиогликолевую кислоту, способствующую высвобождению элементов гриба из кератиновых масс за счет разрушения дисульфидных связей в кератине патогенного материала (кожные чешуйки, ногти, волосы), что обеспечивает контакт элементов гриба с питательными веществами среды и более быстрое начало роста дерматомицетов.

Для лучшего понимания изобретения приводим примеры эффективности предлагаемой среды.

Исследование эффективности предлагаемой среды, в отличие от среды Сабуро, проводили методом сравнительного анализа роста грибов-дерматомицетов как в модельных опытах, так и на клиническом материале. В модельных опытах учитывали скорость и характер роста колонии и проявления морфологических особенностей грибов дерматомицетов. Исследование проводилось в течение 21 суток с 3 видами грибов (Trichophyton rubrum, Trichophyton mentagrophytes, Epidermophyton floccosum). Данные виды грибов являются наиболее часто выделяемыми от больных возбудителями микозов. Штаммы были получены из коллекции типовых и патогенных культур микологической лаборатории Казанского научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора. В работе использовались как музейные штаммы, так и выделенные от больных с диагнозом микоз.

Пример 2. Питательная среда, способствующая ускорению роста грибов дерматомицетов, позволяет добиться большей эффективности выявления дерматомицетов, поскольку скорость роста дерматомицетов - важный фактор в характеристике эффективности среды в связи с частой контаминацией клинического материала быстрорастущими плесневыми грибами. Известно, что грибы дерматомицеты растут в 2, а иногда и в 4 раза медленнее плесневых грибов [4]. Для проявления типичных признаков дерматомицетов - ветвления, спороношения, пигментации в настоящее время рекомендуется выдерживать время инкубации посевов до 1 месяца [6].

Для исследования влияния состава среды на линейный рост колоний музейные тест-штаммы грибов Trichophyton rubrum и Epidermophyton floccosum высевали в центр плотной питательной среды немногочисленным инокулюмом одной плотности. Диаметр колонии измеряли в двух взаимно перпендикулярных направлениях в двух-трех повторностях через каждые 24 часа [5]. Посев тест-штаммов на предлагаемую нами среду показал увеличение скорости роста в 1,5 -2 раза, по сравнению с посевами на среду Сабуро (Рисунок 1, 2). Однако учитывая, что данные виды грибов на поверхности некоторых лимитирующих рост плотных сред образуют широко распространенную, но тонкую пленчатую колонию, а при росте на плотной оптимальной среде колония гриба может достигать такого же диаметра, но быть высокой, пушистой, иметь обильно развитый воздушный мицелий, то помимо скорости роста колоний определяли также плотность гиф колонии [5]. Плотность гиф определяли их общей длиной, представляющей суммарную длину главной гифы и ее ответвлений всех порядков, в одном поле зрения под микроскопом при увеличении 20х20. Плотность определяли в разных участках растущей части колонии. На шестой день длина гифы (Н) Trichophyton rubrum на среде Сабуро и на предлагаемой среде составила 648 и 817 мкм соответственно. Длина гифы Epidermophyton floccosum составила 547 мкм на среде Сабуро и 651 мкм на предлагаемой среде.

Пример 3. Получение питательной среды, на которой грибок давал бы типичную колонию и более дифференцированные органы плодоношения, является важной задачей для идентификации дерматомицетов. Анализ дифференциально-диагностических особенностей штаммов грибов Trichophyton rubrum, Trichophyton mentagrophytes, выращенных на предлагаемой среде и среде сравнения Сабуро, показал эффективность предлагаемой среды. В десяти случаях из десяти штамм Trichophyton rubrum выделял в среду яркий пигмент насыщенно красного цвета, что является одним из основных диагностических признаков данного вида (таблица 1). Тогда как штаммы, выращенные на среде Сабуро, выделяли в среду пигмент бледно-розового цвета, а в 3-х случаях пигмент отсутствовал.

Микроскопическая картина у разных штаммов Trichophyton mentagrophytes, выращенных на среде Сабуро, отличалась от выращенных на предлагаемой среде. Семь из десяти штаммов не имели спороносные гифы, микроконидии отсутствовали.

Пример 4. Оценка эффективности предлагаемой среды на клиническом материале, полученном от больных с ограниченными дерматомикозами-онихомикозами. Критерии включения в исследование: наличие у больных онихомикоза, подтвержденного положительными результатами микологического обследования (микроскопией ногтевых пластин в 20% КОН или люминисцентная микроскопия с калькофлюором белым).

Крупные кусочки ногтей разрезались на несколько частей в стерильных условиях. Затем равное количество материала одновременно засевали на исследуемые среды. На седьмые сутки после посева из 25 образцов, посеянных на среду Сабуро, рост дерматомицетов был выявлен в 44% (11 образцов). Культуральный посев на предлагаемую среду выявил грибы дерматомицеты в 18 образцах, что составило 72%. При этом контаминация плесневыми грибами не препятствовала идентификации дерматомицетов.

Таким образом, предлагаемая нами питательная среда позволяет выполнить поставленную задачу - получить ускоренный рост дерматомицетов, обладающих характерными признаками (пигментация, спорообразование), позволяющими проводить их выявление и идентификацию в первичной культуре.

2. Семенов С.М. Лабораторные среды для актиномицетов и грибов. Справочник. - М.: Агропромиздат, 1990. - 240 с.

3. Сергеев А.Ю., Сергеев Ю.В. Грибковые инфекции. Руководство для врачей. 2 изд. - М.: Изд-во БИНОМ, 2008. - 480 с.

4. Сергеев А.Ю. Грибковые заболевания ногтей. 2 изд. - М.: Национальная академия микологии, 2007. - 164 с.

5. Методы экспериментальной микологии. Справочник (Дудка И.А., Васер С.П., Элланская И.А. и др.). - Киев.: Наукова думка, 1982. - 550 с.

6. Медицинская микология: руководство / В.А. Андреев, А.В. Зачиняева, А.В. Москалев, В.Б. Сбойчаков; под ред. В.Б. Сбойчакова. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 208 с.

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ

Питательная среда для выращивания мицелиальных грибов-дерматомицетов из клинического материала, содержащая на один литр дистиллированной воды: глюкоза - 30,0 г, агар бактериологический - 20,0 г, пептон мясной - 5,0 г, гидролизат казеина - 2,5 г, дрожжевой экстракт - 0,8 г, хлористый натрий - 0,4 г, углекислый натрий - 0,16 г, L-цистин - 0,12 г, кислота тиогликолевая - 0,08 г, pH среды - 6,5.

Исследование, в ходе которого с помощью специальной питательной среды выявляют возбудителей грибковых инфекций (Candida spp., Aspergillus spp., Cryptococcus spp.).

В ходе исследования проводится идентификация видов грибка и подбор антимикотических препаратов для дальнейшего лечения.

Бакпосев на грибковые инфекции (Candidaspp.,Aspergillusspp., Cryptococcusspp.)
Бактериологический (культуральный) метод

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Мазок из зева (ротоглотки), мазок с конъюнктивы, мазок из носа, мазок из носоглотки, мазок из носовых пазух, мазок урогенитальный, мазок урогенитальный (с секретом предстательной железы), мазок из уретры, мазок из цервикального канала, мазок с внутренней поверхности шейки матки (из цервикального канала), отделяемое абсцесса полости рта, отделяемое раны, отделяемое уха.

Как правильно подготовиться к исследованию?

За 3-4 часа до взятия мазков из ротоглотки (зева) не употреблять пищу, не пить, не чистить зубы, не полоскать рот/горло, не жевать жевательную резинку, не курить. За 3-4 часа до взятия мазков из носа не закапывать капли/спреи и не промывать нос. Взятие мазков оптимально выполнять утром, сразу после ночного сна.
Женщинам исследование (процедуру взятия урогенитального мазка) рекомендуется производить до менструации или через 2-3 дня после её окончания.
Мужчинам - не мочиться в течение 3 часов до взятия урогенитального мазка.
Не проводить туалет полости рта в день взятия биоматериала на исследование.

Общая информация об исследовании

Грибковые инфекции (микозы) – обширная группа инфекционных заболеваний человека, вызываемых дрожжевыми, плесневыми или диморфными грибами. Микозы можно разделить на поверхностные, при которых поражение ограничивается кожей и слизистыми оболочками (например, кандидозный стоматит), и глубокие (инвазивные), при которых могут поражаться практически любые внутренние органы, например легкие, головной мозг, клапаны сердца, почки, суставы. Наибольшую трудность представляет диагностика инвазивных микозов.

Наиболее часто возбудителями инвазивных микозов являются грибы Candida albicans (инвазивный кандидоз), Cryptococcus neoformans (криптококкоз) и Aspergillus fumigatus (инвазивный аспергиллез). Эти разные заболевания имеют много общего. Во-первых, риск развития любого из трех указанных микозов повышен у людей с иммуносупрессией, возникающей при ВИЧ-инфекции, после трансплантации органов и тканей или на фоне онкогематологических заболеваний. Во-вторых, эти микозы могут протекать практически одинаково и сопровождаться неспецифическими признаками локального и системного инфекционного процесса (лихорадка, слабость, кашель, боль в грудной клетке, головная боль). Поэтому провести дифференциальную диагностику этих инвазивных микозов между собой на основании только клинических симптомов невозможно. Основную роль в диагностике инвазивных микозов играют лабораторные методы.

Как правило, диагностика инвазивных микозов носит комплексный характер, однако посев (бактериологический, или культуральный, метод) на грибы по-прежнему остается "золотым стандартом" диагностики. Бакпосев выступает в роли подтверждающего теста, в то время как предварительная диагностика инвазивных микозов основывается на менее точных, но более "быстрых" лабораторных методах, например анализе на криптококковый антиген при подозрении на криптококкоз, обработке раствором гидроксида калия KOH при подозрении на кандидоз или методе ПЦР при подозрении на аспергиллез.

В ходе бактериологического исследования анализируемый биоматериал вносят в специальную питательную среду. Скорость роста колоний разных видов грибов несколько отличается. Так, рост Aspergillus spp. будет заметен уже через 48 часов, Cryptococcus spp. – через 48-72 часа, а грибам Candida albicans потребуется до 1 недели и более. Следует отметить, что чувствительность бактериологического метода зависит от характера биоматериала, используемого для исследования. Так, например, выделить культуру гриба из крови, даже в случае диссеминированной инфекции, удается нечасто (особенно при инфекции Aspergillus spp. или Candida spp.). Другой фактор, влияющий на точность результата теста, – это использование антимикотических препаратов до взятия биоматериала. Применение азолов, амфотерицина и эхинокандинов до взятия биоматериала на исследование может приводить к ложноотрицательному результату. Учитывая эти особенности, важно подчеркнуть, что отрицательный результат посева не всегда позволяет полностью исключить инвазивный микоз.

Характер биоматериала также следует учитывать и при интерпретации положительного результата. Нестерильные среды (мокрота, моча, смывы с бронхов) могут в норме содержать грибы, поэтому положительный результат исследования нестерильных сред не позволяет говорить о наличии инвазивного микоза. Так, Candida spp. и Aspergillus spp. являются условно-патогенной флорой дыхательных путей и могут быть выделены в культуре при посеве мокроты здоровых людей. Cryptococcus spp. не относятся к нормальной микрофлоре человека, но также могут присутствовать на слизистых в течение короткого периода времени (транзиторное носительство) без каких-либо серьезных последствий для здорового человека. С другой стороны, обнаружение грибов в стерильных средах (кровь, образец ткани), особенно у пациента с иммуносупрессией, – это всегда патологический признак, который указывает на наличие инвазивного микоза.

Бактериологический метод целесообразно дополнить другими лабораторными исследованиями, в первую очередь гистологическим исследованием.

Для чего используется исследование?

Для диагностики инвазивных микозов.

Когда назначается исследование?

При наличии у пациента факторов риска инвазивной грибковой инфекции: онкогематологических заболеваний, лекарственной иммуносупрессии, ВИЧ-инфекции;
при наличии клинических или рентгенологических признаков инвазивных грибковых инфекций.

Что означают результаты?

Референсные значения: отрицательно.

стерильный биоматериал (кровь, образец ткани): инвазивный микоз (кандидоз/криптококкоз/аспергиллез);
нестерильный биоматериал (мокрота, мазки, отделяемое): инвазивный микоз или "здоровое носительство".

норма;
ложноотрицательный результат.

Что может влиять на результат?

Применение антимикотических препаратов (азолы, амфотерицин, эхинокандины) до взятия биоматериала на исследование (может приводить к ложноотрицательному результату);
характер биоматериала для исследования (стерильный или нестерильный).

Результат исследования следует интерпретировать с учетом факторов риска, клинических и рентгенологических признаков инвазивного микоза.
Отрицательный результат исследования не позволяет исключить инвазивный микоз.

Посев на Aspergillus spp. без определения чувствительности к антимикотическим препаратам
Посев Candida spp./дрожжеподобные грибы с подбором антимикотических препаратов
Candida albicans, ДНК [реал-тайм ПЦР]
Гистологическое исследование биоптатов органов и тканей (за исключением печени, почек, предстательной железы, лимфатических узлов)

Кто назначает исследование?

Инфекционист, пульмонолог, аллерголог, врач общей практики.

Литература

Ellepola AN, Morrison CJ. Laboratory diagnosis of invasive candidiasis. J Microbiol. 2005 Feb;43 Spec No:65-84. Review.
GOLDMAN L, AUSIELLO D. Cecil MEDICINE/L. Goldman, D. Ausiello; 23 ed. – Saunder Elsevier, 2007.
Fauci et al. Harrison's PRINCIPLES OF INTERNAL MEDICINE/A. Fauci, D. Kasper, D. Longo, E. Braunwald, S. Hauser, J. L. Jameson, J. Loscalzo; 17 ed. – The McGraw-Hill Companies, 2008.

В современном мире грибковые заболевания кожи и ногтей занимают особую нишу и по распространенности практически не уступают сердечно-сосудистой патологии. Особое внимание уделяется глубоким микозам (то есть грибковым поражениям внутренних органов), которые в результате онкопатологии и ВИЧ "расцвели" повсеместно и перестали считаться редкими заболеваниями. Однако самым неприятным для человека являются микозы кожи, волос, ногтей. Около 90% людей страдают тем или иным грибковым заболеванием и многие совершенно ошибочно считают их неизлечимыми. Определить относится ли заболевание кожи к грибковой патологии и излечить его может только врач.

Зачастую пациенты считают красноту в складках (под молочными железами, в паховых складках) просто "раздражением" и начинают применять гормональные кремы и мази. Это может слегка улучшить состояние, но затем приводит к значительному распространению и ухудшению процесса вплоть до мокнутия (выделения гноя и крови).

Сахарный диабет, ожирение и другие эндокринологические заболевания, а также нарушение нормальной микрофлоры кишечника (дисбиоз) упорно потдерживают развитие грибкового заболевания, препятствуют быстрому излечению даже при адекватной терепии. Поэтому так важно обследоваться у специалистов смежных специальностей - терапевта, эндокринолога, гастроэнтеролога, гинеколога, андролога. Кроме того необходимо сдать анализы на ВИЧ, сифилис, гепатиты В и С.

Важно осознать, что со временем любой микоз существенно ослабляет имунную систему, так как ей непрерывно приходиться "сражаться" с сильным и хитрым соперником. Вместе с этим происходит аллергизация организма: пациент начинает "неожиданно" отмечать у себя реакцию на пищу и химические вещества, высыпания, зуд.

Заболевание кожи и волосистой части головы, вызываемое М. canis и некоторыми другими видами грибков называется микроспорией. Именно это подразумевается под страшноватым словом "лишай". Заражение людей микроспорией, вызываемой М. canis, происходит обычно от кошек, реже собак, поэтому особое значение имеет микроспория у бездомных, бродячих животных. Кроме того, установлен факт носительства М.canis здоровыми кошками. Люди заражаются при контакте с больными животными, а также через вещи и предметы, загрязненные их шерстью. Болеют преимущественно дети, но нередко и взрослые. Подъем заболеваемости наблюдается в осенний сезон. Микроспория распространена во многих странах. Возбудители микроспории на предметах обихода, одежды, игрушках и др. сохраняют заразительность свыше года, во внешней среде (почва, песочницы) — более месяца. Инкубационный период при микроспории составляет 5-7 дней. Данное заболевание заболевание опасно и требует немедленного обращения обращения к врачу.

Онихомикоз - грибковое поражение ногтей стоп (кистей). Часто встречается у пожилых людей, больных сахарным диабетом, онкологическими заболеваниями. Онихомикоз является не только косметической проблемой, он представляет собой серьезную угрозу здоровью человека. Исследования показывают, что грибы, вызывающие онихомикоз, в процессе жизнедеятельности могут синтезировать токсические продукты. Полным излечением онихомикоза побеждается даже бронхиальная астма!

Если у вас наблюдаются подобные симптомы, советуем записаться на прием к врачу. Своевременная консультация предупредит негативные последствия для вашего здоровья. Телефон для записи: +7 (495) 292-39-72

Группами риска при грибковых заболеваниях ног являются военнослужащие, спортсмены, банщики, лица, регулярно пользующиеся банями и саунами. Передача инфекции происходит через общую обувь, белье, а также в душевых, бассейнах, спортзалах.

Инфицирование ногтей может произойти вследствие травмы ногтя, обусловленной слишком тесной обувью, а также вследствие деформации пальцев, плоскостопия, узких межпальцевых промежутков. Влажная и теплая среда - еще один фактор, благоприятствующий развитию онихомикоза стоп и ногтей. Субтропические условия. создаваемые обувью, которая затрудняет воздухообмен, размягчает кожу и ногти. тем самым подготавливая почву для заселения грибками.

В лечебном учреждении Вам предложат сделать соскоб с патологического очага, анализ кусочка ногтя, а также посев грибка на питательные среды для уточнения вида и чувствительности к противогрибковым препаратам.

Клинически поражение ногтей проявляются изменением толщины, окраски (желтый, зеленоватый, белый) и рельефа ногтей. Если вы заметили хоть малейшие признаки грибковой инфекции, вам следует обратиться к врачу-дерматологу. Самолечение может привести к серьезным последствиям.

Узнать подробности и записаться на консультацию специалиста вы можете по телефону +7 (495) 292-39-72

Читайте также:

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!
При симпотмах заболевания - обратитесь к врачу.

Классы МПК:	C12N1/14 микробные грибки; питательные среды для них
Автор(ы):	Лисовская Светлана Анатольевна (RU) , Халдеева Елена Владимировна (RU) , Глушко Надежда Ивановна (RU) , Паршаков Вениамин Романович (RU) , Фассахов Рустэм Салахович (RU)
Патентообладатель(и):	Федеральное бюджетное учреждение науки "Казанский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии" Роспотребнадзора (RU)
Приоритеты: