Тест-системы для определения стафилококков
TPL_BEEZ2_NAV_VIEW_SEARCH
Технология GenomEra
Компания:
Abacus Diagnostica Oy – финская компания, специализирующаяся на производстве систем для быстрой молекулярной диагностики разработавшая собственную технологию GenomEra .
The easy-to-use and cost-effective solution for routine DNA-testing !
Технология:
Технология GenomEra - мощный инструмент для рутинной молекулярной диагностики, где ценится время анализа, точность результатов и простота методики проведения исследования. Использование данной технологии не требует специально оборудованного помещения, специализации персонала или опыта работы в области молекулярной диагностики.
Технология GenomEra совмещает принцип ИФА-анализа, основанного на флюоресценции с разрешением по времени и ДНК-амплификацию с концепцией простых в использовании пластиковых тест-чипов с нанесенными реагентами.
Принцип анализа гарантирует точность и надежность, даже при использовании сложных неоднородных образцов исследуемого материала. Пробоподготовка крайне проста и не требует предварительного выделения ДНК.
Тестовые чипы с внесенным исследуемым материалом помещаются в анализатор, и запускается исследование. Прежде чем начать процесс ПЦР амплификации, анализатор герметично запечатывает тестовые чипы для исключения контаминации. Оборудование имеет всторенную ПЦР систему, термоциклер с камерами определенного температурного режима, в которые автоматически перемещается тест-чип. После этапов ПЦР, проходит ИФА-анализ по технологии TRF ( time - resolved fluorescence ). Все стадии анализа автоматизированы!
Система:
Система GENOMERA CDX CE IVD
Система GenomEra CDX предлагает простое в использовании и экономически выгодное решение для рутинной молекулярной диагностики с оптимальной производительностью, надежностью и высоким качеством результатов.
В системе GENOMERA CDX применяется :
- Автоматический встроенный ПЦР анализатор
- Специально разработанные тест-чипы с нанесенными реагентами
- Результаты исследований предоставляются в легкой для интерпретации форме
Кат. № | Наименование | Примечание | Кол-во опред. |
10020284 | СЕНСИЛАТЕСТ УРИН | Для определения антимикробной чувствительности бактерий, изолированных при инфекциях мочевыводящих путей, преимущественно представителей семейства Enterobacteriaceae | 40 |
10020282 | СЕНСИЛАТЕСТ Г+ | Для определения чувствительности к антибиотикам грамположительных бактерий родов Enterococcus и Streptococcus (за исключением зеленящих стрептококков и Streptococcus pneumoniae) | 40 |
10020279 | СЕНСИЛАТЕСТ Г-I | Для определения антимикробной чувствительности бактерий семейства Enterobacteriaceae | 60 |
10020280 | СЕНСИЛАТЕСТ Г-II | Для определения антимикробной чувствительности бактерий семейства Enterobacteriaceae при лечении тяжёлых инфекций, особенно у госпитализированных пациентов, а также при выделении полирезистентного штамма | 60 |
10020285 | СЕНСИЛАТЕСТ НЕФЕРМ | Для определения антимикробной чувствительности неферментирующих бактерий | 60 |
10020283 | СЕНСИЛАТЕСТ СТАФИ | Для определения антимикробной чувствительности стафилококков | 60 |
10020286 | Суспенз. среда для СЕНСИЛАТЕСТов | Новинка с 01.11.12! Для приготовления суспензии исслед.штамма (готовая стерильная универсальная среда к наборам Сенси-Ла-Тест, разлитая по пробиркам по 4,4 мл) | 20 |
Анализ основан на определении бактериального роста при пограничных (break-point) концентрациях антибиотика в соответствии со стандартами Европейского комитета по определению чувствительности к антибиотикам (European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing – EUCAST) в редакции от 05.01.2011.
MIKROLATEST® SensiLaTest MIC - тест-системы для определения антибиотикочувствительности микроорганизмов с принципом работы, основанном на методе серийных двойных микроразведений с определением минимальной ингибирующей концентрации (MIC).
Наборы СенсиЛаТест® представляют собой микротитровальные пластинки, лунки которых содержат антибиотики в сухом виде, при добавлении суспензии происходит их растворение. Наборы содержат по 12 антибиотиков на панели в 8 концентрациях. Наборы могут быть считаны как визуально, так и автоматически.
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ Г-I
Набор предназначен для определения чувствительности бактериий сем. Enterobacteriaceae к антибактериальным препаратам на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т.е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост.
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ Г-II
Набор предназначен для определения чувствительности бактериий сем. Enterobacteriaceae к антибактериальным препаратам при лечении тяжёлых инфекций, особенно у госпитализированных пациентов, на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т.е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост.
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ Г+
Набор предназначен для определения антимикробной чувствительности энтерококков и стрептококков (гр. A, B, C, G, S. pneumoniae) на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т. е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост. Упаковка рассчитана на определение чувствительности 10 бактериальных культур (10 планшетов).
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ УРИНЕ
Набор предназначен для определения антимикробной чувствительности бактерий, изолированных при инфекциях мочевыводящих путей, преимущественно представителей семейства Enterobacteriaceae,. на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т.е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост.
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ НЕФЕРM
Набор предназначен для определения антимикробной чувствительности неферментирующих бактерий на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т.е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост.
СЕНСИ-ЛА-ТЕСТ СТАФИ
Набор предназначен для определения антимикробной чувствительности стафилококков на основании определения МПК (минимальной подавляющей концентрации), т.е. наименьшей концентрации, которая подавляет бактериальный рост.
Кат. № | Наименование | Примечание | Кол-во опред. |
MLT00048 | СЕНСИЛАТЕСТ УРИН | Для определения антимикробной чувствительности бактерий, изолированных при инфекциях мочевыводящих путей, преимущественно представителей семейства Enterobacteriaceae | 10 |
MLT00043 | СЕНСИЛАТЕСТ Г+ | Для определения чувствительности к антибиотикам грамположительных бактерий родов Enterococcus и Streptococcus (за исключением зеленящих стрептококков и Streptococcus pneumoniae) | 10 |
MLT00044 | СЕНСИЛАТЕСТ Г-I | Для определения антимикробной чувствительности бактерий семейства Enterobacteriaceae | 10 |
MLT00045 | СЕНСИЛАТЕСТ Г-II | Для определения антимикробной чувствительности бактерий семейства Enterobacteriaceae при лечении тяжёлых инфекций, особенно у госпитализированных пациентов, а также при выделении полирезистентного штамма | 10 |
MLT00046 | СЕНСИЛАТЕСТ НЕФЕРМ | Для определения антимикробной чувствительности неферментирующих бактерий | 10 |
MLT00047 | СЕНСИЛАТЕСТ СТАФИ | Для определения антимикробной чувствительности стафилококков | 10 |
MLT00070 | Суспенз. среда для СЕНСИЛАТЕСТов | 20 | |
MLT00071 | Суспенз. среда для СЕНСИЛАТЕСТов (для стрептококков, кат. MLT00043) | 20 |
Анализ основан на определении бактериального роста при пограничных (break-point) концентрациях антибиотика в соответствии со стандартами Европейского комитета по определению чувствительности к антибиотикам (European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing – EUCAST) в редакции от 05.01.2011.
Аннотация научной статьи по прочим медицинским наукам, автор научной работы — Д. Г. Дерябин, Н. П. Фот
Похожие темы научных работ по прочим медицинским наукам , автор научной работы — Д. Г. Дерябин, Н. П. Фот
Д.Г. Дерябин, Н.П. Фот
В этой связи в качестве возможного объекта исследования наше внимание привлекла диагностическая тест-система для идентификации стафилококков, выпускаемая фирмой Lachema (Чехия)
Анализ причин неверной идентификации позволил свести их к двум основным моментам. Ошибки первого рода были связаны с тем, что несмотря на заявленные диагностические возможности тест-системы как достаточные для идентификации определенного спектра видов стафилококков, полученный результат все же оказывался неверным (26,43±4,72 % от общего количества диагностических заключений). Ошибки второго рода были связаны с тем, что диагностические возможности данной тест-системы принципиально не позволяли получить верное заключение, так как она изначально предусматривала возможность идентификации только 13 из 36 известных видов стафилокок-ков(10,34±3,2% от общего количества диагностических заключений). Последняя причина являлась ведущей - на ее долю приходилось более половины всех ошибочных результатов идентификации и 28,74±4,85% от общего количества полученных диагностических заключений.
Данные существенные недостатки, а также произошедшие в 80-90-х годах XX века принципи-
100% -| |-|-|-| ПП ГП П ПППГП
10% - _ 0% illlliiiiL-lil-liillliiiUliiiMIIMII
Рисунок. Эффективность идентификации отдельных видов стафилококков с использованием тест-систем
темная часть - неправильная идентификация. По оси абсцисс - идентифицируемые виды стафилококков:
1 - S. аг1ейае; 2 - S. aureus subsp. anaerobius; 3 - S. aureus subsp.aureus; 4 - S. аuricu1aris; 5 - S. capitis subsp. capitis; 6 -S. capitis subsp. ureolyticus; 7 - S. caprae; 8 - S. carnosus; 9 - S. caseolyticus; 10 - S. chromogenes; l1 - S. cohnii subsp. cohnii; 13 - S. delphini; 14 - S. epidermis; 15 - S. equorum; 16 - S. felis; 17 - S. gallinarum; 18 - S. haemolytis; 19 - S. hominis; 20 - S. hyicus; 21 - S. intermedius; 22 - S. klosii; 23 - S. lentis; 24 - S.
lugdunensis; 25 - S. muscae; 26 - S. pasteuri; 27 - S. piscifermentans; 28 - S. saccharolyticus; 29 - S. saprophyticus;
30 - S. schleiferi subsp. coagulans; 31 - S. schleiferi subsp. schleiferi; 32 - S. sciuri; 33 - S. simulans; 34 - S. vituluns; 35 - S. warneri; 36 - S. xylosus
альные изменения в номенклатуре и таксономии стафилококков [5], подтолкнули разработчиков к существенной модификации тест-системы, поначалу выразившейся в рекомендациях по использованию дополнительных идентификационных тестов, а в итоге приведшей к ее полному пересмотру. При этом из тест-системы был удален тест на образование кислоты из глицерина, используемый не столько для межвидовой дифференциации стафилококков, сколько для их разделения с морфологически сходными микроорганизмами - микрококками. Кроме того, из инструкции к набору были выведены рекомендации по определению каталазы, также малоинформативной при межвидовой дифференциации стафилококков и используемой для их различения с каталазоотрицательными грамположитель-
Полученные данные позволили выразить информативность каждого из конвенциальных таксо-номически значимых признаков стафилококков в числовой форме и расположить их по мере убывания от признака образования кислоты в аэробных условиях из маннозы (информативность 1=30,08) до способности к росту в аэробных условиях (1=0,001). При этом в изученной группе свойств были определены 19 признаков с максимальной информативностью (I>20), каковые в наибольшей степени пригодны для целей межвидовой идентификации стафилококков и являются потенциальными кандидатами для включения в состав соответствующих идентификационных тест-систем.
Таблица. Информативность признаков, используемых для межвидовой дифференциации стафилококков
Дифференцирующие признаки Информативность STAPHYtest-8 STAPHYtest-16
Проблема распространения антибиотикоустойчивых бактерий к XXI веку стала весьма существенной. Сегодня определение устойчивости патогенов к антибиотикам стало частью рутинных лабораторных исследований, необходимых для принятия решения о тактике лечения пациента. Однако проведение такого исследования остаётся достаточно длительным, поскольку требует оценки роста бактерий через 16 часов после посева, когда накопление бактериальной массы можно оценить визуально.
Используя системы детекции роста бактерий с большей чувствительность, чем человеческий глаз, можно ускорить процесс определения антибиотикоустойчивости бактерий. Современные методы, такие как масс-спектрометрия MALDI-TOF и ПЦР, позволяют ускорить этот процесс, однако они также требуют времени и дорогостоящего оборудования. Однако высокочувствительные устройства не всегда стоят дорого, системой, способной выявить рост бактерий в культуре, может быть и хроматографическая полоска. В Китае, например, предложили вариант полоски для определения антибиотикоустойчивости стафилококка, с помощью которого врач сможет получить сведения, необходимые для лечения пациента, уже через 2 часа.
Использование тест-полосок для быстрого определения присутствия тех или иных бактерий широко используется в диагностике инфекционных заболеваний. Их преимуществом является высокая скорость исследования и его простота, благодаря чему от проводящего исследования специалиста не требуется специальных навыков.
Возможность определять невидимые глазу клетки стафилококка с помощью тест-полосок основывается на двух биохимических взаимодействиях. Первое — способность золотистых стафилококков связываться с любыми антителами класса IgG, вне зависимости от их специфичности. Из-за этой способности стафилококки можно сконцентрировать на небольшом участке на полоске, состоящей из нитроцеллюлозного фильтра, если нанести на этот участок какие-нибудь подходящие антитела, например, IgG свиньи. Использование таких антител значительно снижает стоимость теста и сложность его изготовления, поскольку не требуется получения и очистки специфических антител.
Однако даже сконцентрированные таким способом на нитроцеллюлозе стафилококки не заметны невооружённым глазом, так что нужна ещё одна реакция, которая позволит их увидеть. Тейкопланин — антибиотик, связывающийся на клеточной стенке грамположительных бактерий. Это останавливает их рост, на чём основан терапевтический эффект данного соединения. Кроме того, тейкопланин можно использовать для визуализации бактерий, поскольку это недорогое и стабильное вещество. Если соединить его с флуоресцентной меткой, полученный комплекс будет специфически взаимодействовать с клеточными стенками грамположительных бактерий. Это свойство тейкопланина было использовано для создания системы.
Итак, полученные тест-полоски состояли из узких нитроцеллюлозных мембран, на одном из концов которых закрепляли абсорбирующий материал, чтобы исследуемый жидкий образец лучше поднимался по мембране. Антитела наносили на мембрану в виде тонкой линии. Всю конструкцию вставляли в пластиковую кассету для удобства использования.
Исследование штамма на предмет его устойчивости к антибиотику, как и в случае классических методик, начинается с его посева на среды с различными концентрациями антибиотика. Благодаря высокой чувствительности методики длительность инкубирования стафилококка в присутствии антибиотика сокращается с 16 часов до 90 минут. Перед началом исследования с помощью тест-полосок культуру стафилококка смешивали с раствором тейкопланина, меченного флуоресцентным красителем, чтобы окрасить клетки бактерий. При нанесении на мембрану смесь распространялась по ней, при этом в области, где были антитела, скапливались неспецифически связывающиеся с ними стафилококки. Увидеть яркую светящуюся полосу можно было уже через 5 минут.
Сравнение метода с золотым стандартом — оценкой антибиотикочувствительности бактерий методом серийных разведений, показало, что результаты, полученные с помощью двух методик, являются сопоставимыми. Это значит, что предложенный метод можно использовать для диагностики, особенно когда важно как можно раньше определить тактику лечения.
Shi Y, Yang H, He Y, Fu Z. Antibiotic-affinity chromatographic test strip for quantitative analysis and antibiotic resistance testing of Staphylococcus aureus / Talanta. — 2019. — V. 205.
Читайте также:
- Прививка от холеры где сделать
- Как жить всю жизнь с трихомонадами
- Энтерококк и стафилококк в мазке при беременности
- Как лечить стафилококк 12 лучших препаратов для лечения
- Может ли трихомонада быть только в прямой кишке
Copyright © Иммунитет и инфекции