Расшифровка чувствительности к инфекции
Решедько Галина Константиновна,
к.м.н., ассистент кафедры клинической фармакологии
Смоленской государственной медицинской академии
214019, г.Смоленск, ул.Крупской, 28, а/я № 5.
Тел.: +7(0812) 61 13 01, 61 13 27, Факс: (0812) 61 12 94,
E-Mail: galina@antibiotic.ru
В лекции рассмотрены основные методы определения чувствительности in vitro микроорганизмов к антимикробным препаратам (диско-диффузионный, Е-тестов, методы разведения). Отражены подходы к эмпирическому и этиотропному назначению антибиотиков в клинической практике. Обсуждены вопросы интерпретации результатов определения чувствительности с клинической и микробиологической точек зрения.
В настоящее время в клинической практике существуют два принципа назначения антибактериальных препаратов: эмпирическое и этиотропное. Эмпирическое назначение антибиотиков основано на знаниях о природной чувствительности бактерий, эпидемиологических данных о резистентности микроорганизмов в регионе или стационаре, а также результатах контролируемых клинических исследований. Несомненным преимуществом эмпирического назначения химиопрепаратов является возможность быстрого начала терапии. Кроме того, при таком подходе исключаются затраты на проведение дополнительных исследований.
|
Однако при неэффективности проводимой антибактериальной терапии, при нозокомиальных инфекциях, когда затруднительно предположить возбудителя и его чувствительность к антибиотикам стремятся проводить этиотропную терапию. Этиотропное назначение антибиотиков предполагает не только выделение возбудителя инфекции из клинического материала, но и определение его чувствительности к антибиотикам. Получение корректных данных возможно только при грамотном выполнении всех звеньев бактериологического исследования: от взятия клинического материала, транспортировки его в бактериологическую лабораторию, идентификации возбудителя до определения его чувствительности к антибиотикам и интерпретации полученных результатов.
|
Вторая причина, обусловливающая необходимость определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам - это получение эпидемиологических данных о структуре резистентности возбудителей внебольничных и нозокомиальных инфекций. В практике эти данные используют при эмпирическом назначении антибиотиков, а также для формирования больничных формуляров.
Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам делятся на 2 группы: диффузионные и методы разведения.
|
При определении чувствительности диско-диффузионным методом на поверхность агара в чашке Петри наносят бактериальную суспензию определенной плотности (обычно эквивалентную стандарту мутности 0,5 по McFarland) и затем помещают диски, содержащие определенное количество антибиотика. Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста микроорганизмов вокруг дисков. После инкубации чашек в термостате при температуре 35 о -37 о С в течение ночи учитывают результат путем измерения диаметра зоны вокруг диска в миллиметрах (рис. 1).
Рисунок 1. Определение чувствительности микроорганизмов диско-диффузионным методом.
Определение чувствительности микроорганизма с помощью Е-теста проводится аналогично тестированию диско-диффузионным методом. Отличие состоит в том, что вместо диска с антибиотиком используют полоску Е-теста, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной (рис. 2). В месте пересечения эллипсовидной зоны подавления роста с полоской Е-теста получают значение минимальной подавляющей концентрации (МПК).
Рисунок 2. Определение чувствительности микроорганизмов с помощью Е-тестов.
Несомненным достоинством диффузионных методов является простота тестирования и доступность выполнения в любой бактериологической лаборатории. Однако с учетом высокой стоимости Е-тестов для рутинной работы обычно используют диско-диффузионный метод.
Методы разведения основаны на использовании двойных последовательных разведений концентраций антибиотика от максимальной к минимальной (например от 128 мкг/мл, 64 мкг/мл, и т.д. до 0,5 мкг/мл, 0,25 мкг/мл и 0,125 мкг/мл). При этом антибиотик в различных концентрациях вносят в жидкую питательную среду (бульон) или в агар. Затем бактериальную суспензию определенной плотности, соответствующую стандарту мутности 0,5 по MсFarland, помещают в бульон с антибиотиком или на поверхность агара в чашке. После инкубации в течение ночи при температуре 35 о -37 о С проводят учет полученных результатов. Наличие роста микроорганизма в бульоне (помутнение бульона) или на поверхности агара свидетельствует о том, что данная концентрация антибиотика недостаточна, чтобы подавить его жизнеспособность. По мере увеличения концентрации антибиотика рост микроорганизма ухудшается. Первую наименьшую концентрацию антибиотика (из серии последовательных разведений), где визуально не определяется бактериальный рост принято считать минимальной подавляющей концентрацией (МПК). Измеряется МПК в мг/л или мкг/мл (рис. 3).
|
Рисунок 3. Определение значения МПК методом разведения в жидкой питательной среде.
На основании получаемых количественных данных (диаметра зоны подавления роста антибиотика или значения МПК) микроорганизмы подразделяют на чувствительные, умеренно резистентные и резистентные (рис. 4). Для разграничения этих трех категорий чувствительности (или резистентности) между собой используют так называемые пограничные концентрации (breakpoint) антибиотика (или пограничные значения диаметра зоны подавления роста микроорганизма).
Рисунок 4. Интерпретация результатов определения чувствительности бактерий в соответствии со значениями МПК.
Пограничные концентрации не являются неизменными величинами. Они могут пересматриваться, в зависимости от изменения чувствительности популяции микроорганизмов. Разработкой и пересмотром критериев интерпретации занимаются ведущие специалисты (химиотерапевты и микробиологи), входящие в специальные комитеты. Одним из них является Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам США (National Committee for Clinical Laboratory Standards - NCCLS). В настоящее время стандарты NCCLS признаны в мире и используются как международные для оценки результатов определения чувствительности бактерий при многоцентровых микробиологических и клинических исследованиях.
Существуют два подхода к интерпретации результатов определения чувствительности: микробиологический и клинический. Микробиологическая интерпретация основана на анализе распределения значений концентраций антибиотика, подавляющих жизнеспособность бактерий. Клиническая интерпретация основана на оценке эффективности антибактериальной терапии.
Клинически к чувствительным относят бактерии (с учетом параметров, полученных in vitro), если при лечении стандартными дозами антибиотика инфекций, вызываемых этими микроорганизмами, наблюдают хороший терапевтический эффект.
При отсутствии достоверной клинической информации подразделение на категории чувствительности базируется на совместном учете данных, полученных in vitro, и фармакокинетики, т.е. на концентрациях антибиотика, достижимых в месте инфекции (или в сыворотке крови).
К резистентным (устойчивым) относят бактерии, когда при лечении инфекции, вызванной этими микроорганизмами, нет эффекта от терапии даже при использовании максимальных доз антибиотика. Такие микроорганизмы имеют механизмы резистентности.
Клинически промежуточную резистентность у бактерий подразумевают в случае, если инфекция, вызванные такими штаммами, может иметь различный терапевтический исход. Однако лечение может быть успешным, если антибиотик используется в дозировке, превышающей стандартную, или инфекция локализуется в месте, где антибактериальный препарат накапливается в высоких концентрациях.
С микробиологической точки зрения к бактериям с промежуточной резистентностью относят субпопуляцию, находящуюся в соответствии со значениями МПК или диаметра зон, между чувствительными и резистентными микроорганизмами. Иногда штаммы с промежуточной резистентностью и резистентные бактерии объединяют в одну категорию резистентных микроорганизмов.
Необходимо отметить, что клиническая интерпретация чувствительности бактерий к антибиотикам является условной, поскольку исход терапии не всегда зависит только от активности антибактериального препарата против возбудителя. Клиницистам известны случаи, когда при резистентности микроорганизмов, по данным исследования in vitro, получали хороший клинический эффект. И наоборот, при чувствительности возбудителя может наблюдаться неэффективность терапии.
В определенных клинических ситуациях, когда недостаточно результатов исследования чувствительности обычными методами, определяют минимальную бактерицидную концентрацию.
Минимальная бактерицидная концентрация (МБК) - наименьшая концентрация антибиотика (мг/л или мкг/мл), которая при исследовании in vitro вызывает гибель 99,9% микроорганизмов от исходного уровня в течение определенного периода времени.
|
Значение МБК используют при терапии антибиотиками, обладающими бактериостатическим действием, или при отсутствии эффекта от антибактериальной терапии у особой категории больных. Частными случаями для определения МБК могут быть, например, бактериальный эндокардит, остеомиелит или генерализованные инфекции у пациентов с иммунодефицитными состояниями.
В заключение хотелось бы отметить, что на сегодняшний день не существует методов, которые позволили бы с абсолютной достоверностью прогнозировать клинический эффект антибиотиков при лечении инфекционных болезней. Однако, данные результатов определения чувствительности могут служить хорошим ориентиром клиницистам для выбора и коррекции антибактериальной терапии.
Таблица 1. Критерии интерпретации чувствительности бактерий
Врачи различных специальностей получают множество сведений о состоянии здоровья пациентов не только из его жалоб и полученных во время осмотра данных. Ценную информацию дают современные микроскопические исследования (бактериоскопия) — анализы на микрофлору. Их результаты можно получить довольно быстро, при этом мазки на микрофлору позволяют оценить функциональное состояние органов и систем, выявить заболевания или определить, насколько эффективно лечение.
Анализ мазка на микрофлору: что это и зачем он нужен?
Мазок на микрофлору — это бактериоскопический метод исследования биологического материала. К его основным преимуществам относят доступность и быстроту получения результата. Делается он очень просто: врач аккуратно собирает отделяемое со слизистой оболочки. После этого полученный материал может быть окрашен, обработан солевым раствором или раствором КОН, а затем он тщательно изучается под микроскопом.
Сдав мазок на микрофлору, можно выявить бактерии, грибы и простейшие. Но не всегда можно верно определить их род и вид, ведь они часто бывают схожи или меняются под действием лекарств и других факторов, иногда их концентрация может быть недостаточной. А вот узнать количество микроорганизмов, оценить их форму, размеры и расположение при проведении такого анализа вполне реально. Это позволит получить представление о функциональном состоянии различных органов, оценить наличие или отсутствие воспалительного процесса и степень его выраженности, даже если он протекает без особых проявлений.
Кроме изучения под микроскопом, собранный биологический материал может быть использован для бактериологического анализа-посева на микрофлору. Это лабораторное исследование поможет максимально точно выявить возбудителей инфекций, их пропорциональное соотношение и даже чувствительность к тем или иным антибиотикам.
Существует несколько видов такого лабораторного исследования:
1. Гинекологический мазок на микрофлору . Биоматериалом для проведения гинекологической бактериоскопии служит отделяемое со слизистой влагалища, мочеиспускательного канала или шейки матки.
Показаниями к проведению анализа на микрофлору у женщин являются:
- боли внизу живота при мочеиспускании;
- зуд или жжение во влагалище;
- наличие выделений из влагалища;
- раздражение в области половых органов;
- длительный прием антибиотиков.
Это исследование требуется проходить женщинам при планировании беременности и/или в случаях, когда повышен риск заражения инфекциями, передающимися половым путем.
2. Мазок на микрофлору у мужчин . У мужчин материалом для исследования является секрет предстательной железы, сперма и соскоб из уретры.
Такой анализ, как мазок на микрофлору из уретры назначается всем без исключения при обращении к врачу урологического отделения или венерологу при профилактическом осмотре. Он необходим при:
- наличии непривычных выделений из наружного отверстия мочеиспускательного канала;
- подозрении бесплодия;
- ощущении боли или дискомфорта в мочеиспускательном канале;
- любом заболевании, передающимся половым путем.
3. Мазок из носа и зева на микрофлору . Материалом для проведения анализа на микрофлору из зева или носа является отделяемое со слизистой оболочки этих органов.
Назначается он при:
- ангине с налетом, стенозирующем ларинготрахеите, гнойных образованиях рядом с миндалинами или мононуклеозе на фоне инфекции;
- туберкулезе;
- рините, синусите и фарингите;
- частом насморке или болезнях горла.
Мазок изо рта на микрофлору — это еще и обязательный анализ при подозрении на дифтерию или коклюш.
4. Мазок из уха на микрофлору . Мазок на микрофлору из уха назначают при наружных, средних и внутренних отитах гнойного или серозного характера, так как данный анализ показывает, что вызвало заболевание и какой следует назначить антибиотик. Материал берется только со слизистой наружного уха.
Результаты посева мазка на микрофлору будут достоверными и информативными в том случае, если пациент соблюдает правила подготовки к забору биологического материала, а процедура выполнена врачом правильно.
Мазок на микрофлору в гинекологии проводится только в то время, когда у женщины нет менструального кровотечения. За 1–2 дня перед этим анализом нельзя:
- вступать в половой контакт;
- делать спринцевания;
- пользоваться лубрикантами;
- принимать ванную.
В день проведения гинекологической бактериоскопии не желательно мыть наружные половые органы, используя моющие средства, а за 2–3 часа до анализа их не рекомендуется даже мочить.
Если врач-уролог назначил мужчине проведение мазка из мочеиспускательного канала, ему следует:
- за 1–2 дня до проведения исследования отказаться от половых контактов;
- вечером накануне взятия биоматериала провести гигиену наружных половых органов;
- за 2–3 часа до визита к врачу постараться не мочиться;
- за 7 дней до обследования прекратить прием лекарств, использование которых не согласовывалось с врачом.
Забор мазка на микрофлору из мочеиспускательного канала мужчины длится всего 2–3 минуты. В мочеиспускательный канал вводится специальный зонд на глубину 4–5 сантиметров и извлекается вращательными движениями.
Довольно часто мазок из зева на микрофлору дает ложный результат. Это связано с тем, что пациент нарушает правила подготовки к исследованию. А ведь они очень просты! Во время подготовки к сдаче мазка из зева на микрофлору нужно:
- ничего не есть до обследования;
- за 2 часа до анализа ничего не пить;
- не чистить зубы и не полоскать горло до забора материала.
Также, перед тем как сдавать мазок из зева на микрофлору, нельзя использовать растворы для полоскания горла или спреи, содержащие противомикробные средства или антибиотики. Сама процедура получения образца биологического материала безболезненна и проста. Берется он ватной палочкой, которая вводится в рот и осторожно прижимается к поверхности задней стенки глотки и миндалин.
За несколько суток до проведения анализа из носа на микрофлору нужно исключить применение растворов и мазей для носа, содержащих антибиотики. Биологический материал извлекается ватной палочкой и наносится на предметное стекло.
Анализ на микрофлору из уха точно и достоверно показывает, что вызвало отит, если проводится до начала антибактериальной терапии. Мазок берется ватной палочкой и наносится перекатыванием на предметное стекло. Каждое стекло маркируется, чтобы можно было различить исследование, взятое из левого и правого уха.
Цена анализа на микрофлору у женщин невысокая по сравнению с другими комплексными гинекологическими обследованиями. Но при этом анализ позволяет выявить:
- бактериальный вагиноз;
- аэробный и атрофический вагинит;
- кандидоз;
- воспаление, вызванное гонореей или трихомониазом;
- другие заболевания.
В результатах лабораторного исследования гинекологического мазка на флору указываются следующие данные:
Мазок на микрофлору у мужчин помогает выявить уретрит, простатит, хламидиоз, гонорею, трихомониаз, уреапламоз и микоплазмоз. В расшифровке результата встречаются:
- лейкоциты — присутствие лейкоцитов допустимо в количестве не более 5-ти. Показатели выше нормы свидетельствуют о наличии воспалительного процесса, простатита или уретрита.
- эпителий — если эпителия в мазке более 10-ти, в мочеиспускательном канале проходит воспалительный процесс.
- гонококки — их присутствие в мазке свидетельствует о гонорее.
- прочие кокки (стрептококки, стафилококки или энтерококки) — в большой концентрации они являются признаком уретрита.
- трихомонады — их выявление является подтверждением трихомониаза.
В результатах мазка из уха дается информация о количестве условно-патогенных микроорганизмов (стрептококков, стафилококков или энтерококков) и дрожжеподобных грибов. Нормальный показатель — не более 10 4 КОЕ/тампон.
В мазке из носа или зева на микрофлору обычно обнаруживаются такие организмы, как:
- коринобактерии дифтерии;
- гемолитические стрептококки;
- пневмококки;
- золотистый стафилококк;
- менингококк;
- гемофильная палочка;
- листерия;
- другие микробы.
Если их содержание не превышает 10 4 КОЕ/мл, нет никакой необходимости проводить профилактическое лечение, чтобы очистить от них горло или нос.
Итак, мазок на микрофлору — достоверный и простой метод диагностирования различных заболеваний с широким спектром применения. Но только при верной расшифровке, которую может дать квалифицированный врач, лабораторные данные такого исследования дадут возможность поставить верный диагноз, подобрать соответствующее лечение и предотвратить переход болезней в хроническую форму.
Если заболевание имеет бактериальную природу…
В практике работы медицинских учреждений анализ на чувствительность к антибиотикам считается обязательным, если у врача появилось подозрение, что заболевание пациента имеет бактериальную природу. Анализ на чувствительность к антибиотикам – это лабораторный способ выявления препарата, который будет оказывать наибольшее действие на патогенную флору в данном конкретном случае болезни.
Как правило, в таких случаях речь идет о диско-диффузионном методе – одном из старейших в арсенале бактериологов, однако и сегодня остающемся наиболее распространенном при оценке антибиотикочувствительности. Прежде всего – потому, что он подходит для исследования большинства патогенов, в том числе и для наиболее распространенных бактерий со сложными питательными потребностями. Универсальным данный метод считается не только потому, что он оптимален для широкого круга антимикробных препаратов, но и потому, что не требует обязательного использования специального оборудования.
Определение чувствительности микроорганизмов – возбудителей инфекционных заболеваний человека к антибактериальным препаратам приобретает все более важное значение в связи с появлением и широким распространением антибактикорезистентности у бактерий. В ходе повседневной деятельности в бактериологических лабораториях из различных биологических материалов и объектов внешней среды выделяют множество бактерий. Однако определение чувствительности выделенных микроорганизмов к антибактериальным препаратам показано далеко не во всех случаях.
Если говорить непосредственно о пациентах, то определение чувствительности нужно, чтобы избежать устойчивости бактерий к лечению. Если пациента недавно лечили антибиотиками, и теперь вновь необходим повторный курс, то требуется замена препарата. Это позволит использовать меньшие дозы лекарства и не вызывать мутации у возбудителя. В гнойных хирургических отделениях антибиотики меняют каждые два-три месяца.
Данный анализ необходим еще в том случае, если на основную группу антибиотиков у больного возникает аллергическая реакция. На языке профессионалов обязательному исследованию на чувствительность к антибактериальным препаратам подлежат все микроорганизмы, выделенные из первично стерильных жидкостей, органов и тканей человека. В остальных случаях оценке чувствительности должна предшествовать оценка клинической значимости микроорганизма. Исследованию по оценке антибиотикочувствительности подлежат чистые культуры микроорганизмов или материал изолированных колоний с плотных питательных сред после первичного посева образца клинического материала с последующей идентификацией культуры.
Выбранная питательная среда готовится в соответствии с рецептурой. Перед работой необходимо проконтролировать отсутствие конденсата жидкости на внутренней поверхности крышек чашек Петри.
Для определения чувствительности диско-диффузионным методом следует использовать только стандартизированные качественные диски. Чтобы результаты исследования были достоверными, важно строго соблюдать и правила хранения и использования коммерческих дисков – в противном случае содержание в них антибиотиков может оказаться ниже допустимого уровня еще до истечения срока годности.
Небольшие партии, которые используются в повседневной работе, можно хранить в холодильнике при температуре 4-8 градусов по Цельсию, плотно укупоренными так, чтобы гарантировать невозможность попадания во флаконы влаги, кроме того, для дополнительной защиты от влаги во флаконах с дисками коммерческого изготовления содержится специальный влагопоглотитель. Флаконы с дисками следует извлекать из холодильника за 1 час до начала работы и выдерживать герметично закрытыми до достижения ими комнатной температуры.
Общим и принципиально важным для всех методов тестирования является стандартизация суспензии исследуемого микроорганизма. Бактериальную суспензию готовят либо из бульонной, либо из агаровой культуры. Для приготовления инокулюма используют чистую суточную культуру микроорганизмов, выросших на плотных питательных средах. Отбирают несколько однотипных, четко изолированных колоний, выросших на неселективных плотных питательных средах. Петлей переносят незначительное количество материала с верхушек колоний в пробирку со стерильным физиологическим раствором или питательным бульоном, доводя плотность инокулюма точно до 0,5 по стандарту МакФарланда. Инокулюм следует использовать в течение 15 минут после приготовления.
Наиболее удобным способом инокуляции является использование стерильных ватных тампонов. Тампон необходимо погрузить в приготовленную суспензию микроорганизма, затем избыток инокулюма удалить, отжав тампон о стенки пробирки. Инокуляцию проводят равномерно штриховыми движениями на всю поверхность агара таким образом, чтобы штрихи плотно прилегали друг к другу, поворачивая чашку Петри на 60 градусов. Приоткрытые чашки подсушивают при комнатной температуре в течение 10-15 минут.
Не позднее чем через 15 мин после инокуляции на поверхность питательной среды наносят диски с АБП. Аппликацию дисков проводят с помощью стерильного пинцета или автоматического диспенсера. Расстояние от диска до края чашки и между дисками должно быть 15-20 мм. Таким образом, на одну чашку диаметром 100 мм следует помещать не более 6 дисков с АБП. Диски должны равномерно контактировать с поверхностью агара, для чего их следует аккуратно прижать пинцетом.
Непосредственно после аппликации дисков чашки Петри помещают в термостат кверху дном и инкубируют при температуре 35 °С в течение 18-24 ч (в зависимости от вида тестируемого микроорганизма). Увеличение интервала времени между нанесением дисков на поверхность среды и началом инкубации (а соответственно – началом роста исследуемой культуры микроорганизма) приводит к "преддиффузии" АБП в агар и к увеличению диаметра зоны подавления роста.
После окончания инкубации чашки помещают кверху дном на темную матовую поверхность так, чтобы свет падал на них под углом в 45° (учет в отраженном свете). Диаметр зон задержки роста измеряют с точностью до 1 мм.
При измерении зон задержки роста следует ориентироваться на зону полного подавления видимого роста. Не следует обращать внимания на очень мелкие колонии, выявляемые в пределах зоны задержки роста только при особых условиях освещения или увеличении, и едва заметный налет у края зоны. Исключение составляют случаи учета результатов определения чувствительности стафилококков к оксациллину, когда необходимо учитывать и самые мелкие колонии, выявляемые в пределах четкой зоны подавления роста.
Крупные колонии, выявляемые в пределах четкой зоны подавления роста, свидетельствуют о наличии посторонней микрофлоры или о гетерорезистентности популяции микроорганизмов, в этом случае необходимо повторить идентификацию микроорганизма, формирующего эту колонию, и определение чувствительности этого штамма.
Условно все микроорганизмы можно разделить на три группы. Деление основывается на устойчивости к антибиотику. Выделяют чувствительные возбудители, умеренно устойчивые возбудители и устойчивые возбудители. Антибиотикограмма (расшифровка латинских букв) говорит о следующем: R – возбудитель, устойчивый к препарату; I – микроорганизм проявляет умеренную устойчивость; S – бактерия, чувствительная к данному антибиотику.
Номенклатура МЗРФ (Приказ №804н): A26.20.008.008 "Микробиологическое (культуральное) исследование отделяемого из уретры на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы с определением чувствительности к антибактериальным препаратам"
Биоматериал: Соскоб из уретры
Срок выполнения (в лаборатории): 6 р.д. *
Описание
Метод диагностики инфекций мочеполовых органов (уретрит), вызванных аэробными (стафило-, стрепто- и энтерококками, энтеробактериями, неферментирующими бактериями, коринеформными бактериями и др.) и анаэробными (клостридиями, бактероидами, пептококками, фузобактериями и др.) условно-патогенными возбудителями. Исследование заключается в количественном посеве патологического материала (отделяемое половых органов) на питательные среды, инкубацией чашек с питательными средами в аэробных и анаэробных условиях с последующим выделением возбудителей инфекции, определением их концентрации (КОЕ/мл) и чувствительности к антибиотикам. Как правило, причинно-значимым возбудителем инфекции мочеполовых органов считается микроорганизм, выделенный из клинического образца в концентрации 10 4 - 10 5 и выше КОЕ/мл.
Специфические возбудители инфекций половых органов (хламидии, гонококки, трихомонады и др.) в данном исследовании не выявляются и требуют специальных методов исследования.
Чувствительность микроорганизмов к антимикробным препаратам производится только при выделении из патологического материала причинно-значимого возбудителя в соответствующей концентрации. Микроорганизмы, выделенные из исследуемых образцов в концентрации менее 10 4 КОЕ/мл, возбудителями не являются и не требуют определения.
Внимание!
При обнаружении роста представителей нормальной бактериальной флоры, свойственной материалу и месту локализации вне зависимости от ее концентрации, чувствительность к антибиотикам и бактериофагам не проводится.
При обнаружении условно-патогенной микрофлоры в диагностически не значимом низком титре или выделении микрофлоры ниже установленного референсного интервала, определение чувствительности к антибиотиками и бактериофагам не проводится (основание Приказ МЗ № 535 от 24.04 1985 г «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений).
На данное исследование скидки не предоставляются (см. Положение о скидках)
Показания к назначению
- выявление возбудителя инфекционного заболевания;
- подбор рациональной антимикробной терапии;
- оценка эффективность проводимой терапии.
Подготовка к исследованию
При исследовании отделяемого из уретры, сбор материала проводят до мочеиспускания или не ранее, чем через 2-3 часа после него.
У женщин исследование не проводится во время менструации, так как в этот период микробная обсемененность снижается из-за кровотечения. Взятие биологического материала проводится строго до начала применения антибактериальных и химиотерапевтических препаратов, или не ранее, чем через 10-14 дней после их отмены.
Интерпретация результатов/Информация для специалистов
Выделение представителей патогенной флоры свидетельствует об этиологическом факторе выделенного возбудителя в клинической картине. Решение вопроса о постановки чувствительности к антибактериальным препаратам осуществляется врачом микробиологом и регламентируется методическими указаниями. R-возбудитель, S-возбудитель чувствителен, I- возбудитель умеренно устойчив к антибактериальному препарату. Выявление условно-патогенной флоры и ее значимость в развитии заболевания зависит от количества выделенного возбудителя для данной локализации.
Где сдать анализ?
Адреса медицинских центров, в которых можно заказать исследование, уточняйте по телефону 8-800-100-363-0
Все медицинские центры СИТИЛАБ в г. Казань >>
| Код | Наименование | Срок | Цена | Заказ |
|---|---|---|---|---|
| 62-93-803 | Выявление ДНК Chlamydia trachomatis (соскоб из уретры) | от 1 р.д. | 260.00 р. | |
| 73-914-003 | Посев МПО (уретра) на Ureaplasma spp. / Mycoplasma hominis с определением титра и чувствительности к антибиотикам | от 3 р.д. | 1260.00 р. | |
| 75-914-001 | Посев материала на грибы рода Candida с определением чувcтвительности к антимикотическим препаратам* (соскоб из уретры) | от 5 р.д. | 850.00 р. | |
| 99-83-802 | Посев на микрофлору, комплексное исследование (сперма) | от 6 р.д. | 1053.00 р. |
* На сайте указан максимально возможный срок выполнения исследования. Он отражает время выполнения исследования в лаборатории и не включает время на доставку биоматериала до лаборатории.
Приведенная информация носит справочный характер и не является публичной офертой. Для получения актуальной информации обратитесь в медицинский центр Исполнителя или call-центр.
Читайте также:
