Вакцина против ящура культуральная инактивированная

1.1. Моновалентная вакцина предназначена для профилактической иммунизации крупного рогатого скота, яков, буйволов, овец и коз против ящура, вызванного одним из серотипов A, O, C, Азия-1.

1.2. Моновалентная противоящурная вакцина изготовлена из вируса ящура, выращенного в суспензии клеток ВНК-21/2-17, сорбированного на гидроокиси алюминия, инактивированного формальдегидом с добавлением сапонина.

Для изготовления препарата используют один из следующих штаммов вируса

ящура: A , O , C, Азия-1.

По внешнему виду это жидкость светло-желтого цвета, с рыхлым, легко разбивающимся при встряхивании белым осадком, образующимся на дне флакона (при хранении).

1.3. Флаконы с вакциной должны быть герметично укупорены и снабжены этикетками, на которых указано наименование предприятия-изготовителя и его товарный знак, наименование препарата, количество препарата во флаконе, номер серии и госконтроля, дата изготовления (месяц, год), срок годности, условия хранения, обозначение технических условий, доза вакцины.

1.4. Вакцина пригодна для применения в течение 12 мес. после изготовления при соблюдении условий хранения и транспортирования.

Вакцину против ящура моновалентную типа A, типа O , типа C, типа Азия-1

на предприятии-изготовителе, в организациях Союзглавзооветснабпрома и у

потребителя хранят в сухом, темном и закрытом помещении при температуре 4 -

8 °С. Вакцина, подвергавшаяся замораживанию и в результате этого утратившая

коллоидные свойства и способность давать при встряхивании флакона

гомогенную устойчивость взвеси гидроокиси алюминия, к использованию

непригодна и подлежит выбраковке.

1.5. При наличии в вакцине посторонних примесей, хлопьев, плесени, при нарушении целости флакона, отсутствии этикетки, а также при неиспользовании препарата в день открытия флакона вакцина подлежит уничтожению.

2.1. Вакцину вводят строго подкожно крупному рогатому скоту, якам и буйволам в области средней трети шеи, овцам и козам - с внутренней стороны бедра в дозах, указанных на этикетках флаконов.

2.2. При проведении прививок необходимо соблюдать правила асептики и антисептики.

На месте введения вакцины поверхность кожи тщательно дезинфицируют 70-процентным раствором этилового спирта. Шприцы и иглы перед применением стерилизуют кипячением; для каждого животного используют отдельную иглу.

3.1. Вакцину применяют с профилактической целью и вынужденно в неблагополучном пункте и в угрожаемой по ящуру зоне при уточнении типа вируса.

3.2. В хозяйствах, где вакцину данного серотипа ранее не применяли, иммунизируют всех животных независимо от возраста, а также нарождающийся в течение месяца молодняк.

Ревакцинацию проводят через 2 мес., а затем взрослое поголовье иммунизируют через каждые 6 мес. после первой прививки, молодняк до 18-месячного возраста - через каждые 3 мес. после второй прививки.

3.3. Иммунитет у первично привитых животных наступает к 21-му дню, причем при соблюдении интервалов между ревакцинацией и последующими иммунизациями иммунитет к данному серотипу поддерживается постоянно.

3.4. Молодняк, родившийся от иммунизированных животных, вакцинируют с 4-месячного возраста, а в последующем по п. 3.2 настоящего Временного наставления.

4.1. За привитыми животными устанавливают наблюдение, имея в виду, что у части таких животных на месте введения вакцины отмечается местная реакция, проявляющаяся в виде небольшой болезненной припухлости, которая через 5 - 10 дней исчезает.

Общая реакция организма может проявляться в виде кратковременного повышения температуры тела на 1 - 2 °С в течение 1 - 3 сут.

4.2. Животным, у которых при ревакцинации наблюдается аллергическая реакция, вводят антигистаминовые препараты (димедрол, адреналин, атропин сернокислый, кофеин и др.).

4.3. В случае осложнений, возникших после введения вакцины, об этом немедленно сообщают Всесоюзному ордена Трудового Красного Знамени государственному научно-контрольному институту ветпрепаратов Минсельхоза СССР (123022, Москва, Д-22, Звенигородское шоссе, 5) и биопредприятию, изготовившему вакцину.

В соответствии с указанием Главного управления ветеринарии Минсельхоза СССР от 08.09.1982 "О порядке предъявления рекламации на биопрепараты" одновременно во ВГНКИ с нарочным направляют не менее 3 флаконов вакцины, помещенных в термос с температурой 2 - 8 °С, и сопроводительным документом, в котором указывают количество вакцинированных и заболевших животных, характер осложнений, результат типизации вируса, эпизоотическую обстановку по ящуру и другие данные, характеризующие течение заболевания.

Ассоциация содействует в оказании услуги в продаже лесоматериалов: куплю лвл брус по выгодным ценам на постоянной основе. Лесопродукция отличного качества.

В статье представлены результаты изучения протективной активности моновалентной эмульгированной противоящурной вакцины на морских свинках. Установлены сроки формирования напряженного иммунитета после вакцинации против ящура на основе определения динамики образования комплемент связывающих, преципитирующих и вируснейтрализующих антители контрольного заражения вирулентным штаммом типа Азия-1.

Ключевые слова: ящур, антитела, перевиваемая культура клеток ВНК-21/13, серотип.

Введение Ящур –трансграничная, остропротекающая высококонтагиозная вирусная болезнь парнокопытных животных, характеризующаяся лихорадкой, везикулярным поражением слизистых оболочек ротовой полости, кожи венчика и вымени, обильным слюнотечением, у молодняка – поражением миокарда и скелетных мышц. Инфекция может очень быстро распространяться на большие территории, поражая различных животных и нанося ощутимый экономический ущерб животноводческой отрасли [1, 2, 3, 4].

В настоящее время ящур продолжает оставаться самым распространенным заболеванием парнокопытных животных, способным протекать в виде эпизоотий и вызывать чрезвычайные ситуации в животноводстве с тяжелыми социально- экономическими последствиями. Анализ официальных данных МЭБ свидетельствует о довольно напряженной ситуации в мире по данной инфекции. Так, в 2004 -2005гг. неблагополучными по ящуру были 59 стран, в том числе 27 азиатских, 26 африканских и 5 южноамериканских [3, 4, 7]. В последние годы в мире отмечается тенденция к возрастанию числа вспышек ящура типа Азия-1. В сентябре 1999 года, впервые после 1991 года, ящур этого типа был зарегистрирован в Иране. В октябре 1999 года его установили в Турции, затем в 2000-2001 гг. он был занесен в Армению и Грузию, Грецию и Азербайджан, а в 2003 году – ив Таджикистан. В 2001-2005гг. вспышки ящура типа Азия-1 отмечены также в Афганистане, Индии, Китае, Монголии, Пакистане, Таиланде. В первом полугодии 2006 года о неблагополучии по ящуру официально в МЭБ сообщили 10 государств [5]. Первые случаи ящура данного типа в Китае были отмечены среди КРС в зоне предубойного содержания животных на бойне в Гонконге 9 марта 2005 года. В последующее время с апреля по декабрь 2005 года вспышки ящура типа Азия1 были зарегистрированы и на территории континентального Китая в 7 из 30, имеющихся провинций на юго-востоке, востоке, северо-западе и в центре страны. Особое внимание было обращено на две вспышки, зарегистрированные в мае и июне 2005 года в Синьцзян-Уйгурском автономном районе, который располагается на северо-западе КНР и граничит с Казахстаном, Киргизией, Таджикистаном, Монголией и Россией[6,8,9].

Во второй половине 2003 и в начале 2004 годов в южном регионе нашей страны были (Алматинской и Южно-Казахстанской областях) зарегистрированы случаи заболевания парнокопытных животных ящуром. В процессе проведения комплексных лабораторных исследований патологических материалов, поступивших из различных районов Южного региона были выделены полевые штаммы вируса ящура, которые при серологических исследованиях были идентифицированы как серотип Азия-1 возбудителя ящура. В предыдущие годы в результате проведенных научно-исследовательских работ нами получен производственный штамм для изготовления диагностических и профилактических препаратов.

Целью проведенных нами исследований являлось изучение иммунобиологических свойств экспериментальной серии культуральной инактивированной вакцины против ящура, изготовленной с использованием полевого штамма типа Азия-1.

Для получения биологической массы полевого штамма использовалась перевиваемая культура клеток ВНК-21/13. Штамм репродуцировали в 3-х литровых роллерных стеклянных сосудах. Культивирование вируса проводили следующим образом: на питательной среде Игла-МЕМ на растворе Хенкса,в роллерные сосуды со сформировавшимся монослоем вносили свежую порцию поддерживающей среды без сыворотки и вирусный материал в дозе 0,01 ТЦДкл. Инфицированные культуры выращивали на роллерном аппарате при 12 об/ч в термальной комнате при температуре 37° С до проявления признаков цитопатогенного действия на 80-90% площади монослоя клеток (ЦПД). Пораженные сосуды замораживали при температуре минус 20 ºС и размораживали при комнатной температуре, затем вирусную суспензию объединяли в один емкость и брали пробы для определения биологической активности и стерильности. Титр вируса выражали в Ig ТЦД50/мл и рассчитывали по Риду и Менча.

Очистку биологической массы полевого штамма проводили 2% хлороформом с последующей центрифугированием при 5000 об/мин в течение 30 мин.

Инактивацию вирусной суспензии серотипа Азия-1 проводили при температуре 25º С димеромэтиленимина в течении 30 часов.

Авирулентность вируссодержащей суспензии проверяли методом инфицирования перевиваемой линии клеток ВНК-21суточного возраста в течение трех последовательных пассажей.

После получения отрицательных результатов на контаминацию посторонней микрофлорой и результатов авирулентности вируссодержащую суспензию делили на две части: первую часть суспензии сорбировали гелью гидрата окиси алюминия, а другую смешивали с масляным адъювантом ISA-206 согласно протоколу по применению. После отстаивания в течение 24 часов вакцину считали готовой к применению.

В эксперименте по изучению иммуногенеза индуцируемой адсорбат вакциной и эмульгированной вакцинами использовали интактных взрослых морских свинок массой не менее 600-700 г. Животных иммунизировали внутримышечно в дозе 2 см3 по 1 мл в задние ноги. Через определенный промежуток времени у вакцинированных животных брали пробы крови для определения динамики образования специфических антител против возбудителя ящура в серологических реакциях связывания комплемента (РСК), преципитации (РДП) и нейтрализации (РН).

Постановка и учет результатов серологических реакций проводили согласно методическим указаниям.

Результаты исследований и их обсуждение При изучении иммунобиологических свойств инактивированной эмульгированной культуральной вакцины против ящура типа Азия-1 основными критериями показателя эффективности разработанной вакцины служили сроки индуцирования иммунитета, его напряженность и продолжительность. Иммунобиологические свойства эмульгированной вакцины изучали в сравнении с таковыми классической гидроокись алюминиевой вакцины (ГОА-вакцина) против ящура серотипа Азия-1.

Морских свинок делили на группы по три в каждой, для проверки сроков наступления и напряженности иммунитета, одну группу животных оставляли контрольной. Через 5, 10, 14 и 21 сутки после иммунизации, у животных брали пробы крови для определения уровня комплементсвязывающих, преципитирующих и вируснейтрализующих антител против полевого штамма серотипа Азия-1 вируса ящура. Для определения напряженности иммунитета на 14 и 21 сутки после введения препарата проводили контрольное заражение вирулентным вирусом данного типа. Результаты проведенных исследований представлены на таблице 1.

Таблица 1 – Титры комплементсвязывающих антител у морских свинок, привитых инактивированной культуральной ГОА- и эмульгированной вакцинами против ящура типАзия-1

Данные представленные в таблице1свидетельствует о том, что использованные противоящурные вакцины у морских свинок индуцировали образование специфических антител против возбудителя ящура к типу Азия-1на 5 сутки после иммунизации. В вышеуказанные сроки установлены комплементсвязывающие антитела в пробах цельной сыворотки. На 10 и 14 сутки после вакцинации в сыворотках крови лабораторных животных титр специфических антител повысился на один порядок и составил от 1:2 до 1:8постепенно повышался. Через 21 сутки после иммунизации в группе животных, привитых эмульгированной вакциной титры типоспецифических антител равнялась1:32, тогда как у животных вакцинированный сорбированным препаратом уровень антител не превысил 1:16.

У вакцинированных животных в течение наблюдаемого срока каких-либо патологических изменений в общем состоянии не отмечено, но в точках инъекций вакцины установлены плотные инфильтраты, которые в начале давали местную температурную реакцию, а затем рассасывались. Общее состояние животных были удовлетворительным, и температура тела оставалась на уровне физиологической нормы.

При оценке иммуногенной активности противоящурных вакцин и поствакцинального иммунитета определение уровня преципитирующих антител имеет одно из ключевых значений. При проведении массовых исследований животных определение содержания специфических антител в их сыворотки крови является одним из простых и достоверных способов методов диагностики ящура. В этой связи в процессе проведения экспериментов, нами изучена иммуностимулирующие активности сорбированной и эмульгированной вакцин и их влияние на динамику образования преципитирующих антител. Результаты исследований представлены в таблице 2.

Таблица 2 – Титры преципитирующих антител у морских свинок, привитых инактивированными культуральными вакцинами против ящура типа Азия-1

Результаты, представленные в таблице 2, свидетельствуют о том, что у морских свинок, иммунизированных противоящурными препаратами, на 5 сутки линии взаимодействия преципитирующих антител и специфического антигена установлены только в цельных пробах. В пробах сывороток, полученных на 10 и 14 сутки, титр антител повысилась до 1:8, а на 21 сутки до 1:16.

На следующем этапе исследований изучено влияние сорбированной и эмульгированной вакцин на процесс образования вируснейтрализующих антител против возбудителя ящура типу Азия-1. Данные антитела активно участвуют при нейтрализации возбудителя инфекции и являются важными показателями иммуногенной активности инактивированной вакцины против ящура. Результаты исследований представлены в таблице 3.

Таблица 3 – Титры вируснейтрализующих антител у морских свинок, привитых культуральными вакцинами против ящура типа Азия-1

В таблице 3 продемонстрированы результаты оценки иммуногенной активности моновалентных сорбированной и эмульгированной вакцин изготовленных из гомологичного штамма Азия-1 на лабораторных животных. Препараты активно индуцировали образование вируснейтрализующих антител против типоспецифического антигена вируса. В реакции нейтрализации специфические антитела были обнаружены на 5 день после прививки в разведении 1:2, далее титры антител повышались и на 21 сутки после иммунизации их уровень находился в пределах от 1:16 до 1:32.

Результаты изучения динамики накопления специфических антител в серологических тестах показали, что после введения животным инактивированных вакцин в их организме активно происходит интенсивная коррекция иммунной системы - антитела накапливаются в достаточно высоком уровне. Для оценки напряженности иммунитета привитых животных подвергали контрольному инфицированию вирулентным штаммом серотипа 3 Азия-1, гомологичной вакцинному, на 14 и 21 сутки в дозе 104 ИД50/01см вакцинации. Результаты исследовании представлены в таблице 4 .

Таблица 4 – Результаты контрольного заражения морских свинок, привитых опытными вакцинами.

Данные, приведенные в таблице 4, показывают, что различные типы инактивированных вакцин против ящура активно стимулируют образование противовирусного иммунитета и обеспечивают невосприимчивость привитых животных к заболеванию. При контрольном заражении иммунных животных через 14 суток после иммунизации, ГОА-вакцина предохраняет от вирулентного вируса 88,8% иммунизированных животных. Животные, привитые масляной вакциной были невосприимчивыми эпизоотическому штамму серотипа Азия-1в 100% случаях. Результаты эксперимента инфицирования вакцинированных и контрольной групп морских свинок (на

21 сутки) показали, что обе вакцины активно индуцировали достаточный уровень вируснейтрализующих антител против серотипа Азия-1, что обеспечивало напряженный иммунитет против вируса ящура серотипа Азия-1. У морских свинок контрольной группы на 4-5 сутки после инъекции вирулентного вируса отмечено развитие характерных клинических симптомов ящура и генерализованной формы болезни.

Выводы Проведенные исследования показали, что культуральные инактивированные вакцины, изготовленные с использованием эпизоотического изолята вируса ящура типа Азия-1, выделенного во время вспышек ящура в 2004 г. в южных регионах страны обладают высокой проективной активностью и создают невосприимчивость у 88,8% животных на 14 сутки после иммунизации. Адъюванты ГОА и ISA-206 усиливают и активно пролонгируют иммуногенез против вирусных белков.

Мищенко А.В. ФГБУ"ВНИИЗЖ", г. Владимир
Джаилиди Г.А. государственное управление ветеринарии Краснодарского края, г. Краснодар
Фомина С.Н., Мищенко В.А. ФГБУ "ВНИИЗЖ", г. Владимир
Шевкопляс В.Н. Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору Российской Федерации, г. Москва
Кривонос Р.А. государственное управление ветеринарии Краснодарского края, г. Краснодар
Черных О.Ю. ГБУ КК"Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория", г. Кропоткин

Ящур - острое высококонтагиозное заболевание парнокопытных и мозоленогих домашних и диких животных, быстро распространяющееся на огромных территориях многих стран и континентов. Занос вируса ящура в страну возможен в любое время [6, 7]. По современной классификации ФАО/МЭБ ящур относится к группе "трансграничных инфекций", то есть к заболеваниям, подлежащим обязательному декларированию, имеющим большую экономическую значимость, важность для торговли страны и продовольственной безопасности многих стран, которые могут легко распространяться на другие регионы и приобретать размах эпизоотий. Ящур является самой контагиозной болезнью животных. Возбудителем ящура является вирус, относящийся к семейству Picornaviridae, роду Aphovirus. Характерной особенностью ящура является почти абсолютная специфичность для парнокопытных животных. К ящуру восприимчивы более 100 видов домашних и диких парнокопытных и мозоленогих животных. Эпизоотологическая роль различных видов животных в качестве источника инфекции различна. Крупный рогатый скот считается хорошим индикаторным хозяином из-за чрезвычайной чувствительности этих животных к респираторному заражению и развитию тяжелых классических клинических признаков. Овцы и козы считаются накопителями вируса ящура - они поддерживают и сохраняют популяцию возбудителя, сами часто не проявляют признаков болезни [7, 9].

Система мер борьбы и профилактики ящура в Российской Федерации предусматривает предупреждение заноса возбудителя в страну систематическую вакцинацию жвачных животных в буферной зоне и контроль эффективности профилактической иммунизации. В буферную противо-ящурную зону входят южные регионы Российской Федерации, граничащие с Китаем, Монголией, Казахстаном, Азербайджаном и Грузией.

Массовая вакцинация, в случае идентичности производственного штамма эпизоотическим изолятам и соответствия используемых вакцин требованиям руководства МЭБ [3, 7, 9, 10], позволяет создать популяционный (стадный) иммунитет, предупредить вспышку заболевания, снизить уровень заболеваемости животных или купировать начавшийся эпизоотический процесс.

Вакцинация более 80% жвачных животных популяции является действенной мерой, позволяющей предотвратить распространение ящура [3, 5, 7, 9]. Для иммунизации животных должна применяться вакцина, изготовленная из вируса гомологичного полевым изолятам возбудителя, соответствующая требованиям стандарта МЭБ [3, 6, 9]. В буферной зоне жвачные животные иммунизируются вакциной ящурной культуральной сорбированной инактивированной. Взрослые животные в течение года вакцинировались двукратно, а молодняк до 18-ти месяцев - четырехкратно. Изготовление и контроль противоящурных вакцин регламентируется соответствующими документами (регламент, СТО), которые составлены с учетом рекомендаций Европейской фармакопеи, Европейской комиссии по борьбе с ящуром и МЭБ. Для профилактической иммунизации жвачных животных должна применяться инактивированная противоящурная вакцина, содержащая в прививной дозе не меньше 3 защитных (про-тективных) доз (3 ПД50). При ликвидации очагов ящура рекомендуется применять вакцину с защитной активностью более 6 ПД50 [3, 9]. В Российской Федерации контроль качества противоящурных вакцин проводится их производителями. Антигенность вакцины косвенно отображает ее иммунологическую эффективность. Считается, что при титре антител в реакции нейтрализации не менее 5,0 log, а в иммуноферментном анализе более 2,0 lg животные должны противостоять заражению вирусом ящура [3]. По поводу иммунного ответа коз иммунизированных противоящурной вакцины имеются только отдельные сообщения [4]. В работах, посвященных проблеме противоящурного иммунитета у вакцинированных овец и коз, приведены результаты исследований сывороток крови в реакции нейтрализации [1, 2, 4, 5, 6, 12]. Считается, что при наличии в крови вакцинированных овец уровня антител, равного или превышающего 3,0 log, животные становятся невосприимчивыми к вирусу ящура. В серии опытов было проведено изучение продолжительности и напряженности постакцинального иммунитета к вирусу ящура типа Азия-1 у овец, привитых ящурной культуральной поливалентной сорбированной инактивированной вакцины типов А, О и Азия-1. Данные этих исследований свидетельствуют, что напряженный иммунитет против ящура типа Азия-1 взрослых овец (массой тела 50 кг), иммунизированных вакциной, содержащей в прививной дозе 14 ПД50, сохранялся в течение 3-х месяцев, в то время как через 6 месяцев от ящура были защищены только 20% животных. Учитывались результаты исследований при наличии у контрольных овец генерализованной формы ящура на одной конечности [1, 2]. В тоже время согласно рекомендации МЭБ при проверке противоящурных вакцин у контрольных животных генерализация должна быть не менее, чем на трех конечностях [10]. Данные индийских ученых свидетельствуют, что овцы и козы защищены от заражения ящуром при титре антител, выявленных в ИФА, не ниже 1,8 lg (1:64) [12]. В серии опытов по испытанию противоящурных вакцин на молочных козах было установлено, что животные с титром вируснейтрализующих антител больше 2 lg были защищены от ящура. В сыворотках крови, отобранных через 8 суток после заражения вирусом ящуром, были обнаружены вируснейтра-лизующие антитела в титре 2,49 (2,42-2,56) lg [11]. Согласно инструкции по применению ящурной культуральной поливалентной сорбированной инактивированной вакцины типов А, О и Азия-1, иммунитет к ящуру у взрослых животных сохраняется до 6-ти месяцев.

В данной статье приведены данные анализов результатов исследований сывороток крови вакцинированных против ящура овец и коз в иммуноферментном методе, а также данные эпизоотологического обследования неблагополучных по ящуру пунктов.

Материалы и методы. Исследования доставленных проб сывороток крови от животных на наличие антител к вирусу ящура типов А, О и Азия-1 проводили с помощью жидкофазного блокирующего непрямого двойного сэндвич-варианта иммуноферментного анализа (ИФА), рекомендуемого для этих целей МЭБ и ФАО. Для постановки реакции использовали "Набор для определения противоящурных антител в сыворотке крови животных в ИФА", в соответствии с инструкцией по его применению. Иммунными считали животных, титры антител, в сыворотках которых были равны 1:32 и выше. Указанный критерий был определен по данным исследований сывороток крови вакцинированного крупного рогатого скота [8].

Результаты исследований. В сериях проведенного в отарах клинического осмотра вакцинированных против ящура животных было установлено, что козы в отличие от овец очень болезненно реагировали на инокуляцию противоящурных вакцин. Особенно болезненная реакция была у 1-4-х месячных козлят. Отмечены случаи гибели козлят в течение 30-45 минут после вакцинации. Протоколы патологоанатомических вскрытий трупов павших козлят свидетельствуют, что гибель животных наступила вследствие анафилаксии. В отдельных овец после вакцинации против ящура регистрировался отек головы. При выяснении причин такой реакции отдельных особей из отары было предположено, что указанный феномен вызван сенсибилизацией организма паразитами. У овец из отар, где была проведена дегельминтизация, подобные явления не регистрировались. Были зарегистрированы случаи аллергических реакций после введения противоящурной вакцины у коз, подвергнутых антибиотикотерапии послеродовых маститов. При эпизоотологическом обследовании очагов ящура, вызванных вирусом типа А, в селах Гродеково и Усть-Ивановка Тамбовского района Амурской области было установлено, что овцы и козы заболели ящуром через 1,5-3 месяца после последней вакцинации. В очаге ящура в селе Усть-Ивановка везикулярные поражения были выявлены у 70% поголовья крупного рогатого скота и 40% поголовья овец и коз. Указанные животные в 2013 году были двукратно вакцинированы, последний раз за 1,5 месяца до начала заболевания. Эти данные свидетельствуют о низкой полевой эффективности использованной противоящурной вакцины. В таблице 1 приведены результаты исследований сывороток крови вакцинированных против ящура овец из буферной противоящурной зоны Российской Федерации.

Таблица 1. Сводные данные о результатах исследований сывороток крови овец на наличие противоящурных поствакцинальных антител

В соответствии с указанием Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору от 20.10.2017 года №ФС-НВ-2/22689 Управление Россельхознадзора по городу Москва, Московской и Тульской областям информирует заинтересованных лиц, что в соответствии с пунктом 1 статьи 29 Договора о Евразийском экономическом союзе с 1 декабря 2017 года вводится ограничение в виде приостановления ввоза на территорию Российской Федерации лекарственных препаратов для ветеринарного применения, зарегистрированных в Республике Армения.

В этой связи с 1 декабря 2017 года разрешены для обращения на территории Российской Федерации только нижеследующие ветеринарные лекарственные препараты, зарегистрированные в Республике Армения:

Название ветеринарного препарата

Вакцина живая из штамма 55 против сибирской язвы животных, аттенуированная

Научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии

Формолвакцина против эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота и овец гидроокисьалюминиевая

Вакцина против брадзота, энтеротоксемии, злокачественного отека овец и дизентерии ягнят, гидроокисьалюминиевая

Вакцина против рожи свиней из штамма ВР2, сухая культуральная

Сыворотка против сибирской язвы сельскохозяйственных животных

Сыворотка против пастереллеза крупного рогатого скота, овец и свиней

Вакцина против ринотрахеита кур-несушек, селекционных кур и индеек Нобилис РТ инак (Nobilis RT inac)

Вакцина против инфекционного бронхита, болезни Ньюкасла, синдрома снижения яйценосности птиц Нобилис ИБ+НД+ЕДС (Nobilis IB+ND+EDS)

Вакцина против ящура поливалентная из штаммов А/Иран-2005, 0/Грузия-2000, Азия-1/Грузия-2001, выращенная в культуре клеток ВНК-21, сорбированная

Вакцина против ящура поливалентная из штаммов А, О, Азия-1, культуральная, сорбированная, инактивированная

Вакцина против ящура поливалентная из штаммов А/Иран-2005, О/ПанАзия-2, Азия- 1/Грузия-2001, выращенная в культуре клеток ВНК-21, сорбированная

Вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и энтерококковой инфекций свиней, ассоциированная, инактивированная

Вакцина против рожи и парвовирусной инфекции свиней, инактивированная Порцилис Эри+Парво (Porcilis Егу+Parvo)

Вакцина живая из штамма 55 против сибирской язвы животных, аттенуированная

Вакцина против бешенства животных, инактивированная Нобивак Рабиес (Nobivac Rabies)

Вакцина против лептоспироза собак, инактивированная Нобивак Лепто (Nobivac Lepto)

Вакцина против бешенства и лептоспироза собак, инактивированная Нобивак РЛ (Nobivac RL)

Вакцина против вирусной геморрагической болезни кроликов Раббивак-В

Вакцина против реовирусной инфекции птиц Нобилис Рео1133 (Nobilis Reo 1133)

Формолвакцина против эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота и овец гидроокисьалюминиевая

Лечебный препарат от грибковых заболеваний пчел – Фумисан

Лечебный препарат от гнильцовых болезней пчел – Оксивит

Лечебный препарат от варроатоза пчел – Бипин

Лечебный препарат от нозематоза пчел – Ноземат

Вакцина против атрофического ринита свиней инактивированная РиниПиг (RhiniPig)

Вакцина (бактерин-токсоид) для профилактической иммунизации свиней против неонатальной диареи Литергард LT-C (Litterguard LT-C)

Вакцина для профилактики клостридиозов и пастереллеза крупного рогатого скота инактивированная ВанШотУльтра8 (OneShotUltra8)

Вакцина против респираторного микоплазмоза птиц инактивированная, эмульгированная МГ-Бак (MG-Bac)

Вакцина для профилактики цирковирусной инфекции у свиней инактивированная Сувакцин РСV2 (Suvaxyn PCV2)

Вакцина против цирковирусной инфекции свиней инактивированная, эмульгированная Порцилис РCV ID (Porcilis PCV ID)

Вакцина против энзоотической пневмонии свиней инактивированная, эмульгированная Порцилис М Hyo ID ONCE (Porcilis M Hyo ID ONCE)

Туберкулин очищенный (ППД) для млекопитающих

Сыворотка гемолитическая для реакции связывания комплемента (РСК) из крови кролика

Вакцина против болезни Ньюкасла и инфекционного бронхита птиц инактивированная BIO-VAC NDV6/10-H120 (BIO-VAC NDV6/10-H120)

Вакцина против болезни Марека живая с разбавителем Пулвак Марек СV1+HVT (Poulvac Marek CVI+HVT)