Современные методы детоксикации в хирургии сепсис

Полный текст:

Цель исследования — сравнительный анализ эффективности методов экстракорпоральной детоксикации (ЭД) организма при абдоминальном сепсисе (АС) и выбор оптимальных методов детоксикации в зависимости от уровня эндотоксикоза.

Материал и методы. Объект исследования составили 56 больных (41 мужчина и 15 женщин, средний возраст — 39,4±12,2 лет) с хирургической абдоминальной инфекцией различного генеза, осложненной развитием сепсиса, лечение которых включало методы ЭД. Уровень ЭИ и эффективность детоксикации оценивали по общеклиническим и биохимическим показателям крови, лейкоцитарному индексу интоксикации (ЛИИ), содержанию веществ низкой и средней молекулярной массы (ВНиСММ) в средах организма. С целью детоксикации применялись гемосорбция, плазмаферез, гемодиализ, гемодиафильтрация, гемофильтрация.

Результаты. Хирургическая абдоминальная инфекция сопровождается эндотоксемией, которая не имеет четкой нозологической специфичности, а зависит от характера клинического течения болезни и наиболее выражена при септическом синдроме. При АС у 80,4% больных отмечается фаза временной декомпенсации органов и систем детоксикации, у 19,6% — фаза необратимой декомпенсации и терминальная степень эндотоксикоза, которые требуют применения ЭД организма. Применение различных методов ЭД в зависимости от уровня ЭИ позволяет снизить уровень эндотоксикоза и добиться стойкого положительного эффекта в 85,2% случаев ее применения.

Заключение. Методами выбора при АС являются фильтрационно-диализные методы (гемодиализ, гемофильтрация и гемодиафильтрация). Гемосорбция и плазмаферез могут быть рекомендованы к применению на начальных стадиях развития эндотоксикоза и при сохраненной выделительной функции почек.

1. Макарова Н. П., Коничева И. Н. Синдром эндогенной интоксикации при сепсисе. Анестезиология и реаниматология 1995; 6: 4—8.

2. Малахова М. Я. Эндогенная интоксикация как отражение компенсаторной перестройки обменных процессов в организме. Эфферент. тер. 2000; 6 (4): 3—14.

3. Кальф-Калиф Я. Я. О лейкоцитарном индексе интоксикации и его практическое значение. Врачебное дело 1941; 1: 31—33.

4. Малахова М. Я. Лабораторная диагностика эндогенной интоксикации. В кн.: Медицинские лабораторные технологии. СПб.: Интермедика 1999; 2: 618—647.

5. Vinsent J. L., Moreno R., Tacala J. et al. The SOFA (Sepsis-related оrgan failure assessment) score to describe organ disfunction/failure. Int. Care Med. 1996; 22: 707—710.

6. Bone R. C., Balk R. A., Cerra F. B. et al. American сollege of сhest рhysicians society of critical care medicine consensus conference: Definitions for sepsis and organ failure and guidelines for the use of innovative therapies in sepsis. Chest 1992; 101: 1644—1655.

7. Лопухин Ю. М., Молоденков М. Н. Гемосорбция. М.: Медицина;1985.

8. Лужников Е. А., Гольдфарб Ю. С., Мусселиус С. Г. Детоксикационная терапия. СПб.: Лань; 2000.

9. Мельцер И. М., Потапов А. Ф., Кершенгольц Б. М., Эверстова Л. В. Показатели эндотоксикоза и неспецифической адаптивной реакции при распространенном перитоните в условиях Крайнего Севера. Анестезиология и реаниматология 2004; 2: 49—53.

10. Миронова Г. Е. Состояние антиоксидантной защиты при развитии хронического обструктивного бронхита и применение антиоксидантов в комплексной терапии больных в условиях Крайнего Севера: автореф. дис… д-ра биол. наук. М.; 2000

11. Петрова П. Г., Кершенгольц Б. М., Колосова О. Н., Мельцер И. М. Влияние нарушений экологических равновесий на здоровье населения Севера на примере Республики Саха (Якутия). Дальневосточн. мед. журн. 2001; 4: 5—10.

12. Ватазин А. В. Фильтрационные и комбинированные методы экстракорпоральной детоксикации при перитоните. М.: М-ОКО; 1998.

13. Яковлева И. И., Тимохов В. С., Молчанова Л. В. и др. Кинетическое моделирование при постоянной гемофильтрации у больных с сепсисом и полиорганной недостаточностью. Анестезиология и реаниматология 2002; 6: 52—55.



Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.

Эфферентная терапия – это комплекс лечебных методов, которые позволяют нормализовать качественный состав крови пациента. К этим методам относится, прежде всего, плазмаферез, при котором в специальном аппарате производится разделение крови пациента на жидкую часть (плазму) и клетки (эритроциты, лейкоциты, тромбоциты). Плазма крови заменяется на специальные растворы, а клетки возвращаются пациенту. Плазмаферез позволяет удалять из крови вместе с плазмой массу токсических и патологических веществ. В ФГБУ "ПФМИЦ" Минздрава России этот метод с успехом применяется при острой интоксикации на фоне ожоговой болезни, инфекционных осложнениях заболеваний костей и суставов, сепсисе, печеночной недостаточности. Кроме того, с помощью плазмафереза можно улучшить реологические свойства крови (то есть ее текучесть) и за счет этого усилить кровообращение в микрососудах. Этот эффект используется при атеросклерозе, ишемической болезни сердца, сахарном диабете и его осложнениях (синдроме диабетической стопы, нефропатии). Эффект детоксикации плазмафереза используется также при хронических заболеваниях почек, хроническом гепатите. Петербургскими учеными показано, что людям, перенесшим вирусный гепатит, целесообразно регулярно проводить плазмаферез.

Следует отметить, что эффекты плазмафереза многогранны. Например, известно положительное воздействие плазмафереза на функцию иммунной системы организма, что позволяет с успехом применять его при бронхиальной астме, ревматоидном артрите, псориазе и рассеянном склерозе.

Широко используется в отделении метод криоплазмафереза. При этом плазма крови обрабатывается специальными методами, освобождается от токсических веществ и возвращается больному. Очень хорошие результаты получены при использовании криоплазмафереза у больных с облитерирующими заболеваниями сосудов нижних конечностей, подагре, увеличении содержания в крови холестерина и липоротеинов.

Кроме этого, в отделении применяются сорбционные методы эфферентной терапиии. Их основным принципом является использование сорбента – специального вещества, способного захватывать (сорбировать) из проходящей через него крови определенные компоненты. Основными методами сорбционных технологий являются гемосорбция и плазмосорбция. В первом случае через сорбент проходит кровь больного, а во втором случае – плазма крови. Оба эти метода с успехом применяются для лечения острых и хронических интоксикаций. Гемосорбция, например, является одним из лучших методов детоксикации при алкогольной и наркологической зависимости, ревматоидном артрите, аллергии различного происхождения, псориазе, а плазмосорбция – при хронической почечной недостаточности на додиализной стадии.

Гемодиализ (искусственная почка) применяется для лечения острой почечной недостаточности, возникающей при отравлениях, синдроме сдавления, когда конечности человека достаточно долго находятся придавленными какими-то предметами (в том числе- под тяжестью собственного тела). При восстановлении кровотока в конечности образовавшиеся в ней токсические вещества поступают в кровь и отравляют организм, прежде всего- почки. Хроническая почечная недостаточность лечится в специальных диализных центрах.

Квантовые технологии заключаются в воздействии на кровь пациента определенными частями спектра видимого света. В медицине используются части спектра только определенной длины волны, которые улучшают свойства крови и вызывают положительные изменения систем организма, не оказывают отрицательного воздействия на кровь и ее компоненты. Основными методами квантовых технологий является ультрафиолетовое и лазерное облучение крови. Ультрафиолетовое облучение осуществляется путем введения в вену пациента специального световода, по которому подается свет ультрафиолетового спектра определенной длины волны. Лазерное облучение выполняется аналогично, но с использованием гелий-неонового лазера. Оба метода имеют свою точку приложения в организме человека и, соответственно вызывают разные эффекты. Ультрафиолетовое облучение обладает мощным антисептическим воздействием на кровь и стимулирует иммунную систему организма. Поэтому этот метод с успехом применяется при инфекционных осложнениях, сопровождающихся иммунодефицитом, а так же рецидивирующем фурункулезе, аутоиммунных дерматитах, хронических язвенных поражениях кожи, для стимуляции их заживления. Лазерное облучение крови оказывает выраженный обезболивающий эффект, улучшает реологические свойства крови и усиливает микроциркуляцию. Поэтому в комплексе лечения трофических язв нижних конечностей, длительно незаживающих ран, нарушения периферического кровообращения этот метод зарекомендовал себя с лучшей стороны.


6.2. Лечение сепсиса и септического шока

Лечение септических больных следует проводить под постоянным клиническим и лабораторным контролем, включающим оценку общего состояния, пульса, АД и ЦВД, почасового диуреза, температуры тела, частоты дыхания, ЭКГ, пульсооксиметрии. Обязательным должно быть исследование общих анализов крови и мочи, показателей кислотно-щелочного состояния, электролитного обмена, содержания в крови остаточного азота, мочевины, креатинина, сахара, коагулограммы (время свертывания, содержания фибриногена, тромбоцитов и др.). Все эти исследования необходимо проводить не реже одного двух раз в сутки, чтобы иметь возможность своевременно внести коррективы в проводимую терапию.

Комплексное лечение сепсиса представляет собой одну из труднейших задач. Обычно оно складывается из двух основных направлений:

1.Активное хирургическое лечение первичного и метастатических гнойных очагов.

2.Общее интенсивное лечение септического больного, целью которого является быстрая коррекция гомеостаза.

Хирургическое лечение направлено на удаление септического очага и проводится при любом состоянии больного, часто по жизненным показаниям. Операция должна быть предельно малотравматичной, по возможности радикальной, а подготовка к ней предельно кратковременной, используя для вмешательства любой светлый промежуток. Метод обезболивания – щадящий. Наилучшие условия для ревизии очага обеспечиваются при интубационном наркозе (индукция – седуксен, кетамин; основной наркоз – НЛА, ГОМК и др.).

Хирургическое лечение гнойного очага должно осуществляться с обязательным соблюдением ряда требований:

I. При множественных очагах необходимо стремиться выполнить операцию одномоментно.

2. Операция выполняется по типу хирургической обработки пиемического очага и состоит в полном иссечении всех нежизнеспособных тканей разрезом, достаточным для вскрытия имеющихся карманов и затеков. Обработанную раневую полость дополнительно обрабатывают пульсирующей струей антибактериальной жидкости, лучами лазера, ультразвуком, криовоздействием или вакуумированием.

3. Хирургическая обработка гнойного очага завершается различными путями:

– наложением швов в условиях активного дренирования раны с ее промыванием и векуум-аспирацией или "проточным" методом;

– лечение раны под повязкой с многокомпонентными мазями на гидрофильной основе или дренирующими сорбентами;

– зашиванием раны наглухо (по ограниченным показаниям);

– наложение швов в условиях трансмембранного раневого диализа.

4. Во всех случаях после хирургической обработки необходимо создать условия покоя в области раны путем иммобилизации для устранения болевой импульсапии, отрицательных нейро-трофических влияний, травматизации тканей.

При совмещении шва гнойной раны с активным антибактериальным дренажем промывание раневой полости растворами антисептиков проводят в течение 7-10 суток ежедневно по 6-12 часов в зависимости от состояния раны. Методика проточно-аспирационного дренирования обеспечивает механическое очищение гнойного очага от некротического дейтрита и оказывает прямое антимикробное действие на раневую микрофлору. Для промывания обычно требуется 1-2 литра раствора (0,1% раствор диоксидина, 0,1% раствор фурагина, 3% раствор борной кислоты, 0,02% раствор фурацилина и др.). При лечении гнойных процессов, обусловленных клостридиальной микрофлорой, для промывания используют растворы перекиси водорода, калия перманганата, метрогила. Метод промывания доступен, технически прост, применим в любых условиях. Следует отметить, что промывное дренирование при анаэробной инфекции менее эффективно, чем при гнойной, так как не приводит к быстрому уменьшению избыточного отека тканей.

Современные методики активного воздействия на гнойную рану направлены на резкое сокращение первой и второй фаз раневого процесса. Основными задачами лечения ран в первой (гнойно-некротической) стадии раневого процесса является подавление инфекции, ликвидация гиперосмии, ацидоза, активация процесса отторжения некротических тканей, адсорбция токсического отделяемого раны. Таким образом, препараты для химиотерапии раны должны обладать одновременным многонаправленным действием на гнойную рану – антимикробным, противовоспалительным, некролитическим и обезболивающим.

Мази на гидрофильной (водорастворимой) основе стали сейчас препаратами выбора при лечении гнойных ран; Любые гипертонические растворы оказывают на гнойную рану чрезвычайно кратковременное действие (не более 2-8 часов), так как быстро разбавляются раневым секретом и теряют свою осмотическую активность. Кроме того, эти растворы (антисептиков, антибиотиков), оказывают определенное повреждающее действие на ткани и клетки макроорганизма.

Разработаны многокомпонентные мази (левосин, левомиколь, левонорсин, сульфамилон, диоксиколь, сульфамеколь), в состав которых включены противомикробные средства (левомицетин, норсульфазол, сулъфадиметоксин, диоксидин), активатор тканевых обменный процессов (метилурацил), местный анестетик (тримекаин), а гидрофильная основа мази (полиэтиленоксид), обеспечивает её дегидратирующее действие в гнойной ране. За счет водородых связей полиэтиленоксид (ПЭО) образует с водой комплексные соединения, причем связь воды с полимером не является жесткой: забирая воду из тканей, ПЭО сравнительно легко отдает её в марлевую повязку. Мазь снижает внутритканевую гипертензию, способна подавлятъ раневую микрофлору через 3-5 суток. Мазь действует 16-18 часов, повязка меняется обычно ежедневно.

В последние годы нашли широкое применение для воздействия на очаг гнойной инфекции водопоглащающие дренирующие сорбенты типа "Сорбилекс", -"Дебризан" (Швеция), "Галевин" (РФ), угольные адсорбенты гранулированной и волокнистой структуры. Местное применение дренирующих сорбентов оказывает эффективное противовоспалительное действие, ускоряет процессы заживления ран и сокращает сроки лечения. Перевязки производят ежедневно, сорбенты на перевязке удаляются перекисью водорода и струей антисептика. Достигается сорбентом и частичная регионарная детоксикация (адсорбция токсических веществ сорбентами).

Раневой диализ – разработанный в нашей академии способ осмоактивного трансмембранного дренирования ран, сочетающий в себе непрерывное дегидратационное воздействие с управляемой химиотерапией в гнойно-септическом очаге (Е.А.Селезов, 1991). Это новый оригинальный высокоэффективный способ дренирования ран и гнойно-септических очагов. Способ, обеспечивается диализирующим мембранным дренажем, в полости которого обменивается осмоактивный полимерный гель в качестве диализирующего раствора. Такой дренаж обеспечивает дегидратацию отечных воспалительных тканей и ликвидацию застоя раневого экссудата, обладает способностью трансмембранной абсорбции из раны токсических веществ (вазоактивных медиаторов, токсических метаболитов и полипептидов), создаёт условия для регионарной детоксикации. В тоже время введение в состав диализата антибактериальных препаратов обеспечивает их поступление и равномерную диффузию из дренажа в ткани пиемического очага для подавления патогенной микрофлоры. Способ оказывает одновременно антимикробное, противовоспалителъное, антиишемическое, детоксикационное действие и создает оптимальные условия для регенераторных процессов в раневом очаге.

Мембранный диализирующий дренаж функционирует как искусственная почка в миниатюре, а раневой диализ является по своей сути методом интракорпоральной регионарной детоксикации, который предупреждает интоксикацию, связанную с септическим очагом. Появилась реальная возможность изменять обычный путь резорбции токсичных веществ из пиемического очага в общий кровоток на противоположное направление – из тканей септического очага в полость диализирующего мембранного дренажа.

При абсцессах печени, почек, селезенки, легких, выявленных с помощью новейщих методов обследования (компьютерной томографии, ультразвуковой диагностики), прибегают к активной хирургической тактике, вплоть до удаления очага. Раннее дренирование абсцессов и флегмон забрюшинного пространства также позволяет снизить летальность при сепсисе.

Значительно сокращает сроки и улучшает результаты лечения в управляемой абактериальной среде и оксибаротерапия, нормализующая кислородный баланс организма и оказывающий ингибирующее воздействие на анаэробы.

Интенсивная терапия сепсиса и септического шока

Основными направлениями интенсивной терапии сепсиса и септического шока на основании данных литературы [12] и нашего собственного опыта, могут быть признаны следующие:

1) Ранняя диагностика и санация септического очага;

2) Адекватная антибактериальная терапия;

3) Торможение гиперергической реакции организма на агрессию;

4) Коррекция гемодинамики с учетом стадии септического шока;

5) Ранняя респираторная поддержка, а также диагностика и лечение РДС;

6) Кишечная деконтаминация;

7) Борьба с эндотоксикозом и профилактика ПОН;

8) Коррекция нарушений свертываемости крови;

9) Подавление активности медиаторов;

12) Нутритивная поддержка

13) Общий уход за септическим больным;

14) Симптоматическая терапия.

Антибактериальная терапия. При использовании антибактериальных средств, предполагается, что патогенные бактерии являются причиной данного случая, но и возможность другого инфекционного начала, связанного с грибами и вирусами, не должна быть пропущена. В большинстве госпиталей регистрируются случаи сепсиса, связанные с Гр– и Гр+ бактериями, представляющими часть нормальной микрофлоры организма.

Микробиологическая диагностика сепсиса является определяющей в выборе эффективных режимов антибактериальной терапии [17]. При соблюдении требований к правильному забору материала положительная гемикультура при сепсисе выявляется в 80-90% случаев. Современные методы исследований гемокультуры позволяют зафиксировать рост микроорганизмов в течение 6-8 часов, а ещё через 24-48 часов получить точную идентификацию возбудителя.

Для адекватной микробиологической диагностики сепсиса следует соблюдать следующие правила.

1. Кровь для исследований необходимо забирать до начала антибактериальной терапии. В тех случаях, когда больной уже получал антибиотики и их невозможно отменить, кровь забирают непосредственно перед очередным введением препарата (на минимальной концентрации антибиотика в крови).

2. Кровь для исследования забирают из периферической вены. Не допускается забор крови из катетера, за исключением случаев, когда предполагается катетер-ассоциированный сепсис.

3. Необходимым минимумом забора являются две пробы, взятые из вен разных рук с интервалом 30 минут.

4. Более оптимальным является использование стандартных комерческих флаконов с готовыми питательными средами, а не флаконов, закрытых ватно-марлевыми пробками, приготовленными в лаборатории.

5. Забор крови из периферической вены следует проводить с тщательным соблюдением асептики.

Раннее лечение антибиотиками начинается до выделения и идентификации культуры,что чрезвычайно важно для его эффективности. Ещё более 20 лет назад было показано (B.Kreger et al, 1980), что адекватная антибактериальная терапия сепсиса на первом этапе снижает риск летального исхода на 50%. Недавно проведенные исследования (Carlos M.Luna,2000), обнародованные на 10-м Европейском Конгрессе по клинической микробиологии и инфекционным болезням, подтвердили справедливость данного положения при вентилятор-ассоциированных пневмониях. Это обстоятельство имеет особенное значение у пациентов с нарушенным иммунитетом, где задержка лечения свыше 24 часов может быстро закончиться неблагоприятным исходом. Немедленное эмпирическое применение антибиотиков широкого спектра действия парентерально рекомендуется всякий раз, когда подозреваются инфекция и сепсис.

Первоначальный выбор стартовой имперической адекватной терапии является одним из самых значимых факторов, определяющих клинический исход заболевания. Любое промедление с началом адекватной антибактериальной терапии повышает риск осложнений и летальных исходов. Особенно это касается тяжелого сепсиса. Показано, что результаты лечения антибактериальными препаратами тяжелого сепсиса с полиорганной недостаточностью (ПОН) значительно хуже, чем сепсиса без ПОН. В связи с этим, применение максимального режима антибактериальной терапии у больных с тяжелым сепсисом следует осуществлять на самом раннем этапе лечения (J.Cohen, W.Lynn. Sepsis, 1998; 2: 101)

В ранней фазе лечения выбор антибиотика основан на известных вариантах бактериальной чувствительности и ситуационном предположении инфекции (схемы эмпирической терапии). Как уже было сказано выше, штаммы микроорганизмов при сепсисе часто связаны с госпитальной инфекцией.

Корректный выбор антимикробных средств обычно определяется следующими факторами: а) вероятный возбудитель и его чувствительность к антибиотикам, б) заболевание, лежащее в основе, и иммунный статус пациента, в) фармакокинетика антибиотиков, г) тяжесть заболевания, д) оценка соотношения стоимость / эффективность.

В большинстве госпиталей считается правилом применение антибиотиков широкого спектра действия и комбинаций антибиотиков, что обеспечивает их высокую активность против широкого спектра микроорганизмов до того, как станут известны результаты микробиологического исследования (табл.1). Гарантированный широкий спектр подавления инфекции – основная причина подобной антибактериальной терапии. Другим доводом в пользу применения комбинации различных типов антибиотиков является снижение вероятности развития антибиотикорезистентности во время лечения и наличие синергизма, что позволяет добиваться быстрого подавления флоры. Одновременное использование нескольких антибиотиков у больных с угрозой сепсиса оправдано многими клиническими результатами. При выборе адекватного режима терапии следует учитывать не только охват всех потенциальных возбудителей, но и возможность участия в септическом процессе мультирезистентных госпитальных штамов микроорганизмов.

Перитонит — широкий комплекс патологических процессов, протекающих в просвете брюшной полости, в брюшине, подлежащих тканях (предбрюшинная клетчатка, стенки органов брюшной полости и их просветах), а также на уровне всех жизненно важных органов и систем (системная воспалительная реакция, сепсис, органные и системные дисфункции, шок).

При перфорации полых органов начало перитонита характеризуется раздражением рецепторного аппарата брюшины. Интенсивность болевой импульсации иногда достигает шокогенного уровня, развивается перитонеальный шок.

Когда инфекционный агент или жидкость попали в брюшную полость развиваются набухание и слущивание мезотелия брюшины, нарушаются процессы продукции жидкости в брюшную полость и всасывание ее оттуда. Сначала наступает спазм мелких сосудов, затем их парез и паралич. Начинается экссудация в брюшную полость в результате проницаемости сосудистой стенки и воспаления, а всасывание ее нарушается. В брюшной полости скапливается много жидкости, она вначале серозная. Уменьшается ОЦК. Серозный экссудат из-за размножения флоры, выпадения фибрина мутнеет. В нем много микробов, их токсинов, продуктов аутолиза. Из-за обволакивания фибрином микроорганизмы становятся недоступными для фагоцитов и антибиотиков. Токсины и продукты аутолиза всасываются париетальной брюшиной и вызывают эндогенную интоксикацию. Процесс переходит из реактивной фазы в токсическую.

Одновременно нарушается равновесие холинергических и адренергических нервных процессов, повышается активность симпатоадреналовых реакций. В результате замедляется перистальтика, извращается кишечная секреция, развивается кишечный стаз. Парез кишечника сменяется его параличом. Возникает рвота, ведущая к потере жидкости, соков, солей.

В кишечник пропотевает жидкая часть крови. В нем идут процессы гниения, которые усугубляют интоксикацию. Стенки кишки перерастягиваются, становятся проницаемыми для микробов, токсинов, которые проникают в брюшную полость. Экссудат становится гнойным. Еще больше уменьшается ОЦК. Всасывание токсичных веществ из кишечника из-за угнетения барьерной функции энтероцитов по лимфатическим путям приводит к повреждению паренхимы легких, через притоки воротной вены - к повреждению гепатоцитов.

Из-за сгущения крови нарушается реологиия крови и микроциркуляция в сосудах чревной зоны, развивается микротромбоз. Прогрессирование эндотоксикоза приводит к нарушению органного кровотока, развиваются нефропатии, вплоть до развития острой почечной недостаточности. Портальная эндотоксемия и бактериемия приводят к нарушению функций печени. На фоне прогрессирующей гиповолемии снижается функциональная способность сердца, уменьшается сердечный выброс, что ведет к тахикардии. За счет повышения процессов катаболизма снижается уровень белка плазмы. Клетки теряют калий. Развиваются дефицит натрия и хлора из-за рвоты, метаболический ацидоз. Повышается уровень мочевины. Интоксикация ведет к нарушению нервной системы, метаболической энцефалопатии.

В конце развития перитонита - полиорганная недостаточность.

Меняется реактивность организма. Местная защита обеспечивается фагоцитированием лейкоцитов и макрофагов, которые захватывают и переваривают бактерии и белки, обеспечивают очищение брюшной полости от слизи, муцина. Бактерии вне зоны воспаления задерживаются и обезвреживаются в печени, селезенке клетками ретикулоэндотелиальной системы. Защитная роль также принадлежит лимфоцитам кишечника, пейеровым бляшкам, лимфоузлам брыжейки, клеткам мезотелия сальника и брюшины, а также иммуноглобулинам. Местной защите способствуют отек, инфильтрация органов, прилежащих к очагу воспаления (сальник, брыжейка, кишечник), слипание их друг с другом и с поврежденным органом благодаря выделению фибрина и густого клейкого экссудата. В результате воспалительный очаг может быть полностью локализован. При слабости защитных сил воспаление прогрессирует, распространяется по брюшине, развивается диффузный перитонит, чему способствуют высокая вирулентность микробов, интенсивность и длительность загрязнения брюшины, неадекватность лечения; имеют значение и дыхательные экскурсии брюшной стенки, диафрагмы, перистальтика кишечника.

Борьба с интоксикацией - методом управляемой гемодилюции с форсированным диурезом. При условии удовлетворительной функции почек и сердечно-сосудистой системы объем инфузии может составлять до 5 литров. Применяются также гемодиализ, гемосорбция, лимфосорбция, УФО крови, внутривенное лазерное облучение крови, плазмаферез.

1. Всем студентам иметь при себе мед. халат, сменную обувь, хирургический костюм, маску, хирургические перчатки.

2. На второе занятие по хирургии каждому студенту иметь бак. посев из носоглотки.

РАСПРЕДЕЛЕНИЕ

групп студентов 3 курсов лечебного, стоматологического и 2 педиатрического факультетов

на 4 и 6 семестры 2019-20 уч. г. по кафедре общей хирургии

09.45-12.00

Ф.И.О. преподавателей Понедельник Вторник Среда Четверг Пятница
08.00-10.15 10.30-12.45 11.00-13.15 08.00-10.15 09.45-12.00 08.00-10.15 11.00-13.15 09.45-12.00
Халимов Э.В.
Тихомирова Г.И. 311-312С
Баранова Т.С. 313-314С 303Л 313Л 324Л 204П 302Л
Михайлов А.Ю. 321-322С 304Л 202П 325Л 319Л 205П 306Л
Лекомцев Б.А. 328Л 317Л 316Л 206П
Широбоков С.Н. 323-324С 327Л 321Л 309Л
Майбуров В.В. 331-332С 308Л 207П 320Л
Бекбурова М.Х. 312Л 326Л 310Л
Казанцев В.В. 311Л 208П 318Л 203П

ЛЕКЦИИ

Лечебный ф-т, 3 курс (2 поток) по средам с 08.00 до 09.35 ч.

Дата лекции

Тема лекции Лектор Раны и раневой процесс. Тихомирова Г.И. 04.03.20 Основы хирургии опухолей. Баранова Т.С. 18.03.20 Гнойная инфекция в хирургии. Гнойная хирургия кожи, подкожной клетчатки, клетчаточных пространств и железистых органов. Лекомцев Б.А. 01.04.20 Гнойная хирургия костей и суставов (Остеомиелит, костно-суставной туберкулез). Лекомцев Б.А. 15.04.20 Сепсис. Перитонит. Методы детоксикации организма. Халимов Э.В. 22.04.20 Анаэробная клостридиальная и неклостридиальная инфекции. Тихомирова Г.И.

Основы хирургии пороков развития. Баранова Т.С. 06.05.20 Основы пластической хирургии и трансплантологии. Баранова Т.С.

Лечебный ф-т, 3 курс (1 поток) по пятницам с 08.00 до 09.35 ч.

Дата лекции Тема лекции Лектор
21.02.20 Раны и раневой процесс. ТихомироваГ.И.
06.03.20 Основы хирургии опухолей. Баранова Т.С.
20.03.20 Гнойная инфекция в хирургии. Гнойная хирургия кожи, подкожной клетчатки, клетчаточных пространств и железистых органов. Лекомцев Б.А.
03.04.20 Гнойная хирургия костей и суставов (Остеомиелит, костно-суставной туберкулез). Лекомцев Б.А.
17.04.20 Сепсис. Перитонит. Методы детоксикации организма. Халимов Э.В.
24.04.20 Анаэробная клостридиальная и неклостридиальная инфекции. ТихомироваГ.И.
08.05.20 Основы хирургии пороков развития. БарановаТ.С.
15.05.20 Основы пластической хирургии и трансплантологии. БарановаТ.С.

Педиатрический ф-т, 2 курс по четвергам с 13.30 до 15.05

Дата лекции Тема лекции Лектор
20.02.20 Асептика. Баранова Т.С.
05.03.20 Антисептика. Тихомирова Г.И.
19.03.20 Боль и обезболивание. Местная анестезия. Общая анестезия. Халимов Э.В.
02.04.20 Кровотечение. Гемостаз. Халимов Э.В.
16.04.20 Основы трансфузиологии. Переливание крови и ее компонентов. Халимов Э.В.
30.04.20 Общие нарушения жизнедеятельности хирургического больного. Баранова Т.С.
07.05.20 Основы хирургии опухолей. Баранова Т.С.
14.05.20 Переломы. Баранова Т.С.
21.05.20 Раны и раневой процесс. Термические и лучевые поражения (ожоги, отморожения, элетротравма). Тихомирова Г.И.

Стоматологический ф-т, 3 курс по понедельникам с 08.00 ч. до 09.35 ч.

Дата лекции Тема лекции Лектор
10.02.20 Основы хирургии опухолей. Баранова Т.С.
17.02.20 Общие нарушения жизнедеятельности хирургического больного. Баранова Т.С.
02.03.20 Общие вопросы гнойной хирургической инфекции. Инфекция кожи, подкожной клетчатки, клетчаточных пространств, железистых органов. Лекомцев Б.А.
16.03.20 Гнойная хирургия костей и суставов (остеомиелит, туберкулез). Лекомцев Б.А.
23.03.20 Общая гнойная хирургическая инфекция. Сепсис, перитонит, методы детоксикации организма. Халимов Э.В.
30.03.20 Анаэробная клостридиальная и неклостридиальная инфекция. Тихомирова Г.И.

ПАКТИЧЕСКИЕ ЗАНЯТИЯ

Лечебный ф-т, 1 курс.

№ занятия Тема занятия Продолжительность, акад. час.

Лечебный ф-т, 3 курс.

№ занятия Тема занятия Продолжительность, акад. час.
1. Обследование хирургического больного, написание истории болезни. 3
2. Гнойная инфекция в хирургии (кожи, подкожной клетчатки, клетчаточных пространств). 3
3. Гнойная инфекция железистых органов (паротит, мастит) и серозных полостей (плеврит). Панариций, флегмоны кисти. 3
4. Сепсис. Перитонит. Современные методы детоксикации. 3
5. Остеомиелит. 3
6. Костно-суставной туберкулез. 3
7. Анаэробная инфекция (столбняк, гангрена). 3
8. Переломы костей (клиника, диагностика, лечение). 3
9. Опухоли. 3
10. Повреждение мягких тканей. СДРТ. Вывихи. 3
11. Ожоги, отморожения, электротравмы. 3
12. Повреждения живота, груди, головы. 3
13. Итоговое занятие. Тестовый контроль. 3

Педиатрический ф-т, 2 курс.

Продолжительность,

акад. час.

Термические, лучевые поражения (ожоги, отморожения, электротравма).

Стоматологический ф-т, 3 курс.

№ занятия Тема занятия
1. Знакомство с хирургическим отделением. Деонтология. Документация. 3
2. Асептика. 3
3. Антисептика. 3
4. Десмургия. Гипсовые повязки. Транспортная иммобилизация. 3
5. Местная анестезия. Новокаиновые блокады. 3
6. Общая анестезия (наркоз). 3
7. Кровотечения. Гемостаз. 3
8. Основы трансфузиологии (переливание крови, кровезаменители, препараты и компоненты крови). 3
9. Пред- и послеоперационный период, осложнения. Хирургическая операция, ее виды. 3
10. Раны и раневой процесс. 3
11. Основы хирургии опухолей. 3
12. Общие нарушения жизнедеятельности хирургического больного. Шок. Терминальные состояния 3
13. Переломы. СДРТ. Повреждение мягких тканей, суставов и костей. Вывихи. 3
14.

Продолжительность,

акад. час.

№ занятия Тема занятия
1. Обследование хирургического больного. Написание истории болезни. Поликлиника. 3
2. Переломы. Раны и раневой процесс. Повреждение мягких тканей. СДРТ. 3
3. Опухоли. Терминальные состояния. Шок. Реанимация и интенсивная терапия. 3
4. Острая неспецифическая хирургическая инфекция. 3
5. Специфическая хирургическая инфекция. Столбняк, гангрена. 3
6. Сепсис. Перитонит. Современные методы детоксикации. 3
7. Остеомиелит. Костно-суставной туберкулез. Панариции и флегмоны кисти. 3
8. Ожоги. Отморожения. Электротравмы. Итоговое занятие. 3

Фонды оценочных средств по "Общая хирургия, лучевая диагностика":
- для лечебного факультета (060101 - Лечебное дело);

Фонды оценочных средств по "Хирургические болезни, общая хирургия":
- для педиатрического факультета (060103 - Педиатрия);

Фонды оценочных средств по "Хирургические болезни, общая хирургия":
- для стоматологического факультета (060201 - Стоматология).

Читайте также:

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!
При симпотмах заболевания - обратитесь к врачу.

Copyright © Иммунитет и инфекции