Раневая инфекция у коров

Осложнение ран инфекционными процессами — не только основная причина задержки их заживления, но во многих случаях причина длительной болезни и даже смерти раненых животных.

Раневая инфекция.

Под раневой инфекцией следует понимать бактериальное заражение раны, при котором патогенные микробы размножаются в поврежденных тканях, активно и глубоко внедряются в здоровые ткани и выделяют в них токсины и другие вредные для организма продукты своей жизнедеятельности.

Раневая инфекция может возникнуть из загрязнения раны или из раневой микрофлоры. Нужно помнить, что раневая инфекция может быть не только экзогенной, но и эндогенной (например, при лептоспирозе, бруцеллезе), первичной, вторичной, а иногда и повторной.

При раневой инфекции микробы входят в теснейший контакт с живыми тканями, вызывая многочисленные реакции общего и местного значения. В противоположность загрязнению и раневой микрофлоре раневая инфекция вызывается обычно каким-либо одним, наиболее патогенным микробом, реже — ассоциацией каких-либо двух вирулентных микробов. Ведущими микробами или ведущей ассоциацией микробов в развитии раневой инфекции оказываются те, которые в ране находят для своего роста и размножения наиболее подходящую питательную среду. По И. В. Давыдовскому, раневая инфекция — это монокультура, полимикроб- ной она никогда не бывает.

Возникновение раневой инфекции из загрязнения или из раневой микрофлоры определяется прежде всего характером повреждения тканей, локализацией раны, состоянием организма, факторами питания. Вирулентность микробов в развитии раневой инфекции играет хотя и важную, но, возможно, не самую главную роль, главную же роль играет состояние раны и животного. Если защитные свойства крови, тканей и систем организма животного превосходят агрессивную силу бактерий, то последние погибают, не вызвав клинических симптомов инфекций.

Раневая инфекция возникает легко при нарушении кровоснабжения и при размозжении тканей, а также при наличии гематом и кровоизлияний в полостях раны, ее углублениях и карманах. Чем обширнее разрушение мышечных пластов, чем глубже рана, тем вероятнее развитие тяжелой гнойной, гнойно-гнилистой или анаэробной инфекции. Обильная кровопотеря, утомление, охлаждение, истощение, ослабляя сопротивляемость организма инфекции, способствуют также развитию тяжелых раневых осложнений.

Развитие раневой инфекции зависит в гораздо большей степени от характера повреждений тканей, степени восприимчивости и соответственной устойчивости отдельных тканей, состояния нервной системы и от степени общей сопротивляемости организма инфекции, чем от патогенности внедрившихся в рану бактерий.

Установлено, что пулевые ранения инфицированы гораздо меньше, чем осколочные. В 75 % случаев огнестрельные раны инфицированы патогенными стрептококками. Пиогенные стрептококки — наиболее частые возбудители нагноения.

Не подлежит сомнению, что развитие той или иной раневой инфекции зависит не только от наличия мертвого субстрата, размятых и разрушенных тканей, но и от активной реакции раневой среды. Микробы, попавшие в рану, не могли бы в ней размножаться, если бы они не находили в ней необходимую для их размножения реакцию раневой среды. Так, например, в первой фазе заживления, когда в ране имеется резко кислая реакция среды и множество продуктов распадающегося белка, создаются наиболее благоприятные условия для развития опасного микроба —стрептококка. Когда же по мере очищения раны от мертвых тканей и заполнения ее грануляциями раневая среда ощелачивается, развитие стрептококков и других ацидофильных микробов становится невозможным, и они уступают место стафилококкам, кишечной палочке, микробам, менее требовательным к условиям среды. Эти микробы преобладают в ране во второй фазе заживления, когда рана заполняется здоровыми грануляциями. Если реакция раневой среды становится явно щелочной, то начинает размножаться синегнойная палочка. По мере удлинения срока заживления раны нередко наблюдается уменьшение числа стафилококков и нарастание протейной флоры.

Если инфицирование раны — причина инфекционного воспалительного процесса, то развитие раневой инфекции обусловлено рядом общих и местных факторов. К существенным факторам общего характера следует отнести ослабление организма животного, обусловленное травмой, кровопотерей, переутомлением, перебоями в кормлении и другими неблагоприятными в боевой обстановке условиями жизни. К местным факторам относятся количество и качество внесенных в рану микроорганизмов, их способность размножаться в ране и проявлять при этом патогенные свойства; имеет значение также наличие в ране обширной зоны травматического некроза. Мертвые ткани служат питательной средой для микроорганизмов.

Если обратиться к результатам микроскопического изучения тканей, иссекавшихся при первичной обработке ран, то оказывается, что в их омертвевающих и омертвевших участках наряду со свертками крови, подвергающимися распаду, выявляют весьма разнообразную микрофлору. Она обычно тем обильнее, чем позднее была произведена первичная обработка.

Некротические массы уже в первые часы после ранения могут включать некоторое количество лейкоцитов, однако наибольшее количество последних обнаруживается в неомертвевших тканях, в участках, близких к зоне травматического некроза.

Клинические и морфологические наблюдения показывают, что в каждом отдельном случае не представляется возможным отграничить инфекционный процесс, протекающий с демаркационным нагноением, от процесса распространения воспалительных изменений, вызванных патогенной микрофлорой, в окружающих живых тканях. Приходится лишь учитывать степень и клиническую значимость развития и распространения последней. Необходимо помнить, что причина развития нагноения и распространяющейся раневой инфекции — попавшие в рану микробы, а травматический некроз тканей — лишь одно из важных условий, благоприятствующих их жизнедеятельности.

Идея первичной обработки ран заключается в устранении омертвевших и омертвевающих тканей с содержащейся в них микрофлорой. Однако эта операция не приводит ни к стерилизации раны, ни к полному удалению мертвых тканей. Иссечение основной массы последних способствует неосложненному заживлению ран.

Вошедшее в практику широкое применение антибиотиков задерживает развитие раневой инфекции, но не ликвидирует ее, поэтому применение первичной обработки ран в полной мере сохраняет свое значение.

Установлено, что активная реакция раневой среды (pH), соответствующая каждой фазе эволюции раны, гораздо в большей степени влияет на развитие микрофлоры, чем последняя влияет на среду. До тех пор пока раневая среда остается кислотной, рана может быть инфицирована стрептококками, но если в силу тех или иных причин кислотная реакция изменяется в щелочную, стрептококки исчезнут и уступят место микробам, предпочитающим щелочную среду.

Не существует инфекции, которая создает в ране кислотную среду. Последняя зависит от самой раны и протеолиза, который в ней происходит.

Микрофлора ран может вызвать инфекционные процессы двоякого рода. Это могут быть, во-первых, процессы, вызванные гноеродной, главным образом кокковой флорой, с которой связаны нагноение раны, развитие флегмон или затеков в ее окружности и, наконец, раневой сепсис. Вторую, не менее важную группу раневых инфекций составляют анаэробные инфекции ран. Эти две группы раневых инфекций, как наиболее частые, подлежат более детальному разбору.

Столбняк – острая раневая инфекция животных и человека, характеризующаяся выраженной рефлекторной возбудимостью и судорожным сокращением мускулатуры тела под действием токсина, вырабатываемого микробом – возбудителем болезни.

Возбудитель столбняка – бактерия, анаэроб (развивается в бескислородной среде), тонкая палочка с закругленными концами, длиной 4 – 8 мкм, шириной 0,4 – 0,6 мкм. Микроб образует спору на концах бактериальной клетки, придающую ей форму барабанной палочки. В естественных условиях размножается в кишечнике травоядных животных, вместе с фекалиями попадает в почву и, превращаясь в спору, на долгие годы заражает ее, в результате поддерживая обсемененность почвы возбудителем болезни. Споры устойчивы к высушиванию: на кусочке дерева сохраняются до 11 лет; при кипячении погибают через 1 – 3 ч, раствор сулемы (1: 1000) убивает их через 3 ч. В тканях с пониженной жизнеспособностью и в бульонной культуре столбнячный микроб выделяет сильный токсин, 1 мл которого смертелен для взрослой лошади. Токсин менее устойчив, чем споры. Солнечные лучи разрушают его через 10 – 18 ч, а с нагреванием при температуре 65 'С – через 5 мин. Споры же обезвреживаются 1%-ным раствором азотнокислого серебра за 1 мин, 0,5%-ным соляной кислоты – через 30, 5%-ным карболовым – через 15 мин, 3%-ным раствором формалина – через 24 ч. Столбняк принес много бед человеку и животным. С незапамятных времен это заболевание отмечалось во всех районах, где жили люди и разводили животных. Особенно опасны места массового захоронения животных и места сражений. Длительное сохранение столбнячного микроба в различных условиях внешней среды способствовало формированию зон высокого риска. Судя по литературе, столбняк был известен и описан на Ближнем Востоке, юге Европы и Азии 2 – 3 тыс. лет назад. Однако лишь в 1883 г. Н. Д. Монастырский впервые описал столбнячную бациллу, и только в 1890 г. была получена первая противостолбнячная сыворотка.

Столбняк у животных

К столбняку восприимчивы лошади, крупный и мелкий рогатый скот, свиньи, собаки, кошки, птицы. Источник возбудителя инфекции – животное, выделяющее микроб с фекалиями, заражающими почву. Животные заболевают в результате попадания в раны спор столбнячного микроба вместе с землей, навозом. У крупного и мелкого рогатого скота столбняк может развиться после тяжелых родов, кастраций и других операций, выполненных с нарушением правил гигиены. Иногда болезнь развивается спустя длительное время после первичного инфицирования в результате повторных травм. У животных, заболевших столбняком, инкубационный период длится 1 – 3 недели, иногда дольше. Первый признак болезни – сложности в приеме и пережевывании пищи. Это связано с судорогами жевательных мышц. 3атем появляются напряженная походка, неподвижность ушных раковин и выпадение третьего века, позднее – резкие судорожные сокращения мускулатуры и затруднение дыхания. Дальнейшее ухудшение состояния проявляется поражением мускулатуры тела. У собак, заболевших столбняком, тело и конечности вытягиваются, а позвоночник прогибается вниз.

Столбняк у человека

Человек заражается через поврежденные кожные покровы и слизистые оболочки (раны, ожоги, отморожения), куда попадают загрязненные возбудителем частички почвы, навоза или фекалий. Факторами передачи могут также служить загрязненный возбудителем медицинский инструментарий или другие режущие и колющие предметы. Естественная восприимчивость людей высокая, вероятность заболевания увеличивается при большой зоне повреждения тканей, их ишемии и некрозе, создающих анаэробиоз. Территориальное распространение болезни имеет повсеместный характер, однако заболевания чаще отмечаются в развивающихся странах. В военное время заболевания связаны с массовым травматизмом в результате боевых ранений, ожогов и отморожений, с последующим загрязнением ран контаминированной возбудителем почвой. В мирное время заболевания чаще связаны с бытовым или сельскохозяйственным травматизмом (до 85 % случаев), реже – с промышленным травматизмом; 5 – 10% случаев связано с нарушениями правил асептики при абортах и хирургических операциях; сюда же следует отнести столбняк новорожденных, у которых входными воротами возбудителя может служить пупочная рана. Около 60% случаев отмечается у лиц пожилого возраста. Инкубационный период длится от нескольких часов до 1 месяца, чаще – 6 – 14 дней.

Начало заболевания подострое или острое. Последовательно возникают спазм жевательной мускулатуры, напряжение мимических мышц, мышц затылка, груди, диафрагмы, спины, плеч и бедер. Через 1 – 5 дней развиваются приступы общих судорог, возникают мышечные боли, потливость, учащается сердцебиение, затруднены глотание, дыхание, мочеиспускание, дефекация. Температура тела повышена, сознание сохранено. На выздоровление требуется от 2 недель до 2 месяцев. Смерть обычно наступает от паралича дыхательной мускулатуры, летальность составляет от 15 до 35%. Профилактические мероприятия делятся на неспецифические и специфические. Неспецифическая профилактика направлена на предупреждение травматизма в быту и на производстве, исключение возможности заражения операционных, пупочных и других ран, а также раннюю и тщательную хирургическую обработку ран.

Специфическая профилактика столбняка проводится ассоциированным препаратом АКДС, содержащим очищенный адсорбированный столбнячный анатоксин.

Раневая болезнь, до настоящего времени остается одной из самых распространенных хирургических патологий [1-3, 5, 8, 9]. Высокая степень бактериального загрязнения ран, вторичное инфицирование, предполагают большой процент осложнений, требующих проведения целого комплекса лечебных мероприятий.

Активная хирургическая тактика, включающая первичную хирургическую обработку, полноценное дренирование и адекватную антибактериальную терапию раневого очага, является первоочередной задачей лечения [1, 3, 5, 8, 9]. Несмотря на достоинства известных методов лечения, в ряде случаев они не обладают достаточным терапевтическим эффектом. В связи с этим, заслуживает внимания разработанный нами способ лечения и профилактики хирургической инфекции у животных, с использованием направленной диффузии лекарственных веществ в рану через полупроницаемую мембрану, мембранного осмоса и диализа [4, 6, 7].

Целью исследования является поиск наиболее эффективного способа комплексного лечения свежих случайных ран с общирной зоной повреждения, у животных разных видов.

Наблюдения проводили у животных (n = 300) с абсолютными показаниями к дренированию: свежие случайные (инфицированные) (n = 199) и операционные раны (n = 101) с обширной зоной повреждения. Клиническую характеристику раневого процесса оценивали на основании ежедневных клинических наблюдений общепринятыми способами. Гематологический контроль раневого процесса проводили на основании определения клинико-морфологического состава венозной крови с использованием унифицированных методик, на 1-е, 3-е, 5-е, 7-е, 10-е, 15-е, 25-е сутки лечения.

Приступая к установке дренажей у разных видов животных, мы исходили из следующих показаний: наличие большой зоны травматических изменений. Важное диагностическое и прогностическое значение имели механизм получения травмы, вид животного, локализация повреждения, условия содержания и время выполнения первичной хирургической обработки.

В 1 (опытной) группе (n = 165) применяли мембранное дренирование и диализ, у 112 (56,3 %) животных после первичной хирургической обработки (ПХО) свежих случайных ран, с целью профилактики раневой инфекции. Среди них: укушенные 8,5 % (n = 26), ушиблено-рваные 8,5 % (n = 26), рвано-лоскутные 8,5 % (n = 26), огнестрельные 2,2 % (n = 7), раны синовиальных образований 2,2 % (n = 13), рубленные 4,6 % (n = 12). У 53(26,7 %) – при лечении послеоперационных ран, с показаниями к дренированию в послеоперационном периоде. Во 2 (контрольной) группе (n = 135) применяли традиционные способы дренирования.

Максимальное количество ПХО, осуществляли в сроки от 12 до 24 часов. Все манипуляции осуществляли под местной или общей анестезией. Объем и техника первичной хирургической обработки зависели от вида и степени повреждения, размеров животного. До закрытия раны швами в ее полость вводили дренажное диализирующее устройство или перфорированные трубчатые дренажи на срок до 8 суток.

Эффективность диализа обусловлена композицией диализирующего раствора. Исходя из этого, мы старались подобрать такой состав диализата, который обеспечивает атравматичность процедур, создает условия для активной и продленной во времени дегидратации тканей раневого очага, создает высокую концентрацию антисептиков и, благодаря высокой управляемой осмотической активности и химиотерапевтического воздействия, может влиять на раневой процесс.

Для подавления микрофлоры, в диализирующий раствор вводили антибиотики и антисептики, в количестве 1/2 терапевтической дозы, с учетом видовой чувствительности и индивидуальной переносимости. Достижение обезболивающего эффекта осуществляли введением в состав диализата местноанестезирующих веществ. Смену раствора в полости дренажа проводили 1 раз в сутки. Общую антибактериальную терапию у животных этой клинической группы не выполняли.

У животных опытной группы наблюдали устойчивую положительную динамику, выражающуюся в удовлетворительном общем состоянии, умеренно выраженной асептической воспалительной реакции, нормализации гематологических показателей. У всех животных обезболивающий эффект после установки дренажа наблюдали уже в течение первых часов, что может быть связано с постоянной и равномерной диффузией местноанестезирующих веществ из полости мембранной капсулы в околораневые ткани. Дополнительной анальгезии в послеоперационном периоде мы не применяли. При визуальном осмотре, на 3 сутки, у всех видов животных, отмечено отсутствие отеков, гиперемии, болезненности. В зоне шва был сформирован нитевидный сухой струп. Есть основания полагать, что это отражает активный процесс дегидратации, связанной с интенсивным осмотическим потоком раневого отделяемого в полость мембранной капсулы. Динамика наполняемости устройства, свидетельствует об активной осмотерапии ран. Так, на 2 сутки, наполняемость дренажа у собак и лошадей составляла 12 часов, у крупного рогатого скота – 15 часов. По завершении фазы гидратации (5,1 ± 2,3 сут), наполняемость мембранного дренажа возрастает до 24 часов, при отсутствии отделяемого из нижнего угла операционной раны.

Наблюдаемые отклонения в гематологических показателях при первичном осмотре обусловлены обширными повреждениями тканей. У собак выявлено: повышение СОЭ в 2,31 (13,86 ± 6,4 мм/ч); лейкоцитов в 2,12 (21,22 ± 0,09/109/л); гематокрита в 1,04 раза (59,3 ± 3,11 %), калия в 1,35 (2,0 ± 0,16 моль/л) (Р 0,02).Через 5,0 ± 1,2 сутки (P > 0,01) после начала диализа мембрану у животных удаляли.

Анализ результатов лечения по нозологическим группам показал, что заживление случайных ран у кошек и крупного рогатого скота во всех случаях прошло без осложнений. У 86,8 % лошадей(n = 33), 93,1 % собак (n = 27) процесс репаративной регенерации протекал по первичному натяжению. Осложнения, вызванные повторной механической травмой, отмечены у 3,03 % животных (13,2 % лошадей(n = 3) и 6,8 % собак (n = 2). Им выполняли вторичную хирургическую обработку.

Клинические наблюдения в контрольной группе проводили у 135 животных. Все животные в течение первых суток после операции были пассивны, аппетит отсутствовал. Активная хирургическая тактика и инфузионная терапия дали временный эффект, выражающийся, по сравнению с опытом, в некотором улучшении общего состояния и незначительном улучшении клинических и биохимических показателей крови. Исходная гематологическая картина у животных контрольной и опытной групп совпадала. Однако в процессе лечения мы наблюдали менее выраженную положительную динамику. Гематологические нарушения, характерные для интенсивно выраженной воспалительной реакции, устранились: у кошек на 13,4 ± 1,3 сут; у собак – 17,3 ± 1,2 сут; лошадей – 20,5 ± 3,1 сут; у крупного рогатого скота – 28,2 ± 2,4 сут (Р -0,01), что в 1,63; 1,66; 1,97 и 1,55 раза медленнее чем в группе сравнения.

У животных контрольной группы, заживление кожных ран первичным натяжением произошло у 86,6 %. Однако в процессе лечения наблюдали некоторые осложнения. Напряженный отек тканей, у животных с гнойно-ферментативным типом очищения ран (собака, лошадь, кошка) сохранялся до 8-10 дней, умеренный – до 3 недель (лошадь). У 3 % лошадей и 2,3 % собак наблюдали опускающиеся отеки на конечностях. Болевой синдром носил выраженный характер до 5-7 суток, что требовало дополнительного применения анальгезирующих средств. По нашему мнению, болезненность была обусловлена наличием напряженных отеков, вызывающих раздражение нервных окончаний, формированием зон парабиоза и абсорбцией продуктов биодеградации белка. У 65,7 % животных, после ПХО случайных ран, отмечали гиперемию в области швов, в 7,9 % (n = 11) случаях – локальные участки некроза. У 10,4 % (n = 14) животных, была применена вторичная хирургическая обработка, в результате которой осуществляли лечение с применением дренажных диализирующих устройств. У 68,4 % животных заживление операционных ран протекало благоприятно, без осложнений, их репарация наступала на 11 ± 2,1 сутки (Р > 0,001), что в 1,57 раза медленнее, чем в опытной группе.

Дата публикации: 28.09.2015 2015-09-28

Статья просмотрена: 164 раза

Проблема лечения ран относится к числу наиболее актуальных аспектов современной хирургии, так как среди незаразных болезней, регистрируемых в животноводстве, доля хирургической патологии составляет более 40 %. В хозяйствах промышленного типа имеет место ряд специфических этиологических факторов, например, особенности технологического процесса, гиподинамия, стрессовые воздействия, содержание большого количества животных на ограниченной площади, нарушение технологических режимов, ветеринарно-санитарных правил и др., что ведет к частому травмированию животных [1,11,17,19].

Травматизм и осложнения послеоперационных ран у крупного рогатого скота в последнее время приобретают широкое распространение, связанное не только с плохими условиями содержания и приобретенной резистентностью микроорганизмов, но и с генетическими особенностями организма высокопродуктивных животных [4,12,15]. Для них необходимо создание соответствующих зоогигиенических и ветеринарных условий, так как у высокопродуктивного молочного скота вследствие направленной селекции только на молочную продуктивность часто обнаруживается низкая резистентность, повышенная чувствительность к стрессам, патологическое реагирование даже на незначительно изменяющиеся условия содержания и кормления, а также неблагоприятные воздействия различных факторов внешней и внутренней среды. А при интенсивном использовании таких животных снижается их иммунная защита и на этом фоне гнойная раневая инфекция является, как правило, постоянным спутником каждого механического повреждения тканей животного [3,5,7,14].

Поэтому, несмотря на определенные успехи, достигнутые за последние годы в ветеринарной хирургии, актуальным вопросом остается поиск веществ, повышающих эффективность лечения гнойных кожно-мышечных ран у крупного рогатого скота [8,9].

При разработке новых лекарственных препаратов для достижения их лучшей терапевтической эффективности и безопасности особое значение имеет обоснование выбора мазевой основы. В последнее десятилетие в технологии лекарственных форм стали широко применяться редкосшитые акриловые полимеры (РАП) — производные акриловой кислоты, из которых при определенных условиях получают гели, которые используются в фармации качестве основ для мягких лекарственных форм [2,6,10,13].

В качестве веществ, ускоряющих процессы репаративной регенерации тканей, перспективна группа препаратов на основе каротиноидов. Сумма научных и практических знаний на сегодняшний день подтверждает высокую эффективность применения каротиноидов для улучшения процесса заживления ран (местное действие на кожу включает в себя антиокислительную и противовоспалительную активность, торможение процессов ороговения и стимуляцию синтеза гликозаминогликанов, усиление пролиферации эпителиоцитов, стимуляции гуморального и клеточного иммунитета и функции макрофагов и др.) [16,18].

Целью исследований явилось изучение применения мази гентадиовет на основе сополимера акриловой кислоты, включающей антимикробный комплекс и каротиноид при лечении гнойных кожно-мышечных ран у крупного рогатого скота.

Материалы и методы исследований. Эксперименты проводились в группах высокопродуктивного молочного скота голштинофризской породы, находящихся в общем стаде, но разделенных по половозрастным группам. У животных определяли клинический статус, планиметрические показатели ран, морфогистологические изменения тканей, проводили бактериологическое исследование раневого экссудата и содержимого ран.

Планиметрические исследования — проводили по методу Л. Н. Поповой (1942) и К.М Фенчина (1979). Прикладывали к ране прозрачную пленку, обводя маркером границы раны, зону воспалительного отёка, затем переносили полученные контуры на миллиметровую бумагу и подсчитывали площадь раневой поверхности, воспалительного отёка в см 2.

Полученные в опытах данные были подвергнуты биометрической обработке с помощью программного обеспечения фирмы Microsoft, фирмы Carl Zeiss. Критерий достоверности определяли по таблице Стьюдента.

Результаты исследований. По результатам диспансеризации хозяйства, в котором проводится эксперимент, установлено, что количество инфекционных осложнений в ранах различного типа достигает 58 % от общего количества хирургических патологий. Большинство воспалений в ранах приходится на период с апреля по октябрь, что ведет к экономическим потерям из-за снижения удоев, качества шкурного материала и затрат на лечение.

За время эксперимента лечению были подвергнуты 20 животных различных половозрастных групп, которых по принципу парных аналогов разбили на 2 группы по 10-ть коров в каждой (1-я опытная и 2-я контрольная).

При микробиологических исследованиях в 6 случаях был выделен staphylococcus aureus (наблюдались доброкачественные абсцессы), а в 14 случаях — staphylococcus aureus и enterococcus faecalic (наблюдались злокачественный горячий абсцессы). В 12 случаях отмечалось самовскрытие абсцессов, а в 8 случаях — сформировавшиеся абсцессы вскрывали (разрез проводился от центра флюктуирующей поверхности к ее краю с постановкой дренажа). В опытной группе, так же как и у контрольных животных, ежедневно рану промывали 3 % раствором перекиси водорода, в течение 5 дней в полость раны закладывали мазь гентадиовет, а в контроле использовали левомиколь. Параллельно с этим проводилась заместительная терапия (витаминотерапия).

При клиническом осмотре на первые сутки лечения у всех животных регистрировалась одинаковая клиническая картина: угнетение, повышение температуры тела, учащение пульса и дыхания, снижение руминации. В среднем к третьему дню лечения в опытной группе температура тела нормализовалась, в контроле подобный эффект проявился на пятые сутки.

В опытной группе воспалительные процессы быстро уменьшались, в то время как в контрольной группе до седьмых суток поверхность раны находилась практически на одинаковом уровне.

Через 5 дней после лечения проводилось диагностическое исследование на остаточное содержание патогенных микроорганизмов: в опытной группе их не было обнаружено, в контроле подобный результат зарегистрирован только на 7–11 сутки.

В целом, в подопытной группе отмечена положительная динамика заживления ран и благоприятное течение раневого процесса, в контрольной же группе отмечали более медленное уменьшение раневой поверхности. Применение мази гентадиовет сокращает срок заживления ран на 5–7 суток, в сравнении с аналогом.

При гематологическом исследовании крови животных с гнойными ранами установлено, что к концу экспериментального периода количество лейкоцитов в опытной группе снизилось на 18,5 %, а в контрольной на 9,6 %. А уровень гемоглобина повысился на 4,6 %, против 0,28 % соответственно по группам.

Одновременно наблюдали улучшение обменных процессов: уровень общего белка нормализовался, оптимизировался его фракционный состав.

Выводы. Применение мази гентадиовет ускоряет лечебный процесс при гнойных кожно-мышечных ранах у крупного рогатого скота. У опытных животных происходит более быстрое уменьшение планиметрических показателей раны, улучшение морфо-биохимических факторов крови сокращается срок заживления ран на 5–7 суток.

1. Антипов В. А. Перспективы применения природных алюмосиликатных минералов в ветеринарии / В. А. Антипов, М. П. Семененко, А. С. Фонтанецкий // Ветеринария. — 2007. — № 8. — С. 54–57.

2. Бета-каротин: применение при воспроизводстве животных и птицы /В. А. Антипов, А. Н. Турченко, В. С. Самойлов, Р. В. Казарян, С. П. Кудинова, Е. В. Кузьминова, //Краснодар, 2008. — 56 с.

3. Использование природных бентонитов в животноводстве и ветеринарии /М. П. Семененко, В. А. Антипов, Е. В. Кузьминова, А. Н. Трошин, Е. В. Тяпкина, А. В. Ферсунин //Краснодар, 2014. — 51 с.

4. Кузьминова Е. Лечебно-профилактические премиксы /Е. Кузьминова, М. Семененко, А. Фонтанецкий //Животноводство России, 2008. — № 1. — С. 61–63.

5. Кузьминова Е. В. Диагностическое значение биохимических показателей крови при гепатопатологиях /Е. В. Кузьминова, М. П. Семененко, Е. А. Старикова, Т. В. Михалева //Ветеринария Кубани, 2013. — № 5. — С. 11–13.

6. Кузьминова Е. В. Использование новых мазевых основ при лечении ран в эксперименте /Е. В. Кузьминова, М. П. Семененко, А. Н. Трошин, А. В. Тарасов /Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2015. — № 2. — С. 137–139.

7. Кузьминова Е. В. Применение биологически активных веществ для нормализации обменных процессов у животных /Е. В. Кузьминова, М. П. Семененко, Е. А. Старикова, Е. В. Тяпкина /Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2013. — № 11 (109). — С. 080–083.

8. Кузьминова Е. В. Фармакология и применение каротиноидов в ветеринарии и животноводстве /Кузьминова Елена Васильевна: диссертация доктора вет. наук //Кубанский Государственный аграрный университет. Краснодар, 2007. — 381 с.

9. Кузьминова Е. В. Фармакология и применение каротиноидов в ветеринарии и животноводстве /Кузьминова Елена Васильевна: автореферат диссертации …доктора вет. наук //Кубанский Государственный аграрный университет. Краснодар, 2007. — 47 с.

10. Основные принципы терапии животных при отравлениях /Е. В. Тяпкина, Л. А. Хахов, М. П. Семененко, Е. В. Кузьминова, В. А. Антипов, А. Н. Трошин, А. В. Ферсунин //Краснодар, 2014. — 29 с.

11. Перспективы расширения спектра применения гепатопротекторов в ветеринарии /Е. В. Кузьминова, М. П. Семененко, Е. А. Старикова, Е. В. Тяпкина, А. В. Ферсунин //Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета, 2014. — № 102. — С. 787–797.

12. Повышение сохранности и продкутивного здоровья импортного молочного скота / Антипов В. А., Семененко М. П., Басова Н. Ю., Турченко А. Н. и др. — Краснодар, 2009.

13. Рациональное использование лекарственных препаратов в ветеринарии /Е. Тяпкина, Л. Хахов, М. Семененко, Е. Кузьминова, В. Антипов, А. Трошин, А. Ферсунин //Краснодар, 2014. — 57 с.

14. Семененко М. П. Фармакология и применение бентонитов в ветеринарии /Семененко Марина Петровна: автореферат диссертации …доктора вет. наук /Кубанский Государственный аграрный университет. Краснодар, 2008. — 48 с.

16. Семененко М. Влияние препаратов карсел и моренит на биохимический статус крови /Семененко М, Кузьминова Е, Шипицин А. //Молочное и мясное скотоводство, 2006. — № 6. — С. 35–36.

17. Средство для профилактики и лечения токсикозов сельскохозяйственных животных /В. И. Семенецов, М. П. Семененко, В. А. Антипов, В. Ф. Васильев, И. А. Болоцкий, С. В. Пруцаков, А. К. Васильев, Е. В. Кузьминова — Патент на изобретение RUS 2327472. 20.12.2006.

18. Уразаев Д. Н. Эффективность препарата карсел при лечении и профилактике послеродовых осложнений у коров /Д. Н. Уразаев, В. А. Антипов, А. Н. Турченко, Е. В. Кузьминова, Р. В. Казарян //Вестник ветеринарии, 2001. — № 3(20). — С. 35.

19. Эффективные зооветеринарные технологии по повышению воспроизводства, сохранности и продуктивности животных / Антипов В. А., Меньшенин А. Н., Турченко А. Н., Семененко М. П. и др. — Краснодар, 2005.