Инфекционная анемия лососевых это
(1).jpg)
Об актуальных изменениях в КС узнаете, став участником программы, разработанной совместно с ЗАО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу выдаются удостоверения установленного образца.
Программа разработана совместно с ЗАО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу, выдаются удостоверения установленного образца.
Обзор документа
Проект Приказа Министерства сельского хозяйства РФ "Об утверждении Ветеринарных правил осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов инфекционной анемии лососевых" (подготовлен Минсельхозом России 23.11.2016)
Досье на проект
В соответствии со статьей 2.4 Закона Российской Федерации от 14 мая 1993 г. N 4979-1 "О ветеринарии" (Ведомости Съезда народных депутатов Российской Федерации и Верховного Совета Российской Федерации, 1993, N 24, ст. 857; Собрание законодательства Российской Федерации, 2002, N 1, ст. 2; 2004, N 27, ст. 2711; N 35, ст. 3607; 2005, N 19, ст. 1752; 2006, N 1, ст. 10; N 52, ст. 5498; 2007, N 1, ст. 29; N 30, ст. 3805; 2008, N 24, ст. 2801; 2009, N 1, ст. 17, ст. 21; 2010, N 50, ст. 6614; 2011, N 1, ст. 6; N 30, ст. 4590; 2015, N 29, ст. 4339, ст. 4359, ст. 4369) и с подпунктом 5.2.9 Положения о Министерстве сельского хозяйства Российской Федерации, утвержденного постановлением Правительства Российской Федерации от 12 июня 2008 г. N 450 (Собрание законодательства Российской Федерации, 2008, N 25, ст. 2983; N 32, ст. 3791; N 42, ст. 4825; N 46, ст. 5337; 2009, N 1, ст. 150; N 3, ст. 378; N 6, ст. 738; N 9, ст. 1119, ст. 1121; N 27, ст. 3364; N 33, ст. 4088; 2010, N 4, ст. 394; N 5, ст. 538; N 16, ст. 1917; N 23, ст. 2833; N 26, ст. 3350; N 31, ст. 4251, ст. 4262; N 32, ст. 4330; N 40, ст. 5068; 2011, N 6, ст. 888; N 7, ст. 983; N 12, ст. 1652; N 14, ст. 1935; N 18, ст. 2649; N 22, ст. 3179; N 36, ст. 5154; 2012, N 28, ст. 3900; N 32, ст. 4561; N 37, ст. 5001; 2013, N 10, ст. 1038; N 29, ст. 3969; N 33, ст. 4386; N 45, ст. 5822; 2014, N 4, ст. 382; N 10, ст. 1035; N 12, ст. 1297; N 28, ст. 4068; 2015, N 2, ст. 491; N 11, ст. 1611; N 26, ст. 3900; N 35, ст.4981, N 38, ст. 5297; N 47, ст. 6603; 2016, N 2, ст. 325), приказываю:
Утвердить прилагаемые Ветеринарные правила осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов инфекционной анемии лососевых рыб.
| Министр | А.Н. Ткачев |
УТВЕРЖДЕНЫ
приказом Минсельхоза России
от "__" ________ 2016 г. N ______
1. Настоящие Ветеринарные правила осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов инфекционной анемии лососевых рыб (далее - Правила) устанавливают обязательные для исполнения требования к осуществлению профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установлению и отмене на территории Российской Федерации карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов инфекционной анемии лососевых рыб, организации и проведению мероприятий по инфекционной анемии лососевых рыб, предотвращению их возникновения и распространения на территории Российской Федерации, определению границ территории, на которую должен распространяться режим ограничительных мероприятий и (или) карантина, в том числе в части определения очага болезни рыб, осуществления эпизоотологического зонирования, включая определение видов зон в целях дифференциации ограничений, установленных решением о введении режима ограничительных мероприятий и (или) карантина, ограничений производства, перемещения, хранения и реализации товаров, подлежащих ветеринарному контролю (надзору), из перечня, утвержденного актом, составляющим право Евразийского экономического союза, и требования к особенностям применения таких ограничений, в том числе проведению мероприятий в отношении производственных объектов, находящихся в карантинной зоне.
2. Инфекционная анемия - вирусная болезнь лососевых рыб (каспийского лосося, радужной и ручьевой форели), проявляется во все времена года у рыб разных возрастных групп.
3. Болезнь проявляется в острой и хронической формах и особенно усиливается при температуре воды 9,5 - 10°.
4. При остром течении болезни больные рыбы совершают вялые и судорожные движения, вращаются вокруг своей оси, упираются головой о дно бассейна. На кожном покрове появляются по бокам поперечные черные полосы или кожный покров становится совершенно черным.
5. Гибель основной массы рыб наступает через 7 - 10 дней после появления первых клинических признаков заболевания или болезнь переходит в хроническую форму. Гибель отдельных экземпляров рыб может наблюдаться и через 2 - 4 часа после появления признаков болезни, при этом естественная окраска кожного покрова сохраняется, но часто отмечается экзофтальмия. Среди производителей наиболее часто гибель отмечается за 2 - 3 месяца до взятия у них половых продуктов.
6. При патологоанатомическом вскрытии в брюшной полости обнаруживают жидкость желто-коричневого цвета. Желудок пуст, а на слизистой оболочке его обнаруживают только серо-желтую слизь. Слизистая кишечника гиперемирована, анус выпячен и иногда из него выделяется желтоватая слизь. Селезенка уменьшена в размере и имеет темно-вишневую окраску. Почки темно-серые, рыхлые, отечные, легко разрушаются и часто на поверхности их видны беловатого цвета полоски. Печень имеет желтый или серо-желтый цвет с участками гиперемии. В желчном пузыре содержится прозрачная слизь. В головном мозге отмечается резкая инъекция кровеносных сосудов и точечные кровоизлияния. Сердечная мышца бледная и дряблая. Иногда наблюдается гидроперикардит или обнаруживают фибриозные наложения под эпикардом.
7. При хроническом течении болезни годовики, двухлетки и ремонт лососей совершают быстрые поступательные движения. На радужной оболочке глаз обнаруживают участок гиперемии и кровоизлияний в виде красного кольца вокруг зрачка, экзофтальмию и полное выпадение одного или обоих глазных яблок из орбит.
8. При патологоанатомическом вскрытии обнаруживают те же изменения, что и при остром течении, а у производителей, кроме того, наблюдается сильная гиперемия ястыков.
9. Продолжительность болезни составляет 1 - 3 месяца. Как и при остром течении отмечается значительная гибель рыб.
10. Источник заражения - больные рыбы, их выделения, икра, трупы рыб, погибших от инфекционной анемии.
11. Возбудитель болезни передается при контакте больных рыб со здоровыми. Другие пути распространения болезни не изучены.
12. Диагноз на инфекционную анемию устанавливают на основании эпизоотологических, патологоанатомических данных и подтверждают биопробой.
13. Для проведения биологической пробы готовят предварительно суспензию из внутренних органов подозрительных по заболеванию инфекционной анемией рыб (включая обязательно почки) и пропускают ее через мембранные фильтры N 2 и N 3 или другие фильтры аналогичного размера. Фильтрат вводят внутримышечно 5 - 10 здоровым форелям или лососям в дозе по 0,25 мл.
14. При положительной биопробе через 2 - 3 дня должно погибнуть не менее 70% лососей и в течение 2 - 3 недель 100% форелей. При этом у форелей могут отсутствовать резко выраженные для инфекционной анемии клинические и патологоанатомические признаки заболевания.
15. При постановке диагноза необходимо дифференцировать инфекционную анемию от цирроидной дегенерации печени радужной форели, возникающей при скармливании рыбам кормов, бедных витаминами и содержащих повышенное количество протеина. На вскрытии при цирроидном перерождении печени отмечают обильное жировое перерождение внутренних органов и мышечной ткани. Печень принимает окраску песочного цвета и часто на поверхности видны беловатые пятна. На окрашенных гистосрезах (краской суданом-3) отмечают сильное переполнение печени жиром.
16. В отдельных случаях, когда указанных в инструкции данных для постановки диагноза на инфекционную анемию рыб недостаточно, проводят и гистологическое исследование. При этом обнаруживают эозинофильные включения в клетках печени, заднем отделе кишечника и в соединительной ткани почек.
17. Рыбоводные заводы и другие рыбоводные хозяйства, а также естественные водоемы, в которых установлено заболевание рыб инфекционной анемией, объявляют неблагополучными по этой болезни и на них накладывают карантин в порядке, предусмотренном Ветеринарным законодательством Российской Федерации.
18. Руководитель органа исполнительной власти субъекта Российской Федерации, осуществляющего переданные полномочия в сфере ветеринарии, при получении от специалистов госветслужбы и иных лиц информации об установлении диагноза на инфекционную анемию лососевых рыб в течение 24 часов:
а) утверждает распорядительный документ (распоряжение) об установлении ограничительных мероприятий (карантина);
б) направляет копию распоряжения в федеральный орган исполнительной власти в области нормативно-правового регулирования в ветеринарии и федеральный орган исполнительной власти в области ветеринарного надзора;
19. Перед наложением карантина обязательно выясняются следующие обстоятельства:
а) отмечалось ли данное заболевание в этом водоеме ранее и когда;
б) время появления первых признаков заболевания;
в) возможные пути формирования очага, то есть когда и откуда была завезена рыба, имелось ли заболевание в водоисточнике или в других хозяйствах связанных с этим водоисточником;
г) факторы, способствующие возникновению эпизоотии;
д) вывозилась ли рыба из неблагополучного водоема, куда и с какой целью.
20. По условиям карантина запрещаются:
а) ввоз икры, рыб из других водоемов и хозяйств, а также вывоз икры, рыб, кормовых водных организмов и растений из неблагополучных водоемов в благополучные;
б) совместная посадка в пруды и бассейны здоровой и больной рыбы;
в) отлов в естественных водоемах больных производителей и получение от них спермы и икры для оплодотворения;
г) дача в корм рыбе мяса и внутренних органов от больных производителей и рыб других возрастов;
д) посещение неблагополучного хозяйства посторонними лицами;
е) спортивный лов рыбы в естественных водоемах.
21. Оздоровление хозяйств и водоемов от инфекционной анемии проводят согласно плану, разработанному ветеринарной службой и утвержденному руководителем органа исполнительной власти субъекта Российской Федерации, осуществляющего переданные полномочия в сфере ветеринарии.
22. В целях ликвидации заболевания:
а) устанавливают тщательное ветеринарное наблюдение за находящимися в хозяйстве производителями и рыбой других возрастных групп;
б) изолируют рыб с начальными признаками заболевания и систематически отбирают погибшую икру и личинок;
в) уничтожают явно больных и погибших рыб;
г) выпускают в естественные водоемы только клинически здоровую молодь;
д) кормление рыб производят кормом, сбалансированным по протеиновому и аминокислотному составу и обогащенным микроэлементами;
е) за обслуживающим персоналом закрепляют при работе в каждом бассейне специально выделенный инвентарь;
ж) проводят дезинфекцию ложа прудов, бассейнов, лотков, инвентаря, оборудования, спецодежды обслуживающего персонала в соответствии с Ветеринарно-санитарными правилами для рыбоводных хозяйств;
з) при входе на территорию хозяйства, бассейнов, кормоцехов, мест хранения инвентаря и у других производственных объектов устанавливают дезковрики с 1-процентным раствором едкого натра для дезинфекции обуви обслуживающего персонала.
23. Карантин с рыбоводного завода или другого рыбоводного хозяйства снимают и хозяйство (рыбохозяйственный водоем) объявляют благополучным по инфекционной анемии по истечении одного года, а с естественного водоема - по истечении двух лет после полного прекращения заболевания и только после проведения комплекса ветеринарно-санитарных и рыбоводно-мелиоративных мероприятий.
Обзор документа
Разработаны ветеринарные правила по предотвращению распространения и ликвидации очагов инфекционной анемии лососевых рыб.
Дана общая характеристика заболевания. Определены обязательные требования к проведению профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установлению и отмене на территории России карантина и иных ограничений.
Полный текст:
Цель данной работы заключается в анализе современных научных представлений об инфекционной анемии лососевых (ИАЛ), этиологически связанной с одноимённым вирусом ISAV (infectious salmon anemia virus) (Orthomyxoviridae, Isavirus).
Обсуждение. ИАЛ представляет собой смертельно опасное заболевание рыб семейства Salmonidae, которое начало активно распространяться по лососевым рыборазводным фермам, начиная с конца XX века. На сегодняшний день, ИАЛ представляет серьёзную угрозу рыбной промышленности, поскольку отсутствуют не только анти-ISAV химиопрепараты и эффективные вакцины, но и научно-обоснованные представления об экологии ISAV. В предлагаемом обзоре обсуждаются данные об истории открытия ISAV, его таксономическом положении, строении вириона, структуре генома и экологии ISAV, клинических проявлениях, патогенезе и лабораторной диагностике, мероприятиях в эпизоотическом очаге по предотвращению распространения и профилактике ИАЛ, меры по защите от лососевых вшей и использованные подходы к разработке анти-ISAV вакцин. Принципиальное значение имеют данные о том, что ISAV способен передаваться лососевыми вшами – веслоногими рачками (Copepoda: Caligidae), что позволяет относить ISAV к экологической группе арбовирусов, передающихся путём биологической трансмиссии членистоногими (копеподами) позвоночным животным (лососевым рыбам). Это единственный известный пока пример, когда в качестве вектора для арбовирусов выступают представители ракообразных (Crustacea).
д.б.н., доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории микробиологии, 690922, Приморский край, г. Владивосток, о. Русский, ул. акад. Касьянова, д. 25;
заведующий вирусологической лабораторией, 690022, г. Владивосток, пр-т 100-летия Владивостоку, д. 159;
младший научный сотрудник,
младший научный сотрудник,
к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики,
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории вирусологии,
д.б.н., профессор; директор Научно-исследовательского института экспериментальной и клинической медицины Сибирского отделения Российской академии наук,
к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории экологии микроорганизмов Школы биомедицины Дальневосточного федерального университета,
к.б.н., доцент; учёный секретарь,
1. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Под ред. академика РАН Д.К. Львов. Москва: МИА, 2013. 1200 с.
2. Lvov D.K., Shchelkanov M.Yu., Alkhovsky S.V., Deryabin P.G. Zoonotic Viruses of Northern Eurasia. Taxonomy and Ecology. Elsevier Academic Press, 2015. 440 p.
3. Salama N.K., Murray A.G. A comparison of modelling approaches to assess the transmission of pathogens between Scottish fish farms: the role of hydrodynamics and site biomass // Prev. Vet. Med. 2013. V. 108. N4. P. 285–293. doi: 10.1016/j.prevetmed.2012.11.005.
4. Christiansen D.H., Østergaard P.S., Snow M., Dale O.B., Falk K. A low-pathogenic variant of infectious salmon anemia virus (ISAV-HPR0) is highly prevalent and causes a non-clinical transient infection in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) in the Faroe Islands // J. Gen. Virol. 2011. V. 92. Pt. 4. P. 909–918. doi: 10.1099/vir.0.027094-0.
5. Kibenge M.J., Iwamoto T., Wang Y., Morton A., Routledge R., Kibenge F.S. Discovery of variant infectious salmon anaemia virus (ISAV) of European genotype in British Columbia, Canada // Virol. J. 2016. V. 13. N 3. doi: 10.1186/s12985-015-0459-1.
6. Gustafson L., Ellis S., Bouchard D., Robinson T., Marenghi F., Warg J., Giray C. Estimating diagnostic test accuracy for infectious salmon anaemia virus in Maine, USA // J. Fish Dis. 2008. V. 31. N 2. P. 117–125. doi: 10.1111/j.1365-2761.2007.00873.x.
7. Godoy M.G., Suarez R., Lazo E.S., Llegues K.O., Kibenge M.J., Wang Y., Kibenge F.S. Genetic analysis and comparative virulence of infectious salmon anemia virus (ISAV) types HPR7a and HPR7b from recent field outbreaks in Chile // Virol. J. 2014. V. 11. N. 204. doi: 10.1186/s12985-014-0204-1.
8. Thorud K., Djupvik H.O. Infectious anaemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1988. N 8. P. 109–111.
9. Временная инструкция по борьбе с заболеванием лососевых рыб инфекционной анемией. Утверждена 01.12.1970 главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР. М.: Минсельхоз, 1970. 5 с.
10. Hastein T., Hill B.J., Winton J.R. Successful aquatic animal disease emergency programmes // Rev. Sci. Tech. 1999. V. 18. P. 214–227.
11. Hovland T., Nylund A., Watanabe K., Endresen C. Observation of infectious salmon anemia virus in Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. Fish Dis. 1994. V. 17. P. 291–296.
12. Dannevig B.H., Falk K., Krogsrud J. Infectivity of internal tissues of Atlantic salmon, Salmo salar L., experimentally infected with the aetiological agent of infectious salmon anemia (ISA) // J. Fish. Dis. 1994. V. 17. P. 613–622.
13. Dannevig B.H., Falk K., Press C.M. Propagation of infectious salmon anaemia (ISA) virus in cell culture // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 438–442.
14. Falk K., Dannevig B.H. Demonstration of infectious salmon anaemia (ISA) viral antigens in cell cultures and tissue sections // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 499–504.
15. Dannevig B.H., Falk K., Namork E. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney // J. Gen. Virol. 1995. V. 76. Pt. 6. P. 1353–1359. doi: 10.1099/0022-1317-76-6-1353.
16. Sommer A.I., Mennen S. Multiplication and haemadsorbing activity of infectious salmon anaemia virus in the established Atlantic salmon cell line // J. Gen. Virol. 1997. V. 78. Pt. 8. P. 1891–1895. doi: 10.1099/0022-1317-78-8-1891.
17. Mjaaland S., Rimstad E., Falk K., Dannevig B.H. Genomic characterization of the virus causing infectious salmon anemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.): an Orthomyxo-like virus in a teleost // J. Virol. 1997. V. 71. N 10. P. 7681–7686.
18. Krossoy B., Hordvik I., Nilsen F., Nylund A., Endresen C. The putative polymerase sequence of infectious salmon anemia virus suggests a new genus within the Orthomyxoviridae // J. Virol. 1999. V. 73. N 3. P. 2136–2142.
19. Альховский С.В., Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Львов Д.Н., Львов С.C., Самохвалов Е.И., Гительман А.К., Ботиков А.Г., Краснослободцев К.Г. Генетическая характеристика вируса Баткен (BKNV – Batken virus) (Orthomyxoviridae, Thogotovirus), изолированного из иксодовых клещей Hyalomma marginatum Koch, 1844 и комаров Aedes caspius Pallas, 1771 и Culex hortensis Ficalbi, 1889 в Средней Азии // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 33–37.
20. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Гительман А.К., Самохвалов Е.И., Ботиков А.Г. Таксономический статус вируса Тюлёк (Tyulek – TLKV) (Orthomyxoviridae, Quaranjavirus, группа Кваранфил), изолированного в Киргизии из клещей Argas vulgaris Filippova, 1961 (Argasidae) из норовых биотопов с гнёздами птиц // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 28–32.
21. Щелканов М.Ю., Федякина И.Т., Прошина Е.С., Пономаренко Р.А., Львов Д.Н., Чумаков В.М., Галкина И.В., Бурцева Е.И., Львов Д.К. Таксономическая структура Orthomyxoviridae: современное состояние и ближайшие перспективы // Вестник РАМН. 2011. N 5. С. 12–19.
22. Hastings T., Olivier G., Cusack R., Bricknell I., Nylund A., Binde M., Munro P., Allan C. Infectious salmon anaemia // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 1999. V. 19. P. 286–288.
23. Cook-Versloot M., Griffiths S., Cusack R., McGeachy S., Ritchie R. Identification and characterisation of infectious salmon anaemia virus (ISAV) haemagglutinin gene highly polymorphic region (HPR) type 0 in North America // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 2004. V. 24. P. 203–208.
24. McBeath A.J., Bain N., Snow M. Surveillance for infectious salmon anaemia virus HPR0 in marine Atlantic salmon farms across Scotland // Dis. Aquat. Organ. 2009. V. 87. P. 161–169. doi: 10.3354/dao02128.
25. Fourrier M., Lester K., Markussen T., Falk K., Secombes C.J., McBeath A., Collet B. Genotype promote viral fusion and activation by an ubiquitous host protease // PLoS One. 2015. V. 10. N 10. P. e0142020. doi: 10.1371/journal.pone.0142020.
26. Markussen T., Sindre H., Jonassen C.M., Tengs T., Kristoffersen A.B., Ramsell J., Numanovic S., Hjortaas M.J., Christiansen D.H., Dale O.B., Falk K. Ultra-deep pyrosequencing of partial surface protein genes from infectious salmon anaemia virus (ISAV) suggest novel mechanisms involved in transition to virulence // PLoS One. 2013. V. 8. P. e81571. doi: 10.1371/journal. pone.0081571.
27. Cardenas C., Carmona M., Gallardo A., Labra A., Marshall S.H. Coexistence in field samples of two variants of the infectious salmon anemia virus: a putative shift to pathogenicity // PLoS One. 2014. V. 9. P. e87832. doi: 10.1371/journal.pone.0087832.
28. Kibenge F.S.B., Garate O.N., Johnson G., Arriagada R., Kibenge M.J.T., Wadowska D. Isolation and identification of infectious salmon anaemia virus (ISAV) from Coho salmon in Chile // Dis. Aquat. Org. 2001. V. 45. P. 9–18. doi: 10.3354/dao045009.
29. MacWilliams C., Johnson G., Groman D., Kibenge F.S.B. Morphologic description of infectious salmon anaemia virus (ISAV)-induced lesions in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) compared to Atlantic salmon (Salmo salar) // Dis. Aquat. Org. 2007. V. 78. P. 1–12. doi: 10.3354/dao01866.
30. Nylund A., Wallace C., Hovland T. The possible role of Lepeophtheirus salmonis (Kroyer) in the transmission of infectious salmon anemia // In: Pathogens of wild and farmed fish: sea lice / Eds.: G. Boxshall, D. Defaye. – Chichester: Ellis Harwood Ltd., 1993. P. 367–373.
31. Gustafson L., Ellis S., Robinson T., Marenghi F., Endris R. Efficacy of emamectin benzoate against sea lice infestations of Atlantic salmon, Salmo salar L.: evaluation in the absence of an untreated contemporary control // J. Fish Dis. 2006. V. 29. N 10. P. 621–627. doi: 10.1111/j.1365-2761.2006.00761.x.
32. Gustafson L., Antognoli M., Lara Fica M., Ibarra R., Mancilla J., Sandoval del Valle O., Enriquez Sais R., Perez A., Aguilar D., Madrid E., Bustos P., Clement A., Godoy M.G., Johnson C., Remmenga M. Risk factors perceived predictive of ISA spread in Chile: applications to decision support // Prev. Vet. Med. 2014. V. 117. N 1. P. 276–285. doi: 10.1016/j.prevetmed.2014.08.017.
33. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Грипп: история, клиника, патогенез // Лечащий врач. 2011. N 10. С. 33–38.
34. Weli S.C., Aamelfot M., Dale O.B., Koppang E.O., Falk K. Infectious salmon anaemia virus infection of Atlantic salmon gill epithelial cells // Virol. J. 2013. V. 10. N 5. doi: 10.1186/1743-422X-10-5.
35. Aamelfot M., McBeath A., Christiansen D.H., Matejusova I., Falk K. Infectious salmon anaemia virus (ISAV) mucosal infection in Atlantic salmon // Vet. Res. 2015. V. 46. N 120. doi: 10.1186/s13567-015-0265-1.
36. Hellebø A., Vilas U., Falk K., Vlasak R. Infectious salmon anemia virus specifically binds to and hydrolyzes 4-O-acetylated sialic acids // J. Virol. 2004. V. 78. N 6. P. 3055–3062.
37. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Коронавирусы человека (Nidovirales, Coronaviridae): возросший уровень эпидемической опасности // Лечащий врач. 2013. N 10. P. 49–54.
38. Nerette P., Stryhn H., Dohoo I., Hammell L. Using pseudogold standards and latent-class analysis in combination to evaluate the accuracy of three diagnostic tests // Prev Vet Med. 2008. V. 85. N 3-4. P. 207–225. doi: 10.1016/j.prevetmed.2008.01.011.
39. Kibenge M.T., Opazo B., Rojas A.H., Kibenge F.S. Serological evidence of infectious salmon anaemia virus (ISAV) infection in farmed fishes, using an indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Dis. Aquat. Organ. 2002. V. 51. N 1. P. 1–11. doi: 10.3354/dao051001.
40. Hoare R., Thompson K.D., Herath T., Collet B., Bron J.E., Adams A. Development, characterisation and application of monoclonal antibodies for the detection and quantification of infectious salmon anaemia virus in plasma samples using luminex bead array technology // PLoS One. 2016. V. 11. N 7. P. e0159155. doi: 10.1371/journal.pone.0159155.
41. O'Shea B., Wadsworth S., Pino Marambio J., Birkett M.A., Pickett J.A., Mordue Luntz A.J. Disruption of host-seeking behaviour by the salmon louse, Lepeophtheirus salmonis, using botanically derived repellents // J. Fish Dis. 2016. doi: 10.1111/jfd.12526.
42. Dempster T., Kristiansen T.S., Korsøen Ø.J., Fosseidengen J.E., Oppedal F. Technical note: modifying Atlantic salmon (Salmo salar) jumping behavior to facilitate innovation of parasitic sea lice control techniques // J. Animal Sci. 2014. V. 89. N 12. P. 4281–4285. doi: 10.2527/jas.2011-3894.
43. Leclercq E., Davie A., Migaud H. Delousing efficiency of farmed ballan wrasse (Labrus bergylta) against Lepeophtheirus salmonis infecting Atlantic salmon (Salmo salar) post-smolts // Pest Manag. Sci. 2014. V. 70. N 8. P. 1274–1282. doi: 10.1002/ps.3692.
44. Lauscher A., Krossøy B., Frost P., Grove S., Kö-nig M., Bohlin J., Falk K., Austbø L., Rimstad E. Immune responses in Atlantic salmon (Salmo salar) following protective vaccination against infectious salmon anemia (ISA) and subsequent ISA virus infection // Vaccine. 2011. V. 29. N 37. P. 6392–6401. doi: 10.1016/j.vaccine.2011.04.074.
45. Wolf A., Hodneland K., Frost P., Hoeijmakers M., Rimstad E. Salmonid alphavirus-based replicon vaccine against infectious salmon anemia (ISA): impact of immunization route and interactions of the replicon vector // Fish Shellfish Immunol. 2014. V. 36. N 2. P. 383–392. doi: 10.1016/j.fsi.2013.12.018.
46. Rivas-Aravena A., Fuentes Y., Cartagena J., Brito T., Poggio V., La Torre J., Mendoza H., GonzalezNilo F., Sandino A.M., Spencer E. Development of a nanoparticle-based oral vaccine for Atlantic salmon against ISAV using an alphavirus replicon as adjuvant // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 45. N 1. P. 157–166. doi: 10.1016/j.fsi.2015.03.033.
47. Chang C.J., Robertsen C., Sun B., Robertsen B. Protection of Atlantic salmon against virus infection by intramuscular injection of IFNc expression plasmid // Vaccine. 2014. V. 32. N 36. P. 4695–4702. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.05.059.
48. Caruffo M., Maturana C., Kambalapally S., Larenas J., Tobar J.A. Protective oral vaccination against infectious salmon anaemia virus in Salmo salar // Fish Shellfish Immunol. 2016. V. 54. P. 54–59. doi: 10.1016/j.fsi.2016.03.009.
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.
| Лосось isavirus | |
|---|---|
| классификация Вирус | |
| (Неоцениваемый): | Вирус |
| Тип: | Negarnaviricota |
| Учебный класс: | Insthoviricetes |
| Порядок: | Articulavirales |
| Семья: | Orthomyxoviridae |
| Род: | Isavirus |
| Виды: | |
