Сенсибилизированный латекс для определения пневмококков 50 тестов

Латексная агглютинация

Наборы для идентификации и дифференциации микроорганизмов из клинического материала или из чистой культуры методом латексной агглютинации.

Выпускаются в двух форматах:

1) Жидкие

Латексный реагент представлен в жидкой форме, хранение при + 2-8° С 1 год

Латексный реагент нанесен на реакционную карточку и лиофилизирован, хранение при + 2-25° С до 2 лет

Артикул

Название (русское/английское)

Фасовка

Описание

Бактериальный менингит

Набор Wellcogen на менингококковые инфекции/Wellcogen Bacterial Antigen Kit

Быстрый тест для прямого определения антигенов в жидкостях тела методом латексной агглютинации (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды):

- Streptococcus гр. B

- H. influenzae тип b

- N. meningitidis групп A, C, Y, W135

- N. meningitides гр. B/E.coli K1.

• Время реакции – 3 минуты
• Чувствительность – 97% *
• Специфичность – более 98%
• В состав набора входят все необходимые компоненты

*для Н. influenzae тип b

Набор Wellcogen для определения H. influenzae b/Wellcogen Haemophilus influenzae b Test Kit

Прямое определение антигенов в жидкостях тела (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды)

Набор Wellcogen для определения N. meningitidis A, C, Y, W 135/Wellcogen Neisseria meningitidis A, C, Y, W135 Test Kit

Прямое определение антигенов в жидкостях тела (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды)

Набор Wellcogen для определения N. meningitidis B/E. coli K1/Wellcogen Neisseria meningitidis B/E. coli K1

Прямое определение антигенов в жидкостях тела (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды)

Набор Wellcogen для определения стрептококков группы B/Wellcogen Strep B Rapid Latex Agglutination Test

Прямое определение антигенов в жидкостях тела (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды)

Набор Wellcogen для определения Streptococcus pneumoniaе/Wellcogen Streptococcus pneumoniae Test Kit

Прямое определение антигенов в жидкостях тела (цереброспинальной жидкости, сыворотке, моче, крови, культуре с питательной среды)

Streptococcus

Набор для диагностики стрептококков групп A, B, C, D, F и G /PathoDxtra Strep Grouping Kit

Быстрый тест для дифференциации групп стрептококков A, B, C, D, F и G по Лансфильду с первичных чашек с культурой.

• Мгновенная экстракция без инкубации для восстановления
• Работа напрямую с колониями, без разведения в пробирках
• Сокращение времени проявления результатов
• Не требует дополнительных реагентов
• Идентификация всех клинически значимых стрептококков, включая группу D
• Возможность дополнить набор наиболее расходуемыми реагентами

Набор для диагностики стрептококков групп A/PathoDxtra Strep Group A Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор для диагностики стрептококков групп B/PathoDxtra Strep Group B Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор для диагностики стрептококков групп C/PathoDxtra Strep Group C Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор для диагностики стрептококков групп D/PathoDxtra Strep Group D Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор для диагностики стрептококков групп F/PathoDxtra Strep Group F Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор для диагностики стрептококков групп G/PathoDxtra Strep Group G Latex

Предназначен только для использования с набором DR0700M

Набор Streptex для диагностики групп стрептококков A, B, C, D, F и G (ферментная экстракция)/Streptex

Набор для идентификации стрептококков групп A, B, C, D, F, G по Лансфильду с использованием ферментной экстракции

Набор для диагностики стрептококков групп A, B, C, F и G (кислотная экстракция)/Streptex Rapid

Набор для идентификации стрептококков групп A, B, C, F, G по Лансфильду с использованием кислотной экстракции

Набор для быстрой диагностики стрептококков групп A, B, C, F и G (кислотная экстракция)/Streptex Acid Extraction Kit

Набор для быстрой кислотной экстракции для использования с Streptex Rapid Latex Agglutination Test для идентификации стрептококков групп A, B, C, F, G по Лансфильду

Набор DrySpot для диагностики Streptococcus pneumonia/Pneumo

Сухой латексный тест для подтверждения Streptococcus pneumoniae в культурах на чашках или положительных культурах крови.

Staphylococcus и MRSA (метициллин-резистентный стафилококк)

Набор DrySpot для идентификации Staphylococcus aureus (MRSA)/Dryspot Staphytect Plus

Сухой латексный тест для идентификации S. aureus после первичного посева

Плазма кроличья для выявления коагулазы (лиофилизированная)/Coagulase Plasma (lyphohilized)

Реагент для выявления фермента коагулазы у стафилококков

Информация о документе
Дата добавления:
Размер:
Доступные форматы для скачивания:

В.В. Зайко, Л.П. Мартынкина, Н.А. Стериополо, О.С. Калачева,

В.А. Кутвицкий, А.Е. Туголуков, Е.Е. Егоров, С.Г. Волощук,

Р.Т. Тогузов, Т.А. Старовойтова, Ю.Ю. Венгеров

СИСТЕМА НА ОСНОВЕ СКАНЕРА ДЛЯ ДОКУМЕНТИРОВАНИЯ, ОБЪЕКТИВИЗАЦИИ И РЕГИСТРАЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ТЕСТОВ ЛАТЕКСНОЙ АГГЛЮТИНАЦИИ

Диагностические системы на основе латекс-агглютинации в настоящее время получили широкое распространение в лабораторной диагностике благодаря простоте и быстроте проведения анализа. Первые тесты агглютинационной экспресс-диагностики были разработаны для определения ревматоидного фактора с сенсибилизированными эритроцитами барана, однако достаточно скоро в практике вместо эритроцитов стали применять частицы латекса. В настоящее время разработаны методы получения латексных частиц различного состава, размеров, цвета и свойств, а также способы сенсибилизации латексов разнообразными антигенами и антителами [1]. Биологическая инертность латекса позволяет снизить возможность перекрестных неспецифических реакций, а также обеспечивает длительную сохранность готовых диагностикумов.

Наибольшее распространение получили тесты так называемой ревматоидной тройки: тесты для определения С-реактивного белка, ревматоидного фактора и антистрептолизина О, но также в лабораторной практике применяются латексные диагностикумы для определения продуктов деградации фибрина (FDP, D-Dimer), поверхностных антигенов гепатита В ((HBsAg), антител к Toxoplasma gondii, антигенов Treponema pallidum и кардиолипина, антиядерных антител к ДНК в сыворотке больных СКВ, гетерофильных антител, специфичных для инфекционного мононуклеоза, антител краснухи в сыворотке или плазме крови. Существует прямой латексный тест на беременность (определение хорионического гонадотропина) в моче, а также тесты для выявления менингококков в цереброспинальной жидкости, пневмококков, стрептококков в посевах на изолирующих средах, аденовируcов и ротавирусов в фекалиях, антиспермальных антител и некоторые другие.

Очевидные достоинства латексных тестов: высокая чувствительность, экспрессность, минимум реагентов, простота постановки реакции делают этот тест чрезвычайно привлекательным для лабораторной диагностики, особенно для малых и средних лабораторий.

Однако латексные тесты имеют ряд существенных недостатков, обусловленных нестабильностью результатов реакции. Необходимость визуальной регистрации результатов через строго определенное время (от 3-5 до 10-15 мин для разных тестов) приводит к субъективности оценки результатов. Невозможность объективного учета результата и сохранения его для последующих консультаций, ограничивает ценность и сужает область применения латексных тестов.

Задачи документирования результатов тестов латекс-агглютинации через определенное время и объективизации интерпретации результатов могут быть решены с привлечением видеоцифровой регистрации 7. В настоящей статье описывается применение разработанной нами сканерной системы для регистрации результатов тестов латекс-агглютинации при постановке реакции на крышках 96-луночных планшетов для ИФА . Описываемая система дает возможность получения первичного изображения всех тестов (до 96, включая контроли), поставленных на носителе. Программными методами обеспечивается возможность контрастирования, увеличения размеров, сопоставления изображений для индивидуальных образцов с контролями анализируемых образцов. Также с помощью специальных приемов обработки изображений можно получить и объективные цифровые значения, характеризующие интенсивность реакции. Эти цифры могут являться дополнительным ориентиром для оператора при регистрации результата.

Чрезвычайно важной для метода латексной агглютинации является возможность архивирования первичной информации и ретроспективной экспертной оценки правильности результата анализа в любой необходимый момент.

Материалы и методы . Образцы сыворотки крови были предоставлены 5 Клинико-диагностическим центром г. Москвы. Кровь была взята у пациентов, проходивших плановое обследование. Всего было исследовано 237 образцов на С-реактивный белок (СРБ), из них 63 были положительными и 174 – отрицательными. В 146 образцах определяли содержание ревматоидного фактора (РФ) (52 положительных и 94 отрицательных) и 77 образцов было проанализировано на наличие антистрептолизина-О (АСЛО) (17 положительных и 60 отрицательных).

Результаты и обсуждение. Ранее [2] авторами были представлены результаты работ по созданию специализированных систем видеоцифрового анализа для регистрации результатов самых распространенных иммунологических и клинических биохимических тестов с описанием идеологии и принципов конструирования приборов, подбора комплектующих, разработки программного обеспечения и приложений разработанной аппаратуры к конкретным анализам.

На рис. 1 представлено полученное с помощью сканера изображение лунок крышки 96-луночного планшета с тестируемыми сыворотками после проведения исследования на наличие СРБ.

Рис. 1. Изображение лунок крышки планшета, полученное с помощью сканера после проведения исследования на наличие СРБ.

Программные средства обработки позволяют заметно улучшить качество изображения, что позволяет более объективно оценить наличие и степень агглютинации. Программными средствами можно не только контрастировать, но и увеличить изображение одной или сразу нескольких лунок планшета. На увеличенном изображении ясно виден не только результат реакции агглютинации, но и характер конгломератов, который различен для разных латексов. На рис. 2 показано увеличенное изображение лунок с наличием и отсутствием агглютинации в тестируемых на РФ сыворотках, а также сравнение неконтрастированного (а) и контрастированного (б) изображений.

Рис. 2. Неконтрастированные (а) и контрастированные (б) изображения лунок с положительным и отрицательным результатом реакции латексной агглютинации при исследовании образцов на РФ.

Сравнивая агглютинацию в образцах с различными латексами, мы наблюдали образование разных по морфологии комплексов. Для СРБ характерны крупные хорошо различимые комплексы агглютинатов. Комплексы в системе определения РФ заметно менее контрастны, но тоже хорошо различимы. Агглютинаты в латексной системе исследований АСЛО очень мелкие, они хуже различимы при визуальной регистрации, но вполне хорошо видны после контрастирования изображений программными средствами.

На рис. 3 представлены изображения лунок с положительными образцами и, соответственно, с наличием агглютинации в системах для определения СРБ, РФ и АСЛО.

Рис. 3. Различный характер агглютинации в системах для определения а) СРБ, б) РФ и в) АСЛО.

При сомнительной картине агглютинации увеличенные изображения лунок с прореагировавшей тестируемой сывороткой можно сравнить с располагаемыми рядом на экране компьютера увеличенными изображениями лунок с контрольными образцами, чем достигается объективизация оценки результата реакции агглютинации (рис. 4).

Рис. 4. Сравнение изображения лунки с тестируемой сывороткой с изображениями лунок контрольны х образцов, где а) контрольный положительный образец, б) тестируемая сыворотка, в) контрольный отрицательный образец,

К этим неоспоримым преимуществам добавляются возможности математической обработки изображения. На рис. 5 представлены результаты цифровой обработки изображения нескольких лунок с положительными и отрицательными образцами сывороток при определении СРБ: контрастирование и последующее визуальное отображение количества конгломератов (агглютинатов) в тестируемых образцах, рассчитанное с помощью разработанных нами математических методов.

Рис. 5. Компьютерная программная обработка изображения.

а) изображение тестируемых сывороток, б) контрастированное изображение, в) визуальное представление результатов математической обработки изображения, отражающее количество конгломератов.

Результаты расчета количества конгломератов в образцах могут быть выражены с помощью числа, которое тем больше, чем больше обнаруженное количество конгломератов. Применение математического обсчета и численное представление интенсивности агглютинации дают возможность количественной оценки результата реакции агглютинации и определения порогового значения для дискриминации положительных и отрицательных образцов. Пороговое значение может быть задано как неким фиксированным числом, так и формулой, включающей численные значения отрицательных и положительных контролей с выбираемыми оператором коэффициентами.

Рис. 6. Количественная оценка результатов реакции агглютинации

Таким образом, информация о наличии или отсутствии агглютинации для конкретного образца с помощью предлагаемой системы видеорегистрации фиксируется и сопоставляется в различных видах. Это – 1) сопоставление контрастированых и увеличенных изображений образцов и контролей, 2) оценка визуального представления расчетного количества конгломератов; 3) численные расчетные значения интенсивности агглютинации и 4) дискриминация положительных отрицательных образцов на основе расчета порогового значения.

Компьютерная программа позволяет также ввести и сохранить протокол анализа (расположение контрольных и тестируемых образцов и их разведений и дублирование). На рис. 7 показан вариант заполнения протокола анализа.

Рис. 7. Заполнение протокола анализа.

В итоге, на основе сканера и компьютерной программы, мы получили систему быстрого считывания, распознавания, документирования, объективизации и регистрации результатов тестов латексной агглютинации.

Л И Т Е Р А Т У Р А

1.Пастер.Е.У., Овод В.В., Позур В.К., Вихоть Н.Е. Иммунология. Практикум. – К., Выща школа, 1989.

2. Папченко А.А., Старовойтова Т.А., Волощук С.Г., Максимова Е.В., Канорский С.И., Сорокин В.Н., Мартынкина Л.П., Венгеров Ю.Ю.// Клиническая лабораторная диагностика -1999.- N9.- C.50.

3. Венгеров Ю.Ю. // Клиническая лабораторная диагностика -2000.- N9.- С. 19.

4.Волощук С.Г., Старовойтова Т.А., Кутвицкий В.А., Туголуков А.Е., Зайко В.В., Стереополо Н.А., Егоров Е.Е., Барский В.Е., Мартынкина Л.П., Венгеров Ю.Ю . // Лабораторная медицина. – 2002. – №5. – С. 82-87.

5. Старовойтова Т.А., Зайко В.В., Волощук С.Г., Стереополо Н.А., Мартынкина Л.П., Савина Н.И., Зайцева Н.А., Венгеров Ю.Ю., Тогузов Р.Т // Материалы научно-практической конференции и школы-семинара для молодых ученых с международным участием. Астрахань-Москва, 2004, С. 15-20.

6. Зайко В.В., Старовойтова Т.А., Волощук С.Г., Стереополо Н.А., Мартынкина Л.П.,Кутвицкий В.А., Туголуков А.Е. Тогузов Р.Т., Венгеров Ю.Ю. // Клиническая лабораторная диагностика -2005.- N10.-C. 25-26.

7. Vengerov Y . Y ., Voloshuk S . G ., Barsky V . E ., Martynkina L . P ., Papchenko A . A ., Kanorskii S . I ., Sorokin V . N ., Maksimova E . V ., Butorin Y . V

1 st International Meeting on Imaging Technique in Planar Chromatography (ITPC’99), Jezersko (Slovenia), eds. Vovk I., Prosek M., Medja A., 1999, P.73-76.

Подписи к рисункам

Рис. 1. Изображение лунок крышки планшета, полученное с помощью сканера после проведения исследования на наличие СРБ.

Рис. 2. Неконтрастированные (а) и контрастированные (б) изображения лунок с положительным и отрицательным результатом реакции латексной агглютинации при исследовании образцов на РФ.

Рис. 3. Различный характер агглютинации в системах для определения а) СРБ, б) РФ и в) АСЛО.

Рис. 4. Сравнение изображения лунки с тестируемой сывороткой с изображениями лунок контрольны х образцов, где а) контрольный положительный образец, б) тестируемая сыворотка, в) контрольный отрицательный образец,

Рис. 5. Компьютерная программная обработка изображения.

а) изображение тестируемых сывороток, б) контрастированное изображение, в) визуальное представление результатов математической обработки изображения, отражающее количество конгломератов

Рис. 6. Количественная оценка результатов реакции агглютинации

Рис. 7. Заполнение протокола анализа.

Волощук Сергей Георгиевич

Мартынкина Лариса Павловна

119991 г. Москва,

В.В. Зайко, Л.П. Мартынкина, Н.А. Стериополо, О.С. Калачева,

В.А. Кутвицкий, А.Е. Туголуков, Е.Е. Егоров, С.Г. Волощук,

Р.Т. Тогузов, Т.А. Старовойтова, Ю.Ю. Венгеров

СИСТЕМА НА ОСНОВЕ СКАНЕРА ДЛЯ ДОКУМЕНТИРОВАНИЯ, ОБЪЕКТИВИЗАЦИИ И РЕГИСТРАЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ТЕСТОВ ЛАТЕКСНОЙ АГГЛЮТИНАЦИИ

Чрезвычайно важной для метода латексной агглютинации является возможность архивирования первичной информации и ретроспективной экспертной оценки правильности результата анализа в любой необходимый момент.

В составе нормальной микрофлоры слизистых оболочек верхних дыхательных путей (ВДП) здоровых детей часто обнаруживаются S. pneumoniae и H. influenzae. В то же время инфекции, обусловленные S. pneumoniae и H. influenzae, на сегодняшний день составляют актуальную проблему для органов здравоохранения, являясь причиной большинства случаев менингитов, внебольничных пневмоний и ряда гнойно-септических инфекций, которые часто осложняются бактериемией. В структуре младенческой смертности регионов России заболеваемость органов дыхания стоит на третьем месте (около 7 %), из неё около 74 % приходится на пневмонии, а уровень заболеваемости органов дыхания детей 0–14 лет в последние три года составляет около 59 % [8]. Величина бактериологически неподтвержденных случаев достигает 32 %. Доля пневмоний в смертности от всех болезней за последние 30 лет не имела тенденции к снижению. Эти данные косвенно свидетельствуют о распространении инфекций, вызванных пневмококком и палочкой инфлюэнцы.

Цель исследования оценка распространённости носительства S. pneumoniae и H. influenzae среди детского населения Пензы, страдающего хроническими заболеваниями ВДП, и проведение микробиологического мониторинга за выделенными штаммами. Оптимизация этиотропной антибиотикотерапии.

Материал и методы исследования

Исследовалась слизь (381 образец), взятая ватным тампоном с задней стенки глотки по общепринятой методике. Изучено 254 штамма S. pneumoniae и 85 штаммов H. influenzae, изолированных из биосубстратов больных детей.

Выделение H. influenzae осуществляли с использованием селективной среды Chocolate Haemophilus agar 2 (bioMerieux, Канада), S. pneumoniae – традиционным методом на кровяном агаре. Идентификацию штаммов микроорганизмов проводили по морфологическим, культуральным, фенотипическим, биохимическим характеристикам на коммерческих тест-системах APINH, API 20 Strep. Для определения принадлежности культур к S. pneumoniae применяли иммунологический метод – реакцию латекс-агглютинации, используя сенсибилизированный латекс Slidexpneumo-Kit. Определение чувствительности к антибиотикам проводилось модифицированным методом серийных разведений, основанным на использовании двух концентраций антибиотика, соответствующих пограничным значениям (breakpoints) на тест-системах ATB HAEMO, ATB STREP 5 (bioMerieux, Канада) и диско-диффузионным методом.

Результаты исследования и их обсуждение

Обследование больных (381 ребёнок) выявило высокую частоту выделения S. pneumoniae (66,7 %) из зева. В возрастных группах данный возбудитель распределился следующим образом: > 2–3 года – 62,0 %; > 3–4 года – 62,1 %; > 4–8 лет – 69,9 %, 9–14 лет – 68,4 %. В группе > 4–8 лет S. pneumoniae незначительно преобладал на фоне показателей других возрастных групп. По данным других исследователей носительство S. pneumoniae среди здоровых детей в аналогичных группах отмечалось на уровне 18,2; 18,2; 13,9; 13,0 % [2]. Таким образом, по нашим данным, среди хронически больных детей носительство S. pneumoniae наблюдается намного чаще.

Исследования последних лет определяют носительство S. pneumoniae у детей в пределах от 20 до 50 % , в организованных коллективах – до 80 % без учёта хронической патологии. Значительное повышение выявляемости носительства S. pneumoniae в настоящее время связано с внедрением новых диагностических подходов, включая полимеразную цепную реакцию и различные серологические тесты, охватывающие все известные капсульные варианты пневмококка [8].

Из ротоглотки больных детей параллельно было изолировано 85 штаммов H. influenzae. Их удельный вес по возрастным группам > 2–3 года, > 3–4 года, > 4–8 лет, 9–14 лет составил соответственно 30,4; 36,4; 20,2; 15,2 %. Выявлено преобладание носительства H. influenzae в группах до 4 лет, что коррелирует с данными других авторов [1, 2]. Типирование H. influenzaе показало, что преобладали II и III биотипы, составившие соответственно 36,8 и 31,5 %. У других исследователей эти же биотипы преобладали среди здоровых носителей и на их долю приходилось 39,8 и 26,8 % соответственно, а на I биотип – 12,2 % [1]. В нашем случае I биотип составил 26,3 % от выделенных штаммов. Определено, что подавляющее большинство капсульных изолятов принадлежит к I и II биотипам, бескапсульных – к биотипам II и III, а штаммы серологической группы b (ведущей в этиологии гнойно-септических воспалений) – к I и II биотипам. Но снижение мукоцилиарного клиренса при хронических процессах может способствовать колонизации ротоглотки капсульными вариантами. Таким образом, по высокому уровню носительства I и II биотипов H.influenzaе в нашем исследовании можно судить об их причастности к формированию хронических воспалительных очагов ВДП.

В структуре изученной микрофлоры ротоглотки 78,4 % составили пять видов микроорганизмов, при этом S. pneumoniae – 34,1 %, Staphylococcus aureus – 22,4 %, H. influenzae – 11,4 %, Haemophilus parainfluenzae – 7,0 %, Streptococcus pyogenes – 3,5 %. Этими бактериями чаще всего формировались микробные ассоциации: S. pneumoniae + S. aureus – 15,2 %, S. pneumoniae + H. influenza – 10,7 %, S. pneumoniae + H. influenzae + S. aureus – 7,4 %, S. pneumoniae + H. parainfluenzae – 6,1 %, S. pneumoniae + H. parainfluenzae + S. aureus – 4,9 %, S. pneumoniae + S. pyogenes 2,4 %, H. influenzae + S. aureus – 2,4 %, т.е. 49 % от всех выделенных ассоциаций.

Коэффициент Жаккарда для симбиозов S. pneumoniae + S. aureus составил 45 %; S. pneumoniae + H. influenza – 40 %; S. pneumoniae, H. influenzae + S. aureus – 37 %. Т.е. выявлена высокая способность к формированию ассоциаций S.pneumoniae с H.influenza и S. aureus, что является показателем экологического сходства этих микроорганизмов.

В зеве больных (35,4 %) обнаруживались монокультуры: S. pneumoniae 51,1 %, S. aureus 23,7 %, H. influenzae 5,9 %, S. pyogenes 5,2 %, другие микроорганизмы 14,1 %. Присутствие патогенов в монокультуре и формирование ими устойчивых ассоциаций, являются проявлениями не только дисбиотических нарушений, но и признаками инфекционного процесса [3, 6, 7]

Исследование чувствительности к антибиотикам штаммов S. pneumoniае выявило высокую резистентность к пенициллинам (МПК > 0,063 мг/л) – 37,4 %, к макролидам – 17,1 % (к азитромицину 15 %, к эритромицину 57,14 %), к тетрациклинам – 42,8 %, ко-тримоксазолу – 51,72 %, хлорамфениколу – 27,6 %. В то же время при проведении многоцентрового исследования в России уровень устойчивости пневмококков, выделенных из нестерильных локусов к пенициллинам (МПК > 0,06 мг/л), составляет в среднем 11 %, к макролидам – 7 %, к тетрациклинам – 25 %, ко-тримоксазолу – 39 % [8].

Анализ антибиотикорезистентности выделенных культур H. influenzae к антибиотикам выявил большое количество штаммов, продуцирующих β-лактамазы. При этом резистентность к ампициллину составила 50,0 %, к амоксициллину – клавуланату – 15,8 %, к цефаклору – 16,1 %, цефуроксиму – 15,8 %. Штаммы, определявшиеся как устойчивые к цефаклору и цефуроксиму на тест-системе АТВ HAEMO, рассматривались как штаммы с пониженной чувствительностью к β-лактамам, не обусловленной продукцией β-лактамаз. Уровень устойчивости к тетрациклинам составил 21,4 %, ко-тримоксазолу – 16,9 %, хлорамфениколу – 7,1 %. Высокая резистентность S. pneumoniae и H. influenzae к β-лактамам является следствием их широкого применения в эмпирической терапии.

В ВДП здорового ребёнка создаются условия для естественной иммунизации организма этой флорой. При хроническом заболевании механизмы противоинфекционной защиты организма хозяина нарушаются, бактерии адаптируются в нём, являясь причиной воспаления или поддержания его, и создают тем самым оптимальные условия собственного существования. В патологически изменённой слизистой зева, как правило, выявляются стафилококки, стрептококки, энтеробактерии, обладающие признаками патогенности, и поэтому они расцениваются как этиологически значимые агенты заболевания [2, 4, 7].

Проведённые исследования свидетельствуют о высоком уровне обсеменённости ротоглотки детей Пензы пневмококком и палочкой инфлюэнцы при хронических воспалительных процессах ВДП. На примере детской популяции города показано, что носительство S. pneumoniae и H. influenzae среди больных хроническими воспалительными процессами ВДП носит закономерный характер, характеризуясь высокой встречаемостью во всех возрастных группах от 2 до 14 лет и непосредственным участием в патогенезе поражения слизистых оболочек ВДП. Частота выделения H. influenzae в большей степени зависела от возраста детей, чем обнаружение S. pneumoniae. В очагах поражения часто формируются ассоциации УПМ, имеющие определённый видовой состав. Это обстоятельство затрудняет этиологическую расшифровку заболеваний. Оценить роль каждого из выделенных микроорганизмов в развитии и поддержании инфекционного процесса – проблематичная задача для клиницистов, так как сопряжена с назначением адекватной этиотропной и антибактериальной терапии.

Неэффективность лечения хронического воспаления ВДП β-лактамными антибиотиками связана с высокой резистентностью к ним штаммов S. pneumoniae, H. influenzae, часто выделяемых из очагов поражения. В терапии заболеваний ВДП назначение препаратов пенициллинового ряда, как правило, направлено против S. pyogenes как типичного возбудителя заболеваний ВДП, который имеет природную чувствительность ко всем β-лактамным антибиотикам. Наши исследования выявили низкую встречаемость (3,5 %) S. pyogenes в ротоглотке больных детей. Эти обстоятельства ставят под сомнение целесообразность пенициллиновой эмпирической антибиотикотерапии. Кроме того, применение в лечении хронического процесса одного класса антибиотиков не всегда приводит к положительному результату из-за выделения возбудителей в ассоциациях, состоящих из грамположительной и грамотрицательной флоры, у которых различно отношение к антибактериальным препаратам.

Успех борьбы с инфекцией в том числе и решение проблемы специфической профилактики, которая признана действенным методом борьбы с пневмококковой инфекцией и заболеваниями, вызванными палочкой инфлюэнцы типа b, определяется не только глубиной представлений о биологии возбудителя, но и уровнем лабораторной диагностики в лечебно-профилактических учреждениях и обязательным этиологическим исследованием различных биосубстратов клиницистами.

2. Для хронических заболеваний ВДП детей установлены наиболее характерные ассоциации условно патогенных микроорганизмов, которые в своём большинстве включали S. pneumoniae и H. influenzаe. Эти данные в каждом конкретном случае заболевания должны учитываться при назначении этиотропного лечения, а общие закономерности определять тенденции эмпирической терапии.

3. Обнаружена высокая резистентность S. pneumoniae, H. influenzae к β-лактамам, ко-тримоксазолу, хлорамфениколу, тетрациклину.

Рецензенты: