Раневые инфекции у животных

М. И. Райц
Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова

Источник: материалы Московского международного ветеринарного конгресса

Раны и травмы различной этиологии, в хирургической практике регистрирются до 80% от всех пациентов с хирургической патологией.

Опыт показывает, что наибольшее количество животных с травмами и ранами регистрируется в теплое время года и показатели заболеваемости достигают пика в летние месяцы года. В силу разнообразных причин, пациенты на прием к ветеринарным специалистам чаще поступают через некоторое время, когда раневая поверхность уже длительное время инфицирована и площадь раневой инфекции значительно увеличилась. В таких случаях, а так же при лечении острогнойных раневых инфекций, ожогов с большой площадью повреждения, мокнущих ранах, когда в ранах прогрессируют некротические процессы и тяжело протекает гнойно-резорбтивная лихорадка, лечение по понятным причинам становится длительным и трудоемким.

Комплексное лечение с использованием всех разновидностей лечебной терапии (антибиотикотерапии, витаминотерапии, лазеротерапии и т.д. ) и местное лечение с применением мазей, антисептических растворов и присыпок, не всегда быстро приводит к процессам гранулирования, эпидермизации и рубцевания, особенно у ослабленных, старых и хронически больных животных, с ослабленными иммунобиологическими и другими защитными механизмами организма. В лечении животных с описанной патологией, нами успешно применялся ветеринарный препарат - Clamoxyl LA, это специально разработанная инъекционная форма амоксициллина пролонгированного действия, оказывающий бактерицидное действие на многие Грам- отрицательные и положительные бактерии. В 1 мл. суспензии содержится 150 мг. амоксициллина тригидрата, максимальная концентрация амоксициллина в сыворотке крови наблюдается через 2 часа после внутримышечного или подкожного введения препарата и сохраняется на терапевтическом уровне в течение 48 часов.

В большинстве случаев для полного выздоровления достаточно 1 -2 инъекций препарата, в затяжных случаях 4 инъекции. Препарат удобен для применения и не оказывает раздражающего действия. Но на ряду с симптоматическим лечением и в/м введениями препарата, мы использовали Кламоксил - местно. После тщательных хирургических обработок, 1 раз в день тонким слоем покрывали раневую или ожоговую поверхности и не накладывали повязку, если это было возможно ( что зависит от места локализации патологии и поведения животного). Во всех 82 случаях местного применения препарата, из них в 29, где практически не было шансов на благополучный исход, мы наблюдали быстрое достижение терапевтического эффекта, что способствовало более быстрым процессам эпидермизации и рубцевания раны в сравнении с другими методами лечения. Например у 3-х месячного щенка породы немецкая овчарка, ожоговая поверхность с признаками гнилостной инфекции составляла примерно 60% кожи в области спины, а у 2-х летней собаки породы боксер 50% кожи внутренней поверхности бедра занимала осторогнойная раневая инфекция, для полного восстановления кожного покрова и его функций нам понадобилось 2 -2,5 недели.

Кламоксил ЛА обладает быстрым бактерицидным действием и широким спектром активности, что увеличивает вероятностьбыстрого достижения терапевтического эффекта при самых разнообразных условиях, легкая и быстрая проникаемость препарата в ткани во все места развития инфекции, во много раз увеличивает шансы на успешную терапию.

Высокая эффективность Кламоксила уже доказана в лабораторных и полевых условиях, а мы подтверждаем эффективность препарата в профилактики и лечении хирургических послеоперационных инфекций, инфекционных заболеваниях кожи и мягких тканей и высокую эффективность при местном применении в лечении острогнойной и гнилостной раневых инфекциях, а так же в тех случаях, где длительное лечение с использованием многих лекарственных средств не привели к ожидаемым результатам.

Summary
М. I. Raytz. Acute purulent and putrefactive wound infections, long healed wounds of dogs': treatment with new injection form amokxyzillini, preparation Clamoxyl LA. The Saratov State Agrarian University named after N. I. Vavilov.

Осложнение ран инфекционными процессами — не только основная причина задержки их заживления, но во многих случаях причина длительной болезни и даже смерти раненых животных.

Раневая инфекция.

Под раневой инфекцией следует понимать бактериальное заражение раны, при котором патогенные микробы размножаются в поврежденных тканях, активно и глубоко внедряются в здоровые ткани и выделяют в них токсины и другие вредные для организма продукты своей жизнедеятельности.

Раневая инфекция может возникнуть из загрязнения раны или из раневой микрофлоры. Нужно помнить, что раневая инфекция может быть не только экзогенной, но и эндогенной (например, при лептоспирозе, бруцеллезе), первичной, вторичной, а иногда и повторной.

При раневой инфекции микробы входят в теснейший контакт с живыми тканями, вызывая многочисленные реакции общего и местного значения. В противоположность загрязнению и раневой микрофлоре раневая инфекция вызывается обычно каким-либо одним, наиболее патогенным микробом, реже — ассоциацией каких-либо двух вирулентных микробов. Ведущими микробами или ведущей ассоциацией микробов в развитии раневой инфекции оказываются те, которые в ране находят для своего роста и размножения наиболее подходящую питательную среду. По И. В. Давыдовскому, раневая инфекция — это монокультура, полимикроб- ной она никогда не бывает.

Возникновение раневой инфекции из загрязнения или из раневой микрофлоры определяется прежде всего характером повреждения тканей, локализацией раны, состоянием организма, факторами питания. Вирулентность микробов в развитии раневой инфекции играет хотя и важную, но, возможно, не самую главную роль, главную же роль играет состояние раны и животного. Если защитные свойства крови, тканей и систем организма животного превосходят агрессивную силу бактерий, то последние погибают, не вызвав клинических симптомов инфекций.

Раневая инфекция возникает легко при нарушении кровоснабжения и при размозжении тканей, а также при наличии гематом и кровоизлияний в полостях раны, ее углублениях и карманах. Чем обширнее разрушение мышечных пластов, чем глубже рана, тем вероятнее развитие тяжелой гнойной, гнойно-гнилистой или анаэробной инфекции. Обильная кровопотеря, утомление, охлаждение, истощение, ослабляя сопротивляемость организма инфекции, способствуют также развитию тяжелых раневых осложнений.

Развитие раневой инфекции зависит в гораздо большей степени от характера повреждений тканей, степени восприимчивости и соответственной устойчивости отдельных тканей, состояния нервной системы и от степени общей сопротивляемости организма инфекции, чем от патогенности внедрившихся в рану бактерий.

Установлено, что пулевые ранения инфицированы гораздо меньше, чем осколочные. В 75 % случаев огнестрельные раны инфицированы патогенными стрептококками. Пиогенные стрептококки — наиболее частые возбудители нагноения.

Не подлежит сомнению, что развитие той или иной раневой инфекции зависит не только от наличия мертвого субстрата, размятых и разрушенных тканей, но и от активной реакции раневой среды. Микробы, попавшие в рану, не могли бы в ней размножаться, если бы они не находили в ней необходимую для их размножения реакцию раневой среды. Так, например, в первой фазе заживления, когда в ране имеется резко кислая реакция среды и множество продуктов распадающегося белка, создаются наиболее благоприятные условия для развития опасного микроба —стрептококка. Когда же по мере очищения раны от мертвых тканей и заполнения ее грануляциями раневая среда ощелачивается, развитие стрептококков и других ацидофильных микробов становится невозможным, и они уступают место стафилококкам, кишечной палочке, микробам, менее требовательным к условиям среды. Эти микробы преобладают в ране во второй фазе заживления, когда рана заполняется здоровыми грануляциями. Если реакция раневой среды становится явно щелочной, то начинает размножаться синегнойная палочка. По мере удлинения срока заживления раны нередко наблюдается уменьшение числа стафилококков и нарастание протейной флоры.

Если инфицирование раны — причина инфекционного воспалительного процесса, то развитие раневой инфекции обусловлено рядом общих и местных факторов. К существенным факторам общего характера следует отнести ослабление организма животного, обусловленное травмой, кровопотерей, переутомлением, перебоями в кормлении и другими неблагоприятными в боевой обстановке условиями жизни. К местным факторам относятся количество и качество внесенных в рану микроорганизмов, их способность размножаться в ране и проявлять при этом патогенные свойства; имеет значение также наличие в ране обширной зоны травматического некроза. Мертвые ткани служат питательной средой для микроорганизмов.

Если обратиться к результатам микроскопического изучения тканей, иссекавшихся при первичной обработке ран, то оказывается, что в их омертвевающих и омертвевших участках наряду со свертками крови, подвергающимися распаду, выявляют весьма разнообразную микрофлору. Она обычно тем обильнее, чем позднее была произведена первичная обработка.

Некротические массы уже в первые часы после ранения могут включать некоторое количество лейкоцитов, однако наибольшее количество последних обнаруживается в неомертвевших тканях, в участках, близких к зоне травматического некроза.

Клинические и морфологические наблюдения показывают, что в каждом отдельном случае не представляется возможным отграничить инфекционный процесс, протекающий с демаркационным нагноением, от процесса распространения воспалительных изменений, вызванных патогенной микрофлорой, в окружающих живых тканях. Приходится лишь учитывать степень и клиническую значимость развития и распространения последней. Необходимо помнить, что причина развития нагноения и распространяющейся раневой инфекции — попавшие в рану микробы, а травматический некроз тканей — лишь одно из важных условий, благоприятствующих их жизнедеятельности.

Идея первичной обработки ран заключается в устранении омертвевших и омертвевающих тканей с содержащейся в них микрофлорой. Однако эта операция не приводит ни к стерилизации раны, ни к полному удалению мертвых тканей. Иссечение основной массы последних способствует неосложненному заживлению ран.

Вошедшее в практику широкое применение антибиотиков задерживает развитие раневой инфекции, но не ликвидирует ее, поэтому применение первичной обработки ран в полной мере сохраняет свое значение.

Установлено, что активная реакция раневой среды (pH), соответствующая каждой фазе эволюции раны, гораздо в большей степени влияет на развитие микрофлоры, чем последняя влияет на среду. До тех пор пока раневая среда остается кислотной, рана может быть инфицирована стрептококками, но если в силу тех или иных причин кислотная реакция изменяется в щелочную, стрептококки исчезнут и уступят место микробам, предпочитающим щелочную среду.

Не существует инфекции, которая создает в ране кислотную среду. Последняя зависит от самой раны и протеолиза, который в ней происходит.

Микрофлора ран может вызвать инфекционные процессы двоякого рода. Это могут быть, во-первых, процессы, вызванные гноеродной, главным образом кокковой флорой, с которой связаны нагноение раны, развитие флегмон или затеков в ее окружности и, наконец, раневой сепсис. Вторую, не менее важную группу раневых инфекций составляют анаэробные инфекции ран. Эти две группы раневых инфекций, как наиболее частые, подлежат более детальному разбору.

Владельцы патента RU 2351320:

Изобретение относится к ветеринарной хирургии, касается профилактики развития раневой инфекции у животных.

Главная цель оперативного вмешательства состоит в радикальной санации раны, уменьшении микробной обсемененности ткани и диссеминации инфекционного агента /1, 2/. Однако это часто невозможно из-за риска получить чрезмерное увеличение раневого дефекта и повреждения важнейших анатомических образований (магистральные сосуды и нервы, сухожилия, суставные сумки, серозные оболочки полостей).

На современном этапе развития хирургии отмечается тенденция к повышению частоты гнойно-воспалительных процессов, осложняющих лечение послеоперационного периода у хирургических больных /3/, причина этому - патогенные микроорганизмы (стафилококки, стрептококки, кишечная и синегнойная палочки и т.д.), которые оказывают отрицательное влияние, особенно при слабовыраженной общей неспецифической резистентности у животных на фоне нарушенного витаминно-минерального обмена в осенне-зимне-весенний период. Для предотвращения развития раневой инфекции наиболее часто используют антибиотики, в виде растворов для орошения ран и смачивания дренажей /4/.

Увеличение количества больных с острыми гнойными заболеваниями мягких тканей связано со снижением эффективности антибиотикотерапии, изменением характера микрофлоры, ростом ее антибиотикорезистентности в результате широкого бессистемного применения антимикробных средств и назначения слишком малых доз, а также с изменением иммунобиологической резистентности организма /4/; практически не выполнимое стремление к девастации мало изученных популяций, периодическое освобождение ниш путем слабо обоснованных дезинфекционных мероприятий и другие прямые или косвенные действия человека, выполняющие селекционную роль, обеспечивают аномальные вспышки численности самых различных патогенных и условно патогенных микроорганизмов.

С другой стороны, сосредоточение большого числа животных на ограниченных площадях, круглогодовое их пребывание в закрытых помещениях со станковым или клеточным содержанием, использование кормов промышленного производства и другие процессы стали вызывать у животных ослабление здоровья и конституции, глубокие нарушения обмена веществ, снижение продуктивности, появление новых болезней /5/.

Воздух представляет собой естественный аэрозоль. В воздушной среде лечебных помещений могут существовать более 60 видов патогенных микроорганизмов, среди которых возбудители наиболее опасных заболеваний - туберкулеза, гриппа, лихорадки, менингита и т.п. При нарушении санитарных нормативов (недостаточная вентиляция, солнечная инсоляция, некачественная дезинфекция) в помещениях могут развиваться плесени, грибки и т.д., таким образом, искусственно создаются устойчивые колонии, которые постоянно находятся в контакте с животными и человеком, что приводит к повторной или хронической контаминации. Подавляющее количество микроорганизмов находится в пылевой среде и имеют тенденцию накапливаться в ней (при этом патоген находится в органическом субстрате, количество которого в сравнении с массой микроба значительно больше, что затрудняет дезинфекцию химическими препаратами), и рассредоточиваются в труднодоступных местах, перемещаются воздушными потоками, создавая потенциальные очаги инфекции.

Многие способы обезвреживания и обеззараживания воздуха лечебных помещений с целью профилактики развития раневой инфекции, такие как использование угольных фильтров, аэрозолей, кварцевых ламп и лазерного излучения имеют существенные недостатки, так, например, в первом случае микроорганизмы не дезактивируются и не все токсические вещества обеззараживаются, бытовые воздухоочистители с использованием данной технологии имеют высокие эксплутационные расходы, а при несвоевременной смене фильтров воздухоочиститель сам становится источником вредных веществ.

Во втором случае вредные вещества не подвергаются детоксикации, в третьем - не высокая антибактериальная эффективность, отсутствие детоксикации и вредное воздействие на человека и животных (генерируются окислы азота, озон и т.д.) /6, 7, 8/.

В настоящее время одной из основных проблем хирургии является профилактика гнойно-воспалительных заболеваний у животных.

Основными задачами, которые следует решить при профилактике раневой инфекции, являются: борьба с аэробной и анаэробной инфекцией; неспецифическая стимулирующая терапия и деинтоксикация организма больного; восстановление функции поврежденного органа или ткани.

Решение этих задач возможно только при сочетании физических и консервативных методов профилактики.

При получении ранений животных возникает нарушение целостности кожи и нижележащих тканей, при этом вследствие загрязнения в раневой дефект попадают патогенные микроорганизмы, находящиеся на травмирующем объекте (гвоздь, стекло, щепки и т.д.) или на поверхности кожи, шерсти или подстилке. Рана заполняется капиллярной (венозной, артериальной) кровью, лимфой и через определенное время содержащийся в крови фибриноген (белок, обеспечивающий свертываемость крови) образует тромб - биологическую пробку, препятствующую контакту раны с окружающей средой, таким образом, благодаря струпу доступ воздуха (и содержащихся в нем бактерий, вирусов, грибов и т.д.) в рану прекращается, однако сам струп уже содержит ранее попавшие в рану микроорганизмы, для которых в этом случае создаются оптимальные условия для жизнедеятельности.

Таким образом, использование в профилактике развития раневой инфекции только фотокаталитического очистителя обеззараживателя воздуха не обеспечивает эффективного уничтожения микроорганизмов, находящихся в ране, и эффект профилактики развития раневой инфекции у животных не достигается.

Местные реакции на травму практически во всех случаях обусловлены взаимодействием двух повреждающих факторов: наличием очага тканевой деструкции и микробным возбудителем. Местное действие самой травмы проявляется прежде всего в непосредственном повреждении в зоне ранения клеток, сосудов и нервов, в результате чего нарушаются микроциркуляция, высвобождаются химические медиаторы, изменяются обмен веществ и клеточный состав раны. В любой ране имеются погибающие ткани, крове- и лимфоизлияния.

Процесс заживления раны начинается с момента остановки кровотечения. В первой фазе заживления происходят наиболее резко выраженные био-физико-коллоидно-химические изменения. Они характеризуются увеличением содержания калия и быстро нарастающим уровнем кислотности раневой среды; эта реакция нередко становится устойчивой и вызывает де-компенсированный ацидоз на месте ранения.

Повышенная кислотность в ране возникает довольно быстро вследствие травмы сосудов застоя крови, местной асфиксии накопления СОз, уменьшения притока кислорода и изменения тканевого обмена. Неполное окисление продуктов распада тканевого белка и жиров в зоне раневого канала и травматического некроза ведет к образованию органических кислот - молочной, масляной, нуклеиновой, парааминобензойной, аденилфосфорной аминокислот, различных жирных кислот, углекислоты, и т.д.

Чем больше накапливается кислот в воспалительном очаге, и чем меньше организм способен освободиться от них, тем скорее и сильнее наступает сдвиг активной реакции среды в кислую сторону. Нарушение кислотно-щелочного равновесия оказывается настолько постоянным, что тканевые буферные системы не в состоянии щелочить раневую среду, в результате чего возникает местный декомпенсированный ацидоз. Повышенная концентрация водородных ионов, обуславливающая развитие ацидоза, оказывает огромное влияние на жизнедеятельность клеток.

Кислая реакция раневой среды влечет повышение проницаемости сосудистых стенок, набухание тканевых коллоидов, повышение поверхностного натяжения и повышение осмотического давления, оно способствует развитию гиперемии, вызывает резкое нарушение тканевого обмена, изменение активности ферментативных процессов, развитие дегенеративных изменений, некроз клеток и тканей и отравление организма ядовитыми продуктами распада тканевого белка.

Наблюдается также угнетение иммунологических реакций организма, сумма всех вышеизложенных факторов приводит к развитию хронического патологического процесса, т.к. использование в профилактике развития раневой инфекции только фотокаталитического очистителя-обеззараживателя воздуха не обеспечивает раноочищающего эффекта, и эффект профилактики развития раневой инфекции у животных не достигается.

Технический результат изобретения - повышение эффективности санации раневой поверхности и активация регенеративных процессов в ране.

Плацента активное начало - 49,9

Гентамицина сульфат 4% - 0,1

Раствор хлорида натрия 0,9% - остальное

Препарат ПАН содержит комплекс биологически активных веществ:

аминокислоты, нуклеиновые и гексуроновые кислоты, белки - пептиды, азот, полисахариды, витамины, микроэлементы, гормоны. Известно, что многие из этих веществ активно участвуют в построении основного вещества соединительной ткани. Установлено, что после применения препарата ПАН происходит общая стимуляция организма за счет присутствия в препарате природных компонентов плаценты. Противовоспалительное действие препарата определяется наличием в нем уроновых кислот, а общеукрепляющее - за счет стимулирования ферментной системы и обмена веществ в организме /11/.

Для устранения негативного воздействия со стороны возбудителей хирургической инфекции на рану в препарат ПАН добавили аминогликозидный антибиотик гентамицина сульфат. Главное преимущество гентамицина перед другими сходными антибиотиками - его высокая активность в отношении большинства Г+ и Г- микроорганизмов. Кроме того, резистентность микроорганизмов к гентамицину развивается относительно медленно. Аминогликозиды не метаболизируются в организме и лишь незначительно связываются с белками сыворотки крови, следовательно, они не могут способствовать развитию аллергической реакции немедленного типа, а тем более - замедленного /3/. Плацента активное начало и гентамицина сульфат разводятся в 0,9% растворе хлорида натрия.

Воздух представляет собой естественный аэрозоль. В воздушной среде лечебных помещений могут существовать более 60 видов патогенных микроорганизмов, среди которых возбудители наиболее опасных заболеваний - туберкулеза, гриппа, лихорадки, менингита и т.п. Подавляющее количество микроорганизмов находится в пылевой среде и имеют тенденцию накапливаться в ней (при этом патоген находится в органическом субстрате, количество которого в сравнении с массой микроба значительно больше, что затрудняет дезинфекцию химическими препаратами), и рассредоточиваются в труднодоступных местах, перемещаются воздушными потоками, создавая потенциальные очаги инфекции. При нарушении санитарных нормативов (недостаточная вентиляция, солнечная инсоляция, некачественная дезинфекция) в помещениях могут развиваться плесени, грибки и т.д., таким образом, искусственно создаются устойчивые колонии, которые постоянно находятся в контакте с животными и человеком, что приводит к повторной или хронической контаминации (обсеменение, заражение), таким образом, на раневой дефект, и вышеуказанное средство постоянно будет осаждать микроорганизмы, которые, возможно, будут не чувствительны к антибиотику гентамицина сульфат, таким образом эффект профилактики развития раневой инфекции у животных достигнут не будет.

При комбинированном использовании фотокаталитического очистителя-обеззараживателя и композиционного средства происходит с одной стороны высокоэффективная утилизация из воздуха помещений формальдегида, угарного газа, озона, окислов азота, бактерий, вирусов и спор грибков, а с другой стороны - композиционный препарат будет способствовать быстрейшему стерилизующему, регенеративному процессу и улучшению трофики патологического очага.

Таким образом, совместное применение двух указанных средств способствует ускорению очищения ран от мертвых тканей, прекращению некротизации здоровых тканей, ощелачиванию зоны раны (вследствие чего происходит нормализация воспалительной реакции и активация фагоцитоза), будет препятствовать накоплению в ране продуктов распада тканей и метаболизма микроорганизмов, фотокатализ обеспечит отсутствие в воздухе помещения нежелательных химических соединений (формальдегид, окислы, фенолы и др.), которые оказывают раздражающее действие на зону раны, снижая тем самым местную резистентность, фотокатализ препятствует повторной микробной ассимиляции раны.

Способ реализуется следующим образом: проводится туалет раны, композиционное средство закладывается в рану 2-3 раза в сутки (в зависимости от состояния и сложности раны). Животное помещается в закрытый вольер (помещение), в котором находится фотокаталитический очиститель-обеззараживатель. Кормление по показаниям.

С целью определения эффективности заявленного способа в условиях кафедры хирургии Воронежского государственного аграрного университета им. К.Д.Глинки на 9 беспородных собаках обоего пола, подобранных по принципу парных аналогов в возрасте 4-5 лет, сгруппированных в 3 опытные группы, были смоделированы резаные раны одинаковой величины и формы.

Экспериментальные раны наносились в поясничной области, отступя от остистых отростков поясничных позвонков на 1,5-2 см вправо.

Перед нанесением раны операционное поле готовилось по способу Пирогова: шерсть выстригалась, кожа выбривалась, обезжиривалась спирт-эфиром и для дезинфекции с одновременным дублением смазывалась 5% спиртовым раствором йода. Руки готовили по способу Кияшева. Операцию проводили после премедикации под общим наркозом, выполненным ксилозином в дозе 1 мл на 10 кг массы тела животного. Производили одномоментный горизонтальный линейный разрез кожи, подкожной клетчатки, поверхностной двухлистковой фасции, подкожного мускула, заключенного в глубокую двухлистковую фасцию, длиннейшей мышцы спины и поясницы длиной 5 см и глубиной 1,5 см по шаблону. Кровотечение останавливали механическим путем с помощью стерильных ватно-марлевых тампонов.

Первой группе применяли фотокаталитический очиститель-обеззараживатель /9, 10/, вторая группа животных обрабатывалась заявляемым способом. Препараты применили после нанесения экспериментальных ран. Развитие раневой инфекции профилактировалось только по одному из описанных выше способов. Другой врачебной помощи собаки не получали.

Результаты клинического обследования представлены в таблице №1.

Раневая болезнь, до настоящего времени остается одной из самых распространенных хирургических патологий [1-3, 5, 8, 9]. Высокая степень бактериального загрязнения ран, вторичное инфицирование, предполагают большой процент осложнений, требующих проведения целого комплекса лечебных мероприятий.

Активная хирургическая тактика, включающая первичную хирургическую обработку, полноценное дренирование и адекватную антибактериальную терапию раневого очага, является первоочередной задачей лечения [1, 3, 5, 8, 9]. Несмотря на достоинства известных методов лечения, в ряде случаев они не обладают достаточным терапевтическим эффектом. В связи с этим, заслуживает внимания разработанный нами способ лечения и профилактики хирургической инфекции у животных, с использованием направленной диффузии лекарственных веществ в рану через полупроницаемую мембрану, мембранного осмоса и диализа [4, 6, 7].

Целью исследования является поиск наиболее эффективного способа комплексного лечения свежих случайных ран с общирной зоной повреждения, у животных разных видов.

Наблюдения проводили у животных (n = 300) с абсолютными показаниями к дренированию: свежие случайные (инфицированные) (n = 199) и операционные раны (n = 101) с обширной зоной повреждения. Клиническую характеристику раневого процесса оценивали на основании ежедневных клинических наблюдений общепринятыми способами. Гематологический контроль раневого процесса проводили на основании определения клинико-морфологического состава венозной крови с использованием унифицированных методик, на 1-е, 3-е, 5-е, 7-е, 10-е, 15-е, 25-е сутки лечения.

Приступая к установке дренажей у разных видов животных, мы исходили из следующих показаний: наличие большой зоны травматических изменений. Важное диагностическое и прогностическое значение имели механизм получения травмы, вид животного, локализация повреждения, условия содержания и время выполнения первичной хирургической обработки.

В 1 (опытной) группе (n = 165) применяли мембранное дренирование и диализ, у 112 (56,3 %) животных после первичной хирургической обработки (ПХО) свежих случайных ран, с целью профилактики раневой инфекции. Среди них: укушенные 8,5 % (n = 26), ушиблено-рваные 8,5 % (n = 26), рвано-лоскутные 8,5 % (n = 26), огнестрельные 2,2 % (n = 7), раны синовиальных образований 2,2 % (n = 13), рубленные 4,6 % (n = 12). У 53(26,7 %) – при лечении послеоперационных ран, с показаниями к дренированию в послеоперационном периоде. Во 2 (контрольной) группе (n = 135) применяли традиционные способы дренирования.

Максимальное количество ПХО, осуществляли в сроки от 12 до 24 часов. Все манипуляции осуществляли под местной или общей анестезией. Объем и техника первичной хирургической обработки зависели от вида и степени повреждения, размеров животного. До закрытия раны швами в ее полость вводили дренажное диализирующее устройство или перфорированные трубчатые дренажи на срок до 8 суток.

Эффективность диализа обусловлена композицией диализирующего раствора. Исходя из этого, мы старались подобрать такой состав диализата, который обеспечивает атравматичность процедур, создает условия для активной и продленной во времени дегидратации тканей раневого очага, создает высокую концентрацию антисептиков и, благодаря высокой управляемой осмотической активности и химиотерапевтического воздействия, может влиять на раневой процесс.

Для подавления микрофлоры, в диализирующий раствор вводили антибиотики и антисептики, в количестве 1/2 терапевтической дозы, с учетом видовой чувствительности и индивидуальной переносимости. Достижение обезболивающего эффекта осуществляли введением в состав диализата местноанестезирующих веществ. Смену раствора в полости дренажа проводили 1 раз в сутки. Общую антибактериальную терапию у животных этой клинической группы не выполняли.

У животных опытной группы наблюдали устойчивую положительную динамику, выражающуюся в удовлетворительном общем состоянии, умеренно выраженной асептической воспалительной реакции, нормализации гематологических показателей. У всех животных обезболивающий эффект после установки дренажа наблюдали уже в течение первых часов, что может быть связано с постоянной и равномерной диффузией местноанестезирующих веществ из полости мембранной капсулы в околораневые ткани. Дополнительной анальгезии в послеоперационном периоде мы не применяли. При визуальном осмотре, на 3 сутки, у всех видов животных, отмечено отсутствие отеков, гиперемии, болезненности. В зоне шва был сформирован нитевидный сухой струп. Есть основания полагать, что это отражает активный процесс дегидратации, связанной с интенсивным осмотическим потоком раневого отделяемого в полость мембранной капсулы. Динамика наполняемости устройства, свидетельствует об активной осмотерапии ран. Так, на 2 сутки, наполняемость дренажа у собак и лошадей составляла 12 часов, у крупного рогатого скота – 15 часов. По завершении фазы гидратации (5,1 ± 2,3 сут), наполняемость мембранного дренажа возрастает до 24 часов, при отсутствии отделяемого из нижнего угла операционной раны.

Наблюдаемые отклонения в гематологических показателях при первичном осмотре обусловлены обширными повреждениями тканей. У собак выявлено: повышение СОЭ в 2,31 (13,86 ± 6,4 мм/ч); лейкоцитов в 2,12 (21,22 ± 0,09/109/л); гематокрита в 1,04 раза (59,3 ± 3,11 %), калия в 1,35 (2,0 ± 0,16 моль/л) (Р 0,02).Через 5,0 ± 1,2 сутки (P > 0,01) после начала диализа мембрану у животных удаляли.

Анализ результатов лечения по нозологическим группам показал, что заживление случайных ран у кошек и крупного рогатого скота во всех случаях прошло без осложнений. У 86,8 % лошадей(n = 33), 93,1 % собак (n = 27) процесс репаративной регенерации протекал по первичному натяжению. Осложнения, вызванные повторной механической травмой, отмечены у 3,03 % животных (13,2 % лошадей(n = 3) и 6,8 % собак (n = 2). Им выполняли вторичную хирургическую обработку.

Клинические наблюдения в контрольной группе проводили у 135 животных. Все животные в течение первых суток после операции были пассивны, аппетит отсутствовал. Активная хирургическая тактика и инфузионная терапия дали временный эффект, выражающийся, по сравнению с опытом, в некотором улучшении общего состояния и незначительном улучшении клинических и биохимических показателей крови. Исходная гематологическая картина у животных контрольной и опытной групп совпадала. Однако в процессе лечения мы наблюдали менее выраженную положительную динамику. Гематологические нарушения, характерные для интенсивно выраженной воспалительной реакции, устранились: у кошек на 13,4 ± 1,3 сут; у собак – 17,3 ± 1,2 сут; лошадей – 20,5 ± 3,1 сут; у крупного рогатого скота – 28,2 ± 2,4 сут (Р -0,01), что в 1,63; 1,66; 1,97 и 1,55 раза медленнее чем в группе сравнения.

У животных контрольной группы, заживление кожных ран первичным натяжением произошло у 86,6 %. Однако в процессе лечения наблюдали некоторые осложнения. Напряженный отек тканей, у животных с гнойно-ферментативным типом очищения ран (собака, лошадь, кошка) сохранялся до 8-10 дней, умеренный – до 3 недель (лошадь). У 3 % лошадей и 2,3 % собак наблюдали опускающиеся отеки на конечностях. Болевой синдром носил выраженный характер до 5-7 суток, что требовало дополнительного применения анальгезирующих средств. По нашему мнению, болезненность была обусловлена наличием напряженных отеков, вызывающих раздражение нервных окончаний, формированием зон парабиоза и абсорбцией продуктов биодеградации белка. У 65,7 % животных, после ПХО случайных ран, отмечали гиперемию в области швов, в 7,9 % (n = 11) случаях – локальные участки некроза. У 10,4 % (n = 14) животных, была применена вторичная хирургическая обработка, в результате которой осуществляли лечение с применением дренажных диализирующих устройств. У 68,4 % животных заживление операционных ран протекало благоприятно, без осложнений, их репарация наступала на 11 ± 2,1 сутки (Р > 0,001), что в 1,57 раза медленнее, чем в опытной группе.