Ифа на вич у кошек количественный анализ

Иммунодефицит кошек (ВИК-вирусный иммунодефицит кошек или FIV - feline immunodeficiency virus) - тяжелое заболевание, поражающее иммунную и нервную системы, относится к семейству ретровирусов. Структурно, биохимически и по своей нуклеотидной последовательности ВИК родственен к вирусу иммунодефицита человека (ВИЧ), но иммунодефицит кошек не инфицирует человеческие клетки и специфичен только для семейства кошачьих. Дикие представители семейства кошачьих так же могут заразиться ВИК.

Источники заражения

1. Высокая концентрация вируса отмечена в слюне, в связи с этим, основным способом передачи инфекции является контактный, через укусы и царапины животных. Группу риска составляют взрослые коты свободного содержания.

3. С укусом кровососущих насекомых

4. От матери плоду (внутриутробное заражение) и инфицирование при грудном вскармливании.

5. При переливании крови. Крайне важно проводить полную диагностику донора крови.

Клинические симптомы

Первые признаки проявляются через 3-6 недель после инфицирования вирусом. Развивается картина острого заболевания, характеризующаяся:

b) лихорадкой-повышение температуры

c) лимфаденопатией - увеличением лимфоузлов

d) лейкопенией – снижением лейкоцитов в крови

e) нейтропенией – снижением нейтрофилов в крови

Далее ВИК переходит латентный период, длящийся от нескольких месяцев до 3-5 лет, после которого постепенно нарастают явления синдрома хронического иммунодефицита.

На данной стадии заболевания у животного могут быть следующие симптомы:

a) отказ от еды и анорексию

a) лейкопения – снижение общего количества лейкоцитов

b) лимфопения – снижение общего количества лимфоцитов

c) нейтропения - снижение общего количества нейтрофилов

Клинические симптомы иммунодефицита кошек обычно связаны с вторичными инфекциями:

- большинство ВИК-инфицированных кошек обычно имеют хронический стоматит и/или калицивирусную инфекцию в носоглотке.

- токсоплазмоз чаще обнаруживают у ВИК-инфицированных кошек, чем у неинфицированных, а ВИК-обусловленная иммуносупрессия может быть связана с клиническим проявления токсоплазмоза у кошек.

- кожные болезни вызванные грибковыми, бактериальными инфекциями, а также паразитарными заболеваниями: клещами Notoedres, Cheyletiella, Demodex, чаще проявляются у ВИК-инфицированных кошек.

Считается, что неврологические заболевания вызывает прямая ВИК-инфекция ЦНС. ВИК-обусловленные неврологические заболевания проявляются в виде двигательных, сенсорных нарушений или поведенческих нарушений, включая аномалии сна.

Диагностика

- Серологический метод (ИФА-иммуноферментный анализ/ИХ-иммунохроматография)-экспресс тест:

ИФА и ИХ методы ориентированы на определение антител к ВИК. В связи с быстротой выполнения анализа, в течении 1 часа, ИФА наиболее часто используемый метод для диагностики ВИК.

Рекомендации к ИФА для диагностики иммунодефицита кошек:

1. Возраст >6 месяцев. Положительный результат у котят возрастом менее 6 месяцев, родившиеся от ВИК-инфицированной кошки, необходимо подтверждать ПЦР методом из-за присутствия материнских антител. Отрицательный результат означает, что котята, вероятнее всего, ВИК-отрицательны.

2. Отсутствие вакцинации от иммунодефицита кошек. Через 2-3 недели после вакцинации вырабатываются антитела к ВИК, из-за чего результат теста будет ложноположительным.

На последних стадиях ВИК результат методом ИФА может быть ложноотрицательным, из-за серьёзной иммуносупрессии организма животного.

- ПЦР(real time) метод

Лечение

Лечение иммунодефицита у кошек основано на профилактике вторичных инфекций и снижении тяжести клинических инфекций. Для контроля вторичных и сопутствующих бактериальных инфекций часто используют антибиотики. Для каждого животного лечение подбирается индивидуально. Правильную схему лечения может назначить ветеринарный врач .

Многоступенчатый контроль качества анализов позволит точно и в кратчайшие сроки определить наличие или отсутствие инфекции.

Вы всегда можете заказать вызов ветеринарного врача на дом для взятия всех необходимых анализов.

Телефон для консультации и записи на прием +7(495) 260-0-260

Многие вирусы могут очень долго присутствовать в организме и циркулировать в крови, до поры до времени не вызывая никаких неприятностей. Однако это вовсе не значит, что они безопасны. Лабораторные анализы на вирусы позволяют выявить наличие последних, даже если никаких симптомов нет.

Анализы на вирусы: какие инфекции они выявляют

Для выявления вирусов лаборатории проводят исследования крови несколькими методами. Наибольшее распространение на сегодня получили ПЦР и иммуноферментный (ИФА) анализы.

Иммуноферментный анализ крови определяет наличие антител к вирусам (или антигенов к ним) в крови — иммуноглобулины (lgA, lgG, lgM) вырабатываются при заражении вирусами и являются своеобразными маркёрами инфекции.

Анализ на ДНК вируса, или ПЦР-исследование, позволяет выявить тип инфицирующего агента.

В качестве биоматериала для исследования обычно берут кровь. Анализ крови может подтвердить гепатит, герпес и вирус Эпштейна-Барра, аденовирус, различные половые инфекции (в том числе и сифилис), вирус иммунодефицита человека (ВИЧ) и другие инфекции. Однако кровь не единственный биоматериал, пригодный для выявления вирусных поражений. В зависимости от заболевания и симптомов, для анализа на вирусы сдают соскоб слизистой оболочки, кал, мочу, мазок, слюну.

Как мы уже отмечали, исследование крови на вирусы можно проводить двумя разными способами. Расскажем о них подробнее.

Иммуноферментный метод анализа на вирусы позволяет установить форму болезни, вызванной вирусом (хроническая, острая или бессимптомная), а также оценить эффективность противовирусной терапии. Это один из самых распространенных и точных методов для выявления половых инфекций, в частности ВИЧ и ВПЧ, гепатита В.

Для анализа на вирусы чаще всего сдается кровь. Обязательно предупредите врача, если вы недавно проводили вакцинацию, — этот факт может отразиться на точности анализов. Рекомендуется не принимать пищу на протяжении 8-ми часов перед забором биоматериала, а также воздержаться от употребления алкоголя и от курения.

Время ожидания результатов зависит от типа вируса, на который проводится анализ, и от методики работы лаборатории. Обычно результаты готовы через 1–3 дня, но иногда приходится ждать и 2 недели.

Рассказать о том, каким образом следует трактовать результаты анализов на все виды вирусов, в рамках одной статьи невозможно. Далее мы поговорим лишь о наиболее известных заболеваниях и о часто назначаемых исследованиях.

В случае проведения анализа методом ИФА наличие IgG в крови на гепатит говорит о том, что этот вирус в организме присутствовал, но иммунная система выработала к нему антитела. Присутствие одновременно антител класса IgM и IgG говорит о заболевании в острой форме. Иммуноглобулины только класса IgM — признак первичного инфицирования.

При проведении исследования методом ПЦР определяется РНК вируса. Результаты могут быть приведены в следующем формате:

• РНК вируса не выявлена.
• РНК вируса выявлена в концентрации ниже предела количественного определения (менее15 МЕ/мл). Сомнительный результат.
• РНК вируса гепатита С выявлена (от 15 и выше 100000000 МЕ/мл).

Для выявления этого вируса гепатита чаще всего назначается ИФА. Если в крови присутствуют антитела IgG и IgM, это значит, что вирус очень активен или же заражение произошло недавно.

В случае проведения ПЦР-анализа определяется концентрация фрагментов ДНК вируса гепатита В. Пациент получает результат с одной из приведенных трактовок:

• Не обнаружено.
• Сомнительный результат (результат положительный с концентрацией ДНК вируса гепатита В на границе точности метода).
• Обнаружено.

Если говорить о трактовке ИФА, то наличие антител, обозначаемых как Anti-HSV-IgG, говорит не об иммунитете к вирусу, а о том, что вы уже были когда-то инфицированы. Этот маркёр наблюдается у большинства пациентов. Если показатель anti-HSV-IgG в пробах, взятых в динамике за 2-недельный период, заметно растет, это значит, что заражение произошло недавно. О рецидиве говорит высокий показатель IgG.

Расшифровка анализа крови на ВИЧ очень проста — если результат отрицательный, это значит, что вирус не обнаружен, если положительный — увы, вирус в крови есть. Но следует знать, что сегодня даже самые надежные методы точны лишь на 98–99%, то есть всегда остается шанс, что результат будет, например, ложноположительным.

При анализе на аденовирус, вызывающий респираторные заболевания, применяется в основном ИФА. В ходе анализа подсчитываются IgG-антитела. Если показатель менее 0,8 условных единиц — результат отрицательный, более 0,8 — положительный.

Не пре­не­бре­гай­те про­фи­лак­ти­чес­ки­ми ана­ли­за­ми на ви­ру­сы. Ран­нее вы­яв­ле­ние ин­фек­ции по­зво­ля­ет от­сро­чить или по­да­вить раз­ви­тие за­бо­ле­ва­ния. В слу­чае же бе­ре­мен­нос­ти сда­ча био­ма­те­ри­а­ла на ана­лиз с целью вы­яв­ле­ния ви­рус­ных ин­фек­ций яв­ля­ет­ся обя­за­тель­ной про­це­ду­рой. По­во­дом для про­хож­де­ния ис­сле­до­ва­ния так­же мо­жет стать по­вы­шен­ный уро­вень лей­ко­ци­тов в кро­ви, сдвиг лей­ко­ци­тар­ной фор­му­лы, уве­ли­че­ние ко­ли­чест­ва нейтро­фи­лов (па­лоч­ко­ядер­ных), ми­е­ло­ци­тов и ме­та­ми­е­ло­ци­тов, сни­же­ние чис­ла лим­фо­ци­тов при вы­со­кой СОЭ в ре­зуль­та­тах кли­ни­чес­ко­го ана­ли­за кро­ви.

За звучной аббревиатурой ПЦР скрывается сложная и не слишком понятная для рядового пациента расшифровка — полимеразная цепная реакция. Что же такое ПЦР-диагностика, на чем она основана и почему в последнее время ее стали считать самой перспективной технологией в постановке диагнозов, касающихся инфекционных и вирусных заболеваний? Мы расскажем о преимуществах ПЦР-метода, его особенностях и этапах проведения.

ПЦР-диагностика: что это такое?

Диагностика методом ПЦР существует чуть более 30 лет. Значительно эволюционировав за это время, она зарекомендовала себя как один из наиболее точных способов выявления инфекций. В основе метода лежит принцип многократного увеличения микроскопических концентраций фрагментов ДНК возбудителя в биологической пробе пациента в искусственных условиях. В результате сложного процесса, называемого амплификацией, под воздействием ферментов и изменения температуры (от 50 до 95°С) из одной молекулы ДНК образуется две. При этом происходит копирование участка ДНК, который присутствует только у того вида патогенного микроорганизма, который интересует врача.

Цикл образования новой молекулы ДНК занимает всего около 3 минут, а тридцати-сорока циклов вполне достаточно, чтобы получить количество молекул, необходимое для достоверного визуального определения методом электрофореза.

Кроме амплификации, то есть простого увеличения числа копий молекулы ДНК, с помощью ПЦР можно производить и другие манипуляции с генетическим материалом, например, сращивать фрагменты ДНК, вводить мутации и т.д. Это позволяет использовать ПЦР не только для диагностики инфекционных и генетических заболеваний, но и для установления отцовства, клонирования и выделения новых генов.

ПЦР-диагностика проводится в специальных лабораториях с помощью амплификационного оборудования. На сегодня существует множество различных модификаций ПЦР, включая технологии с использованием не только ДНК, но и фрагментов рибонуклеиновой кислоты (РНК). В некоторых из них амплификация осуществляется при постоянной температуре, и для их проведения специальное оборудование не требуется.

Еще одна популярная модификация ПЦР — мультиплексная амплификация (МПА), которая позволяет проводить исследование сразу нескольких изучаемых фрагментов в одной пробирке. Это не только ускоряет и удешевляет проведение анализа, но и позволяет рассматривать одни фрагменты, получившиеся в результате реакции, в качестве положительных маркеров для других, что еще больше увеличивает точность исследования методом ПЦР.

В клинической медицине ПЦР-диагностика является одним из наиболее востребованных методов анализа в самых разных сферах:

• Прямое определение возбудителя инфекции. Некоторые традиционные методы, такие как иммуноферментный анализ (ИФА), выделяют только белки-маркеры, которые являются продуктом жизнедеятельности возбудителей инфекции, а потому только косвенно указывают на присутствие микроорганизмов. Наличие специфического участка в ДНК, выявленное с помощью ПЦР, безошибочно или почти безошибочно указывает на присутствие конкретной инфекции.
• Высокая специфичность метода . Она обусловлена тем, что в исследуемом материале выявляется фрагмент ДНК, характерный только для конкретного возбудителя инфекции. Специфичность исключает возможность ложных результатов анализа, тогда как в иммунологических методах исследований ошибки вполне вероятны из-за перекрестной реакции антигенов.
• Высокая чувствительность . При помощи ПЦР-диагностики можно выявить присутствие в организме даже единичных клеток вирусов или бактерий в тех случаях, когда обычными методами сделать это практически невозможно. ПРЦ определяет наличие всего 10–100 клеток в пробе, тогда как иммунологическими и микроскопическими тестами можно определить наличие инфекции при количестве клеток не менее 103–105.
• Универсальность . Сходство состава всех ДНК или РНК дает возможность применять универсальные методы лабораторных исследований, диагностируя сразу несколько возбудителей из одной биологической пробы.
• Скорость получения результатов . Поскольку для проведения ПЦР-диагностики не нужен посев и выделение культуры возбудителя, то и большого количества времени на нее не требуется. Весь цикл — от забора биоматериала до получения результатов — занимает 4–5 часов.
• Диагностика латентных инфекций . ПЦР-методом диагностируются трудно культивируемые и некультивируемые формы микроорганизмов, встречающиеся в тех случаях, когда заболевание протекает в скрытой форме.

Методом ПЦР можно выявлять возбудителей инфекции не только в организме человека, но и в почве, воде, продуктах питания.

Тем не менее не стоит думать, что ПЦР-диагностика не имеет недостатков. У нее есть свои ограничения, но их количество настолько незначительно, что не может отрицательно повлиять на популярность и эффективность метода:

• Вероятность амплификации ДНК не только живого, но и погибшего микроорганизма . При проведении ПЦР-диагностики для контроля эффективности лечения необходимо соблюдать определенные требования. В частности, проводить ПЦР нужно после определенного промежутка времени (1–2 месяца), за который происходит полное исчезновение возбудителя инфекции в организме.
• Возможность возникновения перекрестной реакции . Подбор фрагментов ДНК (праймеров) осуществляется на основе знаний о генетическом строении конкретного микроорганизма. Но теоретически такой же фрагмент может присутствовать и у других микроорганизмов, геном которых на сегодняшний день еще не расшифрован. Их присутствие в пробе может привести к ложноположительному результату анализа.
• Изменчивость микроорганизмов . Эта способность возбудителей к мутации иногда приводит к тому, что некоторые их штаммы становятся неуловимыми в процессе ПЦР-анализа.

Чтобы уменьшить риски, разработаны стандарты объемов испытаний тест-систем ПЦР-диагностики, включающие проверку на перекрестные реакции и тестирование всех известных штаммов конкретного возбудителя.

ПЦР-диагностика проводится в специальной лаборатории в несколько этапов.

1. Забор биоматериала . Процедура, предшествующая непосредственному анализу, которая осуществляется в процедурном кабинете соответствующего профиля. Забор делается с помощью стерильного оборудования только в стерильные пробирки. Материалом для исследования могут быть:
   • Эпителиальные соскобы со слизистых оболочек: из уретры, из цервикального канала, со слизистой дыхательных путей и зева, из конъюнктивы. Забор проводится с помощью специального ершика, при этом недопустимо попадание в материал следов крови.
   • Моча . Собираются первые 50 г утренней мочи в стерильную емкость. Материал используется для диагностики мочеполовых инфекций.
   • Мокрота . Используется для ПЦР-диагностики туберкулеза и респираторных форм микоплазмоза и хламидиоза. Мокроту собирают в стерильный флакон в количестве 15–20 мг.
   • Кровь, сыворотка, плазма . С их помощью диагностируются гепатиты, герпес, ВИЧ-инфекция. Для анализа используется венозная кровь (1–1,5 мл), собранная у пациента натощак в стерильную пробирку. Хранить биоматериал можно не более суток при температуре 4°С. Замораживать кровь категорически запрещается.
   • Биологические жидкости . К ним относятся слюна, сок простаты, околоплодная, плевральная, спинномозговая, суставная жидкости. Собираются при помощи пункции с использованием стерильного инструментария в количестве 0,1–1,5 мл в стерильные пробирки.
   • Биоптаты , т.е. материалы, полученные путем биопсии. Обычно на анализ отправляют биоптаты двенадцатиперстной кишки или желудка, чтобы выявить хеликобактерную инфекцию. Объем материала 2–3 мм 3 .
2. Хранение и транспортировка биоматериала . Хранить образцы можно при комнатной температуре не более 2 часов. Если необходимо длительное хранение, то пробы помещают в холодильник с температурой 2–8°С на срок не более одних суток. Допустимо хранение некоторых биоматериалов в течение двух недель в замороженном виде при температуре -20°С. Оттаивание и повторное замораживание проб запрещено. Транспортировка, если она необходима, должна проводиться в специальных термоконтейнерах или термосах с соблюдением всех правил хранения и перевозки биоматериалов.
3. Выделение ДНК из образца . Способ выделения зависит от вида определяемого микроорганизма и от вида биологического образца. Если, например, анализируется соскоб эпителиальных клеток, используется так называемый метод твердофазной сорбции, заключающийся в добавлении в образец специального вещества, концентрации ДНК на сорбенте и его многократной отмывке буферным раствором.
4. Проведение ПЦР . Некоторое количество образца из биологической пробы переносится в специальную микроцентрифужную пробирку. Туда же добавляется амплификационная смесь, имеющая сложный состав, в объеме 25 мл. Пробирки устанавливают в программируемый термостат, и автоматическом режиме проводится амплификация. Время ее проведения зависит от заданной программы и составляет 2–3 часа. Одновременно с опытными пробами проводятся контрольные — положительные , включающие в себя контрольный препарат ДНК исследуемого возбудителя, и отрицательные , не содержащие исследуемую ДНК. Количество циклов амплификации варьирует от 30 до 40, более 40 циклов проводить не рекомендуется, так как это способствует увеличению количества неспецифических продуктов в пробе.
5. Регистрация результатов . Фрагмент ДНК, характерный для возбудителя инфекции, выделяют методом электрофореза в присутствии специального вещества — бромистого этидия. Его соединение с фрагментами ДНК дает светящиеся полосы при облучении ультрафиолетовым излучением. Образец помещают в камеру для электрофореза и в течение 35–40 минут проводят разделение продуктов амплификации. После этого образец просматривают в ультрафиолетовом свете — наличие оранжевой светящейся полосы свидетельствует о положительном результате.
6. Интерпретация результатов исследования . Результат ПЦР-диагностики может быть либо положительным, либо отрицательным. Положительный результат говорит о том, что в организме человека обнаружены следы инфекции, причем именно в данный момент времени. Количественный результат ПЦР-анализа оценить может только врач, они индивидуальны для разных типов инфекций. На основании количественного результата можно сделать вывод о степени активности заболевания и определить характер лечения.

Цена ПЦР-диагностики зависит от того, на какую конкретно инфекцию пациент планирует проверяться, от вида анализируемого материала, методики тестирования — качественной или количественной. Цена за определение одной инфекции составляет от 200 до 800 рублей в разных клиниках. Кроме того, к стоимости анализа добавится и плата за забор биоматериала — около 400 рублей. Средняя стоимость ПЦР-диагностики разных видов приведена в таблице 1.

Таблица 1 . Примерные цены на анализы ПЦР в Москве

Название анализа	Цена, руб.
Определение ДНК хламидия	750
Определение ДНК микоплазмы хоминис	540
Определение микоплазмы гениталиум	350
Определение ДНК уреаплазмы	350
Гонококк, определение ДНК	350
Определение ДНК герпеса (разные типы)	350–600
Определение ДНК кандиды	570
Вирус краснухи, определение РНК	800
Дифференцированное определение ДНК ВПЧ (разные типы)	350–1900 [1]

ВИК вызывает медленно прогрессирующее истощение иммунной системы, приводящее к ослаблению иммунитета организма кошки, развитию вторичных инфекционных заболеваний и гибели.

Информация о возбудителе вируса иммунодефицита кошек

Cогласно классификации Международного комитета таксономии вирусов, относится к семейству Retroviridae. Характерной особенностью вирусов данного семейства является наличие фермента обратной транскриптазы (ревертазы), которая в цикле репродукции вызывает процесс обратной транскрипции, характеризующийся синтезом РНК-транскрипта с молекулы провирусной ДНК.

Пути распространения

Вирус иммунодефицита кошек – гемоконтатная инфекция. Из литературы известно, что наиболее часты случаи перезаражения в результате драк котов. Таким образом, наиболее подвержены заболеванию самцы, нежели самки. Численность больных животных с установленным диагнозом насчитывает, по разным данным, от 7% до 12% мирового поголовья. Половой путь передачи практического значения не имеет, однако инфицирование самок потенциально может происходить при спаривании, при повреждении кожи кошки и попадании в рану вируссодержащей жидкости (крови, слюны) кота, либо при оцарапывании животных во время спаривания, в результате чего создаются условия для гемоконтактного инфицирования. Случаи трансмиссивной передачи не описаны. Вирус иммунодефицита кошек, несмотря на близкую структуру с ВИЧ, не опасен для человека.

Устойчивость во внешней среде

Кошачий вирус иммунодефицита плохо устойчив во внешней среде. Обычные бактерицидные дезинфектанты быстро уничтожают вирус. Вирус высокочувствителен к нагреванию. При температуре 100 °С погибает мгновенно. В то же время, вирус устойчив к стерилизации посредством ультрафиолетового облучения.

Патогенез

Характерными особенностями течения хронических вирусных инфекций, к коим относится инфекция вирусом иммунодефицита кошек (ВИК-инфекция), являются длительное бессимптомное носительство, продолжающееся месяцы или годы, медленное специфическое поражение некоторых систем органов и неминуемая гибель.

Патогенез обусловлен чувствительностью к вирусу клеток, обладающих белками-мишенями (CD4), на поверхности мембраны. К ним относятся не только лимфоциты (Т-хелперы), но и макрофаги, моноциты, некоторые виды энтероцитов, астроциты, эндотелиоциты кровеносных сосудов и сердца. В отличие от человека, иммунитет кошек способен эффективно сдерживать прогрессирование инфекции. При благоприятном течении болезни срок жизни животного имеет обычную продолжительность, и заподозрить течение скрытой вирусной инфекции практически невозможно.

При неблагоприятном течении вирус подвергает глубоким изменениям иммунную систему кошек, вызывая иммунный паралич. Летальный исход наступает от прогрессирования вторичных вирусно-бактериальных инфекций и соматических патологий, связанных с поражением вирусом иммунодефицита кошек (хроническая печёночно-почечная недостаточность, стоматиты, анемии и другие).

Клинические признаки

Клинические признаки в зависимости от глубины поражения иммунной системы и распространения вирусной инфекции на другие системы органов могут носить самый разнообразный характер. Преимущественно проявляются в виде вторичных дыхательных, кишечных, кожных инфекций, инфекций ротовой полости, которые часто рецидивируют и трудно поддаются лечению. Также могут встречаться патологии, связанные с поражением жизненно-важных органов (печени, почек), селезёнки, лимфатических узлов.

Диагностика вируса иммунодефицита

В качестве скринингового теста используется метод иммуноферментного анализа (ИФА), которым обнаруживают антитела к ВИК.

Широко используется метод ПЦР, обнаруживающий провирусную ДНК в клетках периферической крови. Диагностическое преимущество метода ПЦР – возможность обнаружения животных с интенсивной виремией. К недостаткам можно отнести зависимость результата ПЦР от факторов внутренней среды организма. Отрицательный результат ПЦР не означает того, что данное животное не поражено вирусом иммунодефицита кошек. В комбинации с ПЦР следует применять метод ИФА для более точной диагностики болезни.

При отсутствии доступной ветеринарной лаборатории ветеринарными врачами применяется метод экспресс-диагностики, в основе которого лежит иммуно-хроматографический анализ (ИХА). ИХА-диагностикумы представляют собой диагностические полоски либо панели. Метод ИХА-диагностики отличается доступностью, простотой исполнения и дешевизной при сохранении чувствительности и специфичности на уровне не менее 95%.

В качестве патологического материала всегда используется венозная кровь. Результаты при использовании всех перечисленных видов диагностических систем носят качественный характер. Ложноотрицательные результаты лабораторных тестов могут быть при терминальном состоянии животного, обусловленном течением ВИК, либо в первые 14 дней после заражения.

Лечение иммунодефицита кошек

Лечение основано на симптоматической терапии, при этом применение противовирусной терапии является редкостью. Практика применения медицинских противовирусных в отношении ВИЧ средств кошкам встречается редко по причине неустановленных схем применения, высокой токсичности.

В отличие от химиотерапевтических противовирусных препаратов менее выраженной токсичностью обладают интерфероны.

Попытки применения человеческого интерферона для терапии ретровирусных инфекций кошек не давали должного результата из-за низкой активности интерферона человека в организме кошки и образования нейтрализующих антител.

В данной ситуации наиболее перспективным представляется применение кошкам видоспецифичного, кошачьего, интерферона, который, прерывает репродукцию вирусов и вполне успешно применяется на практике.

Установлено действие интерферона кошки на ВИК посредством индуцирования синтеза белка APOBEC3, который нарушает сборку вирусной РНК, с образованием дефектных вирусных частиц, и тетерина – трансмембранного белка, ингибирующего перенос вириона из клетки во внешнюю среду. Однако данный способ прерывания репродукции вируса может нарушаться факторами патогенности самого вируса.

Следует отметить, что ВИК является неизлечимым заболеванием. Лечение преследует цель достижения неполной ремиссии болезни, которая характеризуется облегчением состояния животного, более оптимальной работой систем органов, ослаблением симптомов проявления патологического процесса, связанного с течением ВИК. Продолжительность ремиссии зависит от множества различных факторов и может колебаться в широких пределах.

Преимущества лечения препаратом Фелиферон

Кошкам с установленным диагнозом вирусного иммунодефицита кошек Фелиферон раствор для инъекций применялся по схеме: 400 000 МЕ в течение 7 дней, далее по 400 000 МЕ на 9, 11, 13 день в комбинации с антибиотиками и средствами симптоматической терапии в соответствии с инструкциями по их применению.

При оценке результатов применения Фелиферона в случае ВИК-инфекции было выявлено изменение показателей провирусной ДНК в периферической крови уже к концу терапии в опытной группе (с положительного на отрицательный). При этом у всех животных контрольной группы ДНК ВИК продолжала обнаруживаться методом ПЦР. В совокупности с отрицательным результатом ПЦР на ДНК ВИК отмечена нормализация количества лимфоцитов периферической крови (с 19±6,67 до 25,00±2,25 при норме 20-55 %). Из литературных данных известно, что количество лимфоцитов в периферической крови кошек, больных ВИК, имеет обратно пропорциональную зависимость от степени виремии при ВИК-инфекции. Таким образом, полученная нами в эксперименте совокупность отрицательного результата ПЦР на ДНК ВИК в периферической крови и нормализация количества лимфоцитов свидетельствует о положительном клиническом эффекте Фелиферона при ВИК.

Применение Фелиферона также оказало стабилизирующее действие на показатели ОАК (общее количество лейкоцитов с 9,85±3,15 до 16,15±3,94 при норме 5,5-18,5 103/л), сегментоядерных нейтрофилов (с 72,00±10,45 до 69±12,53 при норме 35-75%), моноцитов (от 0 до 4±0,35 при норме от 1 до 4%), лимфоцитов (с 19±6,67 до 25,00±2,25 при норме 20-55%). Результаты исследований показали, что в опытной группе, где применялся Фелиферон, отмечено сокращение сроков исчезновения симптомов вторичных инфекций (конъюнктивитов на 1 сутки, ринитов на 0,65 суток, диареи на 1,33 суток) по сравнению с контрольной группой.

Результаты биохимического анализа крови кошек, больных ВИК, до и после применения Фелиферона не имели статистически достоверных отличий от исходных, что указывает на отсутствие отрицательных реакций со стороны жизненно-важных органов после применения Фелиферона кошкам. На всём протяжении эксперимента у больных животных не выявлено побочных реакций и осложнений, связанных с применением Фелиферона.

Оценка эффективности применения Фелиферона
при лечении кошек, больных ретровирусными инфекциями