Серологическое исследование на бешенство

проблема и меры борьбы

Бешенство – широко распространенная в мире острая зоонозная нейроинфекция, возбудителем которой является РНК-содержащий вирус, относящийся к отряду Mononegavirales, семейству Rhabdoviridae, роду Lyssavirus и являющийся единственным из царства Virae, поражающим всех теплокровных животных, в т.ч. человека со 100 % летальностью.

пути заражения бешенством

Основной путь заражения бешенством – через укус или при попадании слюны больного животного на повреждённую поверхность кожи.

Зафиксированы случаи заражения бешенством людей при трансплантации органов и тканей, а также аэрогенным путём.

Инкубационный период может длиться от нескольких дней до нескольких лет.

Вирус бешенства, в основном, поддерживается в рамках двух взаимопроникающих экологических циклов:

Городское бешенство – чаще всего обнаруживается у собак и кошек и элиминируется в ходе программ вакцинации;

Бешенство в дикой природе – имеет широчайшее распространение среди разных видов животных (рыжие и бурые лисы, песцы, еноты, енотовидные собаки, волки, барсуки, скунсы и летучие мыши). Этот цикл может быть значительно уменьшен при помощи вакцинации с использованием приманок, содержащих вакцину, которые разбрасываются в местах обитаниях животных.

Согласно МКТВ (Международный комитет по таксономии вирусов), в настоящее время существует 14 видов лиссавирусов. Классический вирус бешенства (ВБ) относится к первому генотипу.

В последнее время остро стоит проблема передачи лиссавирусов через летучих мышей. Это новая значимая для человека угроза, требующая более тщательного анализа, так как в антигенном отношении вирус полностью отличается от классического вируса бешенства, но также относится к лиссавирусам.

Эпидемиология бешенства

Основные методы контроля бешенства в Российской Федерации:

Выявление антигена

Выделение вируса в культуре клеток (RTCIT)

Биопроба на мышах (MIT)

До недавнего времени основным способом накопления вируса бешенства считался метод биопробы на беспородных белых мышах (MIT). Это высокочувствительный метод, однако, его недостатками являются высокая стоимость исследования, длительное содержание заражённых животных (30 суток), и необходимость подтверждения результатов в РИФ. В настоящее время для выделения ВБ используют метод накопления вируса в культуре клеток мышиной нейробластомы (RTCIT), который, согласно рекомендациям ВОЗ, должен полностью заменить MIT (WHO 2005, OIE, 2010, EFSA 2010).

Выявление вирусного генома методом полимеразной цепной реакции ПЦР (PCR)

Многие лаборатории используют для диагностики бешенства ПЦР-метод. Обладая несомненными преимуществами по ряду параметров ПЦР- метод, тем не менее не рекомендован ВОЗ для рутинной диагностики бешенства вследствие высокого риска контаминации и получения ложноположительных результатов (WHO 2005).

Серологические методы выявления антител к вирусу бешенства:

RFFIT (rapid fluorescent focus inhibition test) - тест быстрого торможения фокуса флюоресценции

FAVN (fluorescent antibody virus neutralisation test) - флюоресцентный вируснейтрализующий тест (реакция нейтрализации вируса). Позволяет количественно определить уровень антирабических антител в МЕ/мл.

ELISA (ИФА) – иммуноферментный метод. Данный метод менее чувствительный, чем FAVN, и применяется для определения уровня антирабических антител после применения оральной вакцинации у диких животных.

Метод RFFIT и метод FAVN выполняются на живой культуре клеток с добавлением вируса бешенства в реакцию. Сами тесты трудоёмки и требуют дорогостоящего оборудования и квалифицированных специалистов

Кроме вышеперечисленных утвержденных методик существуют такие методы диагностики бешенства как: иммуноцитохический (ICC), гибридизации in-situ (ISH), иммунохроматографический.

Специфическая профилактика бешенства

Основой специфической профилактики бешенства является использование эффективных антирабических вакцин, способных вызывать формирование напряженного и длительного антирабического иммунитета.

Для вакцинации домашних животных используют зарегистрированные в РФ отечественные и зарубежные инактивированные антирабические вакцины, которые различаются по безопасности и эффективности.

Антирабические вакцины готовят из штамма ERA-CB20M вируса бешенства, полученного путем адаптации вакцинного штамма ERA к культуре клеток ВНК-21.

Одним из авторов и разработчиков штамма был известный в нашей стране и за рубежом рабиолог, доктор медицинских наук Сергей Васильевич Грибенча (18.10.1937 – 30.04.2016).
Он внёс существенный вклад в изучение биологических вариаций лиссавирусов, патогенеза, современных методов диагностики и профилактики бешенства.

Штамм ERA-CB20M характеризуется высокой иммуногенностью, обладает высокой степенью гомологии по нуклеопротеидному и гликопротеидному белкам к штаммам уличного вируса бешенства, циркулирующих на территории РФ и стран СНГ.

Кроме того, наблюдалось количественное уменьшение уровня ИЛ-4 и ИЛ-5 – цитокинов, индуцируемых иммунной системой при возникновении воспалительных процессов, и в данном случае это отражает большую безопасность данных вакцин для организма собак и кошек.

Ретроспективный пятилетний анализ антирабической истории привитых собак и кошек показал отсутствие каких-либо отклонений в состоянии здоровья (поведенческие реакции, аппетит, угнетенность и т.д.) и побочных эффектов от применения данных вакцин.

Оценка напряженности антирабического иммунитета

Результат исследований по оценке напряженности антирабического иммунитета позволяет ответить на основной вопрос: заболеет ли человек или животное после инфицирования вирусом бешенства?

Оценка напряженности антирабического иммунитета осуществляется методом количественного определения уровня вируснейтрализующих антител в сыворотке крови восприимчивых животных (FAVN). Защитным уровнем считается титр антител ≥ 0,50 МЕ/мл.

Где проводить серологические исследования?

В нашей лаборатории за период 2006 – 2016 гг. методом FAVN было исследовано более 900 проб сывороток крови собак и более 400 проб сывороток крови кошек, различного пола, возраста и породы и показано, что такие факторы, как вид животного, порода, кратность вакцинации, а также индивидуальные особенности иммунной системы оказывают существенное влияние на его формирование иммунитета. Так у 19% собак и у 5 % кошек после однократной вакцинации независимо от типа антирабических вакцин, в т.ч. известных зарубежных производителей, титр вируснейтрализующих антител был менее 0,5 МЕ/ см 3 , т.е. ниже протективного уровня (за рубежом процент таких животных составляет 7 и 2 соответственно). При этом наибольшее число таких случаев отмечено у собак декоративных пород.

Приведенные факторы, оказывающие влияние на формирование антирабического иммунитета, должны учитываться при вакцинации собак и кошек, для чего рекомендуется проводить оценку содержания вируснейтрализующих антител, особенно у животных из неблагополучных по бешенству территорий.

Зав. отделом диагностики, терапии и профилактики инфекционных болезней,
к.в.н.,
Непоклонова И.В.

Все серологические исследования по определению титра антирабических антител у всех видов млекопитающих можно сделать в нашей лаборатории и получить международный антирабический сертификат . С точки зрения безопасности животных и их хозяев такие исследования очень важны, даже если вы не уезжаете за границу, а просто едете со своим питомцем в деревню или на дачу.

Контакты

Всю необходимую информацию вы можете получить

Что нужно для перевозки животного в страны ближнего и дальнего зарубежья или для перевозки в пределах Российской Федерации (для участия в выставке, продажи)?

Что нужно для перевозки животного по городу Москве (для участия в выставке, продажи в зоомагазине)?

Сколько действительны справки?

Форма №1 и Форма № 4действительны в течении 5 дней с момента выдачи и до момента начала перевозки животного.

Что такое ветеринарный сертификат форма №5а?

В пункте пересечения через государственную границу Российской Федерации, сотрудниками Россельхознадзора, осуществляется замена ветеринарного свидетельства формы №1 на ветеринарный сертификат международного образца – формы №5а.

Граждане, выезжающие за рубеж всеми видами транспорта (на самолете, поезде, автомобиле) могут заранее, а именно - в течение 5 дней до начала перевозки животного оформить международный ветеринарный сертификат формы №5а на Киевском вокзале или в аэропорту в день отлета (пограничный контрольный ветеринарный пост - ПКВП, режим работы-круглосуточно). Форма №5а действительна в течение 90 дней при нахождении за пределами РФ.

Если вы получили международный сертификат формы №5а, но до окончания срока ее действия (90 дней) вернулись на короткое время в Россию, а потом снова решили ехать за границу нужно ли получать опять форму №1?

Международный сертификат формы №5а действителен в течение 90 дней при нахождении за пределами Российскй Федерации, поэтому при пересечении границы Российской Федерации она утрачивает свою силу и при необходимости нового выезда за рубеж необходимо вновь получить ветеринарное свидетельство формы №1 и обменять его на международный сертификат формы №5а, который будет действителен в течение 90 дней вашего нахождения за границей.

Какие требования к вакцинации при перемещении животного по России или зарубежные страны?

Для перевозки животных по территории России требуется только вакцинация против бешенства. Для перевозки в страны ближнего и дальнего зарубежья необходима комплексная вакцинация против основных вирусных инфекций, включая бешенство: не менее 30 дней от даты вакцинации против бешенства (для стран Таможенного союза - 21 день), если животное вакцинировано впервые, и не менее 14 дней после ежегодной вакцинации

Провоз щенков и котят по территории Российской Федерации, в страны ближнего и дальнего зарубежья разрешен через 30 дней после проведения вакцинации против бешенства, т.е. не ранее 4 месячного возраста. (Письмо Россельхознадзора от 11.04.2014 №ФС-АС-7/5901).

Для вывоза животных за пределы РФ необходимо представить ветеринарные требования страны, в которую будет ввозиться животное.

Сколько животных можно оформить по 1 сопроводительному документу?

По ветеринарному свидетельству формы №1 по России – до 5 животных

По ветеринарному свидетельству формы №1 за рубеж - не более 2 животных. Для перевозки более 2 животных за рубеж требуется разрешение Росельхознадзора.

По ветеринарной справке формы №4 – не более 2 животных

Нужно ли чипирование для перевозки животного?

Для перемещения животных по территории Российской Федерации чипирование не является обязательным требованием

Для перемещения животного за пределы Российской Федерации - в большинство стран требуется наличие чипа. Одно из важных требований - чипирование должно быть проведено не менее, чем за сутки до вакцинации против бешенства.

Что такое титр антител к бешенству?

Определение титра антител к бешенству обязательно при ввозе в ряд зарубежных стран, он показывает напряженность иммунитета (невосприимчивость организма к вирусу бешенства). Обычно их должно быть не менее 0,5 МЕ/мл, но каждая страна устанавливает свои требования к уровню антител против бешенства. Анализ должен быть выполнен аккредитованной лабораторией. В 2003 г. в связи со вспышкой бешенства, была выпущена директива ЕС №2003/60/ЕС от 24.01.2003г. о порядке ввоза животных в страны Евросоюза. Эту практику используют и другие сраны, не входящие в Евросоюз, например, Япония, Израиль, Тайвань, Объединенные Арабские Эмираты.

В России исследование на титр антител к бешенству проводится в Клинико-диагностическом центре ФГБУ ВГНКИ - г. Москва, Звенигородское шоссе д.5, стр. 1 Отдел клинических исследований

Требования к сдачи анализа на антитела к вирусу бешенства:

• Животное должно быть не моложе 4 месяцев
• Анализ проводится не ранее, чем через 30 дней после последней вакцинации от бешенства и не позднее, чем за 2 мес до окончания срока действия вакцины.
• Животное обязательно должно быть чипировано! до вакцинации против бешенства
• Ветеринарный паспорт на животное (данные на владельца и животное должны быть заполнены на английском языке)
• Для исследования берется кровь (сыворотка)
• Срок исполнения анализа - 14 дней, срочное иссследование – 3 дня.

О требованиях сдачи анализа в конкретной стране следует уточнять заранее в посольстве страны

Подробнее о сдаче анализа на титр антител к бешенству можно прочитать Здесь

Сухарьков А.Ю, Назаров Н.А., Метлин А.Е. ФГБУ ВНИИЗЖ

Бешенство - острая инфекционная болезнь животных и человека, протекающая с тяжелым поражением нервной системы, как правило, с летальным исходом. Бешенство регистрируется во многих странах мира, в том числе и в России.

Диагностика бешенства играет важную роль для оказания своевременной постэкспозиционной лечебной помощи людям и борьбы с бешенством среди животных [7]. Она должна быть быстрой и достоверной, так как это необходимо для оценки риска, который угрожает людям.

В настоящее время базовыми методами диагностики бешенства являются реакция иммунофлуоресценции (РИФ) и биологическая проба на мышах, а также выделение вируса на культуре клеток, постепенно заменяющее биологическую пробу на мышах [6]. Несмотря на высокую надежность и чувствительность этих методов, они имеют ряд недостатков. Основным недостатком биологической пробы на мышах и выделения вируса в культуре клеток является то, что для получения результатов исследования может потребоваться длительное время [11]. Точность постановки диагноза методом РИФ во многом зависит от наличия у персонала диагностических лабораторий необходимой квалификации. Кроме этого, для проведения диагностики с использованием этих методов, как правило, не годятся пробы с признаками частичного разложения мозговой ткани, в силу возможного получения лож-ноотрицательных результатов. Эти диагностические системы также малопригодны для широкомасштабного мониторинга бешенства. Перечисленных выше недостатков метод имму-ноферментного анализа (ИФА) не имеет. Этот метод в числе других рекомендован для диагностики бешенства Всемирной Организацией Здравоохранения (В0З) и Всемирной Организацией Охраны Здоровья Животных (OIE) [5]. Иммуноферментный анализ отличается простотой и быстротой выполнения, может обходиться без применения дорогостоящего оборудования в случае визуальной оценки результатов исследований. Он отлично подходит для проведения мониторинга бешенства, при этом позволяя интерпретировать полученные результаты с высокой степенью достоверности.

Ранее нами был разработан твердофазный непрямой сэндвич-вариант иммуноферментного анализа для диагностики бешенства животных, с использованием поликлональных антител, полученных на рибонуклеопротеин вируса бешенства [2]. Прямой сэндвич-вариант ИФА более быстрый по времени и менее затратный, чем непрямой.

Целью данной работы являлась разработка прямого сэндвич-варианта ИФА для диагностики бешенства и проведение сравнительных испытаний прямого и непрямого сэндвич-варианта ИФА.

Материалы и методы. Рибонуклеопротеин вируса бешенства (далее, РНП ВБ) выделяли из клеток ВНК-21, инфицированных вирусом бешенства (далее, ВБ), штамм ВНИИЗЖ, по методике, рекомендованной ВОЗ в руководстве "Лабораторная диагностика бешенства" [8]. Вирус бешенства, штамм ВНИИЗЖ, очищали и концентрировали из культурального вирусного сырья, инактивированного димером этиленимина [3]. Концентрацию белка в очищенных препаратах вируса и РНП вируса определяли по методу Лоури [9]. Степень чистоты полученных антигенов контролировали методом вертикального электрофореза в агарозном геле с додецилсульфатом натрия в денатурирующих условиях.

В качестве улавливающих использовали поликлональ-ные антитела к РНП ВБ, которые получали иммунизацией кроликов соответствующим антигеном. Очищенный РНП ВБ вводили животным внутримышечно три раза (0, 40, 54 дни) в дозе 400 мкг на голову.

В качестве детекторных использовали антирабические антитела морской свинки, которые получали иммунизацией животных очищенным ВБ. Антиген вводили животным внутримышечно четырехкратно в дозе 200 мкг на голову с интервалами в 1 неделю, 5 и 2 недели. При иммунизации морских свинок и кроликов первую инъекцию проводили с полным, а последующие - с неполным адъювантом Фрейнда "Sigma".

Через две недели после последней инъекции в сыворотках крови иммунизированных животных определяли титры специфических антител методом твердофазного непрямого варианта иммуноферментного анализа. Титровали с шагом три, начиная с разведения 1:1000. В дальнейшей работе использовали сыворотки крови с титрами антител к ВБ и РНП ВБ не ниже 1:243000. Из отобранных сывороток выделяли фракцию IgG методом трехкратного высаливания сульфатом аммония. Концентрацию белка в конечных препаратах определяли методом спектрофотомерии при длине волны 280 нм.

Поликлональные антирабические антитела морских свинок использовали для получения антирабического перокси-дазного коньюгата по методу Накане [4].

Для отмывки лунок планшетов от компонентов реакции использовали Трис-HCl буферный раствор с добавлением Tween-20 (ТБСТ).

В качестве субстрата для пероксидазы использовали ор-тофенилендиамин.

Для учета результатов непрямого сэндвич-варианта ИФА использовали антивидовой пероксидазный конъюгат к антителам морской свинки производства НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.Гамалеи (г. Москва) в разведении 1:1000.

Положительным контролем в ИФА служила инактивиро-ванная р-пропиолактоном [10] лиофилизированная 20%-ная суспензия мозговой ткани кролика, инфицированного ВБ штамма CVS. В качестве отрицательного контроля использовалась лиофилизированная 20%-ная суспензия мозговой ткани неинфицированного кролика.

Исследуемые образцы (пробы ткани головного мозга животных) поступали в ФГБУ "ВНИИЗЖ" из разных региональных ветеринарных лабораторий. Поступивший биоматериал до использования хранили при минус 20°С. Образцы мозговой ткани для исследования готовили следующим образом. В пенициллиновый флакон с Трис - НС1 буферным раствором помещали кусочки ткани головного мозга из разных отделов (продолговатый мозг, мозжечок, аммоновы рога, кора больших полушарий) в количестве, необходимом для приготовления 30%-ной суспензии. Содержимое флакона тщательно гомогенизировали путем интенсивного встряхивания и подвергали однократному замораживанию. Далее пробу подвергали частичному размораживанию при комнатной температуре, и интенсивно встряхивали для более полной гомогенизации. Затем содержимое флакона переносили в пластиковую центрифужную пробирку с крышкой в объеме 1,5 мл и центрифугировали в течение 20 минут при 1000g. Для исследования использовали супернатант в цельном виде. Оставшийся в пенициллиновом флаконе материал хранили при минус 200С.

Кроме прямого сэндвич-варианта ИФА пробы исследовали методами РИФ [1] и непрямым сэндвич-вариантом ИФА [2]. При исследовании проб головного мозга в РИФ использовали ФИТЦ-иммуноглобулин производства ФГБУ "ВНИИЗЖ".

Результаты и обсуждение. Исследования проб в прямом сэндвич-варианте ИФА выполняли по следующей схеме.

Сенсибилизация планшетов. Для сенсибилизации планшетов в лунки вносили поликлональные кроличьи антитела к РНП ВБ по 100 мкл в лунку, разведенные в карбонатно-би-карбонатном буферном растворе (рН 9,5) до концентрации 5 мкг/мл, и инкубировали в течение 18-20 ч при 4°С. Сенсибилизированный планшет 3 раза отмывали ТБСТ.

Внесение исследуемых проб и контрольных препаратов. В лунки вертикального ряда по очереди в трех повторностях вносили положительный, отрицательный, безантигенный (промывочный буферный раствор) контроли и исследуемые пробы по 100 мкл в лунку. Планшет инкубировали 1 ч при 37°С и затем трижды отмывали промывочным буферным раствором.

Внесение пероксидазного антирабического конъюгата. Рабочее разведение антирабического конъюгата с перокси-дазой хрена готовили на ТБСТ с добавлением 5%-ной нормальной сыворотки лошади. В лунки планшета вносили по 100 мкл приготовленного коньюгата, инкубировали 1 ч при 37°С и отмывали 5 раз промывочным буферным раствором. Рабочее разведение антирабического пероксидазного конъюгата предварительно определяли в прямом сэндвич-варианте ИФА методом последовательных разведений, с использованием положительного и отрицательного контрольных препаратов, которое составило 1:1500.

Внесение субстрат-хроматогенной смеси. Раствор субстрат-хроматогена вносили по 100 мкл на лунку. Инкубировали 20 минут при комнатной температуре в темноте, реакцию останавливали добавлением в каждую лунку 50 мкл 3н H2SO4.

Учет результатов . Результаты реакции учитывали с помощью сканирующего спектрофотометра "BioRad PR 2100" при длине волны 490 нм. Определяли среднюю оптическую плотность (ОП) безантигенного, положительного и отрицательного контролей, а также среднюю ОП тестируемых образцов. После этого рассчитывали ОП тестируемых образцов, положительного и отрицательного контролей, вычитая среднюю ОП безантигенного ряда. Согласно рекомендациям ВОЗ, расчетная ОП (ОПр) отрицательного и положительного контролей должна быть не выше 0,1 и не ниже 1,5 единиц, соответственно. Исследуемые образцы считали положительными, если их ОПр превышала ОПр отрицательного контроля на 0,1 единицы [5].

Для оценки диагностической специфичности разработанного прямого сэндвич-варианта ИФА исследовали 30 проб головного мозга от разных животных, отрицательных по бешенству в РИФ. Расчетная оптическая плотность отрицательных проб составила 0,013±0,0004, что свидетельствует о высокой специфичности разработанного ИФА, которая в данном исследовании составила 100%.

С целью измерения предела чувствительности разработанного метода провели анализ с использованием РНП ВБ известной концентрации. Проведенные исследования показали, что предел чувствительности метода находится в диапазоне 15-30 нг/мл. При этом предел чувствительности непрямого сэндвич-варианта ИФА, разработанного нами ранее [2], составил такую же величину.

Для изучения эффективности диагностики бешенства разработанным прямым сэндвич-вариантом ИФА в сравнении с другими методами, в том числе и непрямым сэндвич-вариантом ИФА, было исследовано 100 проб головного мозга животных, направленных в ФГБУ "ВНИИЗЖ" для исследования на бешенство. Результаты исследований представлены в таблице 1.

Таблица 1. Результаты исследований мозговой ткани животных, подозреваемых в заболевании бешенством, в прямом сэндвич-варианте ИФА, в сравнении с другими методами диагностики бешенства

Сведения для владельцев животных

Для разных стран могут быть разные условия ввоза животных, которые могут меняться, поэтому владельцам необходимо самим выяснять условия ввоза животных в страну на тематических ресурсах.

Метод исследования, сроки исполнения анализа

Титр антирабических вируснейтрализующих антител в сыворотке крови животного определяют в реакции нейтрализации на культуре клеток.

Длительность анализа c оформлением результатов исследования составляет 10 рабочих дней с момента получения подтверждения оплаты исследований.

Требования, предъявляемые к сывороткам крови животных

Для определения антител к вирусу бешенства у животных используют только сыворотку крови. Кровь берут в лицензированной ветеринарной клинике / лаборатории / СББЖ не ранее чем через 30 дней после последней антирабической вакцинации.

Для получения сыворотки крови проводят забор венозной крови при помощи инъекционной иглы в сухую чистую пластиковую пробирку в объеме не менее 2 мл. Антикоагулянты не добавлять! После забора крови ее выдерживают при 37°С в течение 30 минут для формирования сгустка крови. Далее осторожно отделяют сформировавшийся сгусток крови от стенок и помещают пробирку на 4°С на 30-60 минут. После этого пробу центрифугируют при 189 – 335 g (1500 – 2000 оборотов в минуту). По окончании центрифугирования осторожно, не захватывая осадок, отбирают надосадочную жидкость – сыворотку крови. Сыворотка крови должна быть прозрачная, с цветом от светлого до соломенно-желтого. Допускается легкая степень гемолиза (розоватый цвет). Необходимый объем сыворотки крови для исследования составляет 1,0 мл.

Не принимаются к исследованию цельная кровь или образцы с примесью форменных элементов крови, сыворотки крови с сильным гемолизом (темно-красного цвета), с осадком, мутные, с гнилостным запахом.

Пробирка для сыворотки крови должна быть пластиковая, герметично закрытая, крышка дополнительно герметизирована (парафильм, скотч) промаркирована устойчивым маркером и опечатана печатью ветеринарного учреждения, в котором проводили забор крови на исследование.

Правила транспортировки образцов сыворотки крови

В зависимости от длительности транспортировки пробы необходимо направлять в замороженном либо охлажденном состоянии в термоконтейнере. Пробирку с сывороткой максимально обезопасить от проливания образца или попадания в него влаги. Для примера: использовать 2 пакета со льдом, первый положить на дно контейнера, затем положить сыворотку в пластиковой, герметично закрытой, промаркированной пробирке и завернутую в целофановый пакет, второй пакет со льдом положить сверху. К контейнеру приложить (прикрепить, например скотчем) пакет документов. Все это упаковать в тару (пакет).

Вместе с образцами сывороток крови направляют сопроводительное письмо (Приложение 1) для исследований на наличие антител к вирусу бешенства, заверенное подписью ветеринарного врача и печатью ветеринарной клиники, где проводился отбор образцов.

К сопроводительному письму необходимо приложить:

1. копию ветеринарного паспорта животного (страница с данными о животном и владельце, страница с последней вакцинацией против бешенства), заверенную подписью ветврача и печатью ветеринарной клиники;

2. копию российского паспорта владельца для выписывания счета на оплату (данные о владельце, адрес проживания, электронный адрес);

3. копию заграничного паспорта владельца для оформления документов на вывоз.

Если в ветеринарном паспорте в графе "владелец" написан один человек, а вывозить будет другой человек, то от владельца нужна доверенность на имя того человека, который будет вывозить животное. Доверенность нужна на границе, в ветеринарном пункте. Правила ее оформления, пожалуйста, уточняйте в посольстве той страны, в которую Вы вывозите животное. Для постановки анализа данная доверенность не нужна.

В ряде случаев у молодых и старых животных, если они прививались впервые, может оказаться, что уровень антител ниже требуемой нормы в 0,5 международных единиц/мл. Это может быть обусловлено индивидуальными, породными особенностями животного, его физиологическим состоянием на момент вакцинации, качеством вакцины. В этом случае, мы рекомендуем пройти повторную вакцинацию и провести повторный анализ. Поэтому планируйте проведение анализа не накануне вылета.

Прием материала для исследования

референтную лабораторию по бешенству и BSE

600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец

Направляется сыворотка крови для исследования на наличие антител к вирусу бешенства от:

пол________________________, дата рождения_________________________,

индивидуальный идентификационный номер (чип)_______________________

серия и номер______________________________________________________

дата взятия крови для анализа ________________________________________

ФИО владельца ____________________________________________________

Адрес, индекс владельца_____________________________________________

Телефон, E-mail владельца___________________________________________

Прилагаются следующие документы: 1. копия рос. паспорта владельца (стр. 2-3, 5-6);

2. копия загран. паспорта владельца (стр. с фотографией); 3. копия паспорта животного.

ФИО владельца ____________________________________________________

ФИО вет. врача ____________________________________________________

название организации (вет. клиника / лаборатория / СББЖ), адрес, телефон