Курсовая по эпизоотологии туберкулез крс

Для иммунизации в хозяйстве используется вакцина ТФ - 130. Вакцина прививается двукратно с интервалом 10 дней в область бедра в

дозе 5 мл. иммунитет у телят формируется к 21 - 30 дню после второго введения вакцины и сохраняется 8-10 месяцев.

Сибирская язва - остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикацией. Восприимчивы многие виды животных и человек.

Споры сибирской язвы чрезвычайно устойчивы во внешней среде. Для предупреждения вспышки сибирской язвы, всех восприимчивых по этому заболеванию - вакцинируют.

Вакцина живая, споровая против сибирской язвы животных из штамма 55. Молодняк крупного рогатого скота вакцинируют в трех и шестимесячном возрасте. Взрослых животных вакцинируют один раз в год. Вакцину вводят средней трети шеи, подкожно, в дозе один мл. Место введения обрабатывают предварительно 70%- ным. спиртовым раствором. Перед вакцинацией все поголовье осматривается и проводится его термометрия. Слабых, истощенных и на последнем месяце беременности животных нельзя прививать. Допрививку этих животных проводят после их выздоровления.

Бешенство - остро протекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками диссеминированного полиоэнцефаломислита. Восприимчивы все виды домашних животных и также человек. Вирус бешенства постоянно циркулирует в природе среди диких плотоядных (лисицы, волки, шакалы и др.), которые могут соприкасаться и заразить собак, которые в свою очередь заражают сельскохозяйственных животных. Вот почему необходимо иммунизировать собак, особенно приотарных. Для вакцинации используют адювантно - депонированную живую антирабическую вакцину АЗВИ, в дозе 2 мл.

Аллергическая диагностика туберкулеза - Является одним из основных методов прижизненной диагностики. Используют 2 метода:

внутрикожный - применяется у всех видов животных и птиц (кроме лошадей); глазной - применяется для диагностики туберкулеза у лошадей. Для туберкулинизации применяют сухой очищенный (ППД) туберкулин для млекопитающих. Туберкулин вводят в среднюю треть шеи, в дозе 0,2 смЗ. Введение осуществляют безигольным инъектором БИ-7. Место инъекции выстригается и дезинфицируется 70% спиртом. Учет и оценку реакции по туберкулезу у крупного рогатого скота проводят через 72 часа. Реакция считается положительной, если утолщение кожной складки (по сравнению с толщиной складки рядом -неизменной) 3 мм и более.

Важным моментом в диагностике инфекционных болезней является исследование нативной крови или ее сыворотки. Кровь у крупного рогатого скота берут из яремной вены. Волосы на месте взятия крови выстригают, далее обрабатывают 70% спиртовым раствором. Берут кровь в объеме 7-10 смЗ. Для серологического исследования из крови необходимо получить сыворотку. Существует следующая техника получения сыворотки крови:

1. Полученную кровь ставят на 2 часа в теплое место.

2. Делают отводку сгустка крови стерильной проволокой.

3. Пробирки ставят в прохладное место для отстаивания сыворотки.

В лаборатории сыворотку исследуют методами реакции аглютинации

(РА); реакции преципитации (РП); РСК и РДСК и другие.

Дератизация - является составным элементом в противоэпизоотических

Дератизация - это комплекс мероприятий направленный на борьбу с грызунами, приносящими огромный вред животноводству и человеку, а также являются переносчиками инфекционных заболеваний. Комплекс мер борьбы с грызунами должен включать профилактические и истребительные мероприятия. Профилактические мероприятия слагаются из санитарных, строительно-технических и агротехнических решений.

Истребительные мероприятия включают механические, биологические и химические методы. В основном в хозяйстве используют химический метод (отравленные приманки).

Благополучие хозяйства по инфекционным заболеваниям возможно, только в том случае, если все намеченные в плане мероприятия будут выполняться правильно и в указанные сроки.

Министерство аграрной политики Украины

Харьковская государственная зооветеринарная академия

Кафедра эпизоотологии и ветеринарного менеджмента

Реферат на тему:

Студент 3 курса 9 группы ФВМ

Ис т орическая справка, распространение, степень опаснос т и и ущерб

Туберкулез (лат., англ. - Tuberculosis ) - тяжелая хроническая болезнь животных многих видов и человека, характеризующаяся образованием в различных органах специфических узелков - туберкулов, подвергающихся казеозному некрозу и обызвествлению.

Туберкулез животных распространен во многих регионах мира, лишь в развитых странах Европы и Северной Америки он почти ликвидирован. Степень опасности туберкулеза для человека возрастает: в конце XX - начале XXI в. мировая эпидемическая ситуация по туберкулезу значительно ухудшилась.

Болезнь причиняет животноводству серьезный экономический ущерб, что связано со снижением продуктивности, преждевременной выбраковкой и сдачей животных на убой, длительными и дорогостоящими противоэпизоотическими мероприятиями и другими затратами.

Возбудитель туберкулеза - Mycobacterium tuberculosis . Род микобактерии включает более 30 различных видов патогенных и непатогенных микроорганизмов. Заболевание туберкулезом вызывают 3 патогенных вида:

1) Mycobacterium tuberculosis (человеческий вид) вызывает заболевание у человека. К нему восприимчивы также свиньи, кошки, собаки, рогатый скот, пушные звери, а птицы (кроме попугаев) не восприимчивы;

2) Mycobacterium bovis (бычий вид) вызывает заболевание у всех видов сельскохозяйственных, диких животных, в том числе пушных зверей, а также человека. Птицы не восприимчивы;

3) Mycobacterium avium (птичий вид) вызывает заболевание домашних и диких птиц, восприимчивы также свиньи; животные других видов и человек заражаются редко.

По морфологии и культуральным свойствам микобактерии перечисленных видов во многом сходны между собой. Это тонкие прямые, чаще слегка изогнутые палочки длиной 0,8. 5,5мкм, располагающиеся в мазках одиночно или группами. Микобактерии - строгие аэробы, неподвижные, спор не образуют, кислотоспиртоустойчивые; окрашиваются по методу Циля-Нельсена в ярко-красный цвет, тогда как другая микрофлора - в синий цвет. Культивируются на глицериновых МПА, МПБ, яичных и синтетических средах. Растут микобактерии человеческого вида 20. 30 сут, бычьего вида - 20. 60 сут, птичьего вида - 10. 20 сут. При отсутствии роста посевы рекомендуется выдерживать в термостате в течение 3 мес. Видовую принадлежность возбудителя туберкулеза определяют по особенностям роста их на искусственных питательных средах и патогенности отдельных видов возбудителя туберкулеза для лабораторных животных различных видов.

В природе кроме туберкулезных существуют условно-патогенные атипичные и сапрофитные микобактерий. Животные, инфицированные ими, могут реагировать на туберкулин для млекопитающих, что вызывает трудности при аллергической диагностике туберкулеза.

Микобактерий весьма устойчивы к воздействиям химических веществ и различных факторов внешней среды. М. bovis в почве и в навозе сохраняет жизнеспособность до 4 лет, М. avium - до 10 лет и более. В продуктах, полученных от больных животных, возбудитель туберкулеза сохраняется: в молоке до 19 сут, в масле до 300 сут, в сыре 145.. .200 сут, в мясе замороженном до 1 года, в соленом мясе 60 сут. В трупах крупного рогатого скота и птиц микобактерий сохраняются от 3. 6 до 12мес. По данным различных авторов, во влажном состоянии микобактерия туберкулеза погибает при 50 "С через 12 ч, при 60 °С через 1 ч, при 70 °С через 30 мин, при 90 °С через 1 мин, при 100 "С мгновенно.

Лучшими дезинфицирующими средствами являются 3%-ный щелочной раствор формальдегид (экспозиция 1 ч), взвесь хлорной извести, содержащая 5 % активного хлора, 10%-ный раствор однохлористого йода, 20%-ная взвесь свежегашеной извести (гидроксид кальция), 5%-ный раствор гипохлорида кальция, 1%-ный раствор глутарового альдегида и другие препараты.

К туберкулезу восприимчивы многие виды домашних и диких животных, в том числе пушные звери и птицы (более 55 видов млекопитающих животных и около 50 видов птиц). Более чувствительны к туберкулезу крупный рогатый скот, свиньи, из птиц - куры. Реже заболевают собаки, кошки, утки, гуси, как исключение - лошади, овцы, ослы. Источник возбудителя инфекции - больные животные, выделяющие микобактерии с фекалиями, мокротой, молоком, а при поражении мочеполовых путей - со спермой. Возбудитель туберкулеза длительное время может сохраняться в организме в виде L -форм. Такие животные часто остаются невыявленными источниками возбудителя туберкулеза. В неблагоприятных условиях L -формы микобактерии могут реверсировать в исходный вид (в классическую форму микобактерии) и становятся причиной возникновения туберкулеза.

Факторами передачи возбудителя туберкулеза могут быть загрязненные выделениями больных животных корма, вода, пастбища, подстилка, навоз и др. Молодняк заражается в основном через молоко и обрат, полученные от больных животных. Возможно внутриутробное заражение телят. Животные могут заразиться при контакте с людьми, больными туберкулезом, особенно доярками и телятницами. Взрослый крупный рогатый скот в стойловый период заражается в основном аэрогенным путем, на пастбищах - алиментарным; свиньи - алиментарно при скармливании им необеззараженных кухонных отходов из больниц, туберкулезных диспансеров или при контакте с больной птицей. Собаки, кошки - от больных людей или при поедании молока, мяса от больных коров.

Массовому распространению туберкулеза на фермах способствуют факторы, снижающие резистентность организма животных. К ним относятся: неполноценное кормление, усиленная продукция молока без компенсации необходимых жизненно важных для организма микроэлементов, витаминов, аминокислот; отсутствие регулярного моциона на свежем воздухе, теснота и сырость в помещениях, антисанитарные условия содержания животных.

Проникнув в организм с кормом или вдыхаемым воздухом, туберкулезные микобактерии попадают в легкие или другие органы лимфогенным и гематогенным путями. На месте локализации бактерий развивается воспалительный процесс с последующим образованием туберкулезных узелков - туберкулов величиной до чечевичного зерна, сероватого цвета, округлой формы. В центре туберкула отмершие клетки под действием токсинов микобактерии превращаются в творожистую массу. При доброкачественном течении болезни первичный очаг подвергается обызвествлению, окружается соединительной тканью и дальнейшее развитие инфекционного процесса прекращается. При понижении резистентности процесс инкапсуляции возбудителя в первичном очаге выражен слабо, происходит расплавление стенок туберкулезного узелка, микобактерии попадают в здоровую ткань, что приводит к образованию множества новых подобных туберкулезных узелков (милиарный туберкулез). Мелкие туберкулезные узелки могут сливаться между собой, образуя крупные туберкулезные фокусы.

Из таких туберкулезных фокусов микобактерии туберкулеза могут попасть в кровь, что приводит к генерализации процесса и развитию в различных органах (печень, селезенка, почки и др.) туберкулезных очагов разной величины. При генерализованной форме туберкулеза и обширных поражениях легких наступают истощение и смерть животного.

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации.

Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И.Вавилова.

Кафедра: паразитологии, эпизоотологии и В.С.Э.

Выполнила: студентка 5 курса факультета ветеринарной медицины группы В.Т.-502.

Лаврентьева Елена Валерьевна.

2.Акт ветеринарно-санитарного и эпизоотологического обследования хозяйства.

3.План противоэпизоотических и ветеринарно-санитарных мероприятий в хозяйстве.

4. Объяснительная записка к плану противоэпизоотических мероприятий.

Своевременное изучение и конкретное определение эпизоотологического состояния животноводства обслуживаемой зоны позволяет ветеринарному врачу правильно и быстро организовать профилактику инфекционных болезней, а случае их появления не допускать распространения и своевременно купировать и ликвидировать. Так как инфекционные болезни представляют собой наиболее опасную группу болезней, существующих в природе вследствие непрерывности эпизоотического процесса и способных в определенных условиях наносить животноводству большой экономический ущерб, а некоторые из них- передаваться от животных человеку. Поэтому многие современные проблемы инфекционных болезней предпочтительнее изучать и решать путем исследования животных популяций с точки зрения количественной и качественной характеристик распространения инфекции. Исходя из этого инфекционную патологию животных с полным основанием можно отнести к весьма сложной и многогранной проблеме, биологические, ветеринарные и социально- экономические аспекты которой изучают многие науки, используя соответствующие методические подходы.

В хозяйстве, где я проходила практику проводятся профилактические вакцинации против инфекционных болезней, и поэтому вспышек инфекционных болезней я не наблюдала.

Акт от 1 октября 2008 г.

Мы, нижеподписавшиеся, главный вет. Врач Бидюк А.И, врач Корнилов В.Н., зоотехник- Савин А.К., вет фельдшер Лаврентьева Е. В

Хозяйство является благополучным по инфекционным и инвазионным заболеваниям. В данном хозяйстве содержится следующее поголовье животных:

Колхоз располагается в центральной части Калининского района, центральная усадьба колхоза располагается в 35 км с-з района центра г.Калининска, располагается на возвышенном сухом месте, не заполняется дождевыми и снеговыми талыми водами. Место, на котором построена молочно-товарная ферма, удовлетворяет санитарно-гигиенические, зооветеринарные, инженерно-технические, архитектурно-строительные и экономические требования.

Подъездные дороги находятся в удовлетворительном состоянии, ас­фальтированы. Ферма озеленена. На территории фермы имеются склады для хранения фуражного зерна.

В зимний период животные содержатся в коровнике с широким центральным проездом для мобильных кормораздатчиков. В летнее время дойное стадо содержится в летнем лагере.

Доение коров проводят 2 раза в день: утром и вечером унифицированным доильным аппаратом АДУ-1.

Телята до 6 месяцев содержатся на ферме, им организуют моцион на выгульных площадках. 2 раза в день они получают зеленую массу. Водопой из одночашечной индивидуальной стационарной автоматической поилки.

Уборка навоза в помещении производится скребковым навозоуборочным транспортером.

Территория летних лагерей оборудована деревянными навесами, защищающими животных от солнечных лучей и дождя.

Выпас коров осуществляется на естественных пастбищах с ранних утренних часов до позднего вечера, потом их загоняют на ночь в летний лагерь. 2 раза в день коров в летнем лагере доят.

Зимой животные содержатся в коровниках на привязи.

Очистка воздуха в коровнике осуществляется вентиляцией естественного типа.

Новорожденных телят содержатся -профилактории до 10 дневного возраста, а затем их переводят в телятник, где их содержат для до-ращивания. В телятнике общие клетки на 8-10 голов.

На территории хозяйства имеется ветеринарный пункт и изолятор для содержания больных животных. Лечебно санитарный пункт имеет помещения для содержания животных, аптеку с манежем, навесы, площадку для обезвреживания навоза, убойный пункт, помещения для обслуживающего персонала.

Утилизация трупов павших животных производится в скотомогильнике находящимся в 5 км от животноводческих объектов, где имеется биотермическая яма (яма Беккари) она расположена на сухом возвышенном месте с низким уровнем грунтовых вод, участок земли площадью 200 м², обнесен глухим забором высотой 2м с внутренней стороны забора ров глубиной 1,4 м, на середине участка биотермическая яма глубиной- 9 м и основанием 3/3 м , стены выложены кирпичом, дно глиной. Стены ямы Беккари выведены выше уровня земли на 20 см, яма плотно закрыта 2-мя крышками с замками –над ней сооружен вытяжной канал и навес для защиты от осадков. Вокруг ямы устроена отмостка шириной 2 м, через 20 суток после загрузки трупов температура в яме поднимается до 65°, процесс разложения трупов заканчивается за 35 суток с образованием однородного, не имеющего запаха компоста.

Ветсанэкспертиза убойных животных производится в рай СББЖ.

Ветспециалисты хозяйства согласовывают свою работу с общими ветмероприятиями в районе. По важнейшим вопросам они консультируются у Главного ветеринарного врача района, участвуют в районных совещаниях ветспециалистов, обмениваются опытом работы. На районной ветеринарной станции они получают необходимые материалы(препараты, медикаменты, дез. средства. и т.д.)

Совместно с ветслужбой района для хозяйства ежегодно составляется план профилактических и противоэпизоотических мероприятий.

Вид животных и наименование заболеваний

План голов обработок .

Крупный рогатый скот

2. Профилактические прививки

Молодняк крупного рогатого скота

3 Лечебно-профилактические обработки .

Объяснительная записка к плану профилактических мероприятий .

В Калининском районе ежегодно в зависимости от эпизоотического состояния местности намечают план профилактических, противоэпизоотических мероприятий на предстоящий календарный год. Данный план состоит из 3 разделов: диагностические исследования, профилактическая иммунизация и лечебно- профилактические обработки. Для составления плана подготавливают следующие материалы: данные о наличии поголовья скота, расчетное поголовье животных на начало планируемого года, а также предполагаемое в течении года поступление приплода животных; сведения об эпизоотическом состоянии района; определяют болезни при которых необходимы диагностические исследования, предохранительные прививки, лечебно- профилактические обработки. В ходе анализа плана профилактических и противоэпизоотических мероприятий на 2008 год по Калининскому району я сделала следующие выводы, что при составлении плана учитываю наличие поголовья животных, благополучие местности по инфекционным заболеваниям.

Крупный рогатый скот исследуют на туберкулез, бруцеллез, лейкоз, лептоспироз, Гиподерматоз.

Профилактические вакцинации крупного рогатого скота против: сибирской язвы, Пастереллеза, Эмкара, сальмонеллеза, трихофитии, бешенства, ящура типа АО, коров против колибактериоза вакцинируют и ревакцинируют- против бруцеллеза.

Поголовье свиней вакцинируют против сибирской язвы, Пастереллеза, рожи и чумы.

Собак и кошек вакцинируют против бешенства. Крупный рогатый скот вакцинируют в основном во2 и 3 квартале. Свиней вакцинируют в основном во 2 и 3 квартале. Собак и кошек против бешенства вакцинируют на протяжении всего года. Также по плану проводят лечебно-профилактические обработки. Крупного рогатого скота обрабатывают против чесотки и подкожного овода в 3 квартале, а против кровососущих насекомых и иксодовых клещей обработки проводят во 2 квартале.

Дегельминтизация крупного рогатого скота против тейлериоза проводят в 1 квартале. Свиней против аскаридоза в течении года. Собак против цестодозов также в течении года.

Принимала участие в выполнении туберкулинизации крупного

* рогатого скота, взятия крови у к.р.с для серологического исследования

на бруцеллез и лейкоз. Проводила вакцинацию крупного рогатого скота против сибирской язвы, эмфизематозного карбункула и бруцеллеза, проводила профилактическую вакцинацию против бешенства собак и кошек, а так же молодняка к.р.с старше 3 месяцев, профилактическую вакцинацию против гиподерматоза к.р.с.

Все проводимые вакцинации и диагностические исследования регистрируются в противоэпизоотическом журнале и оформляются акты на обработки. В журнале указывается число, месяц, год, сколько голов было привито и какой вакциной.

Ознакомилась с документацией:

•Журнал для записи противоэпизоотических мероприятий- форма № 2.

•Журнал для записи эпизоотического состояния района, города – форма № 3.

•Журнал учета диагностических исследований.(хозяйстве)

•Журнал для регистрации результатов патологоанатомического вскрытия.

•Журнал для записи эпизоотического состояния района.

•Журнал для регистрации профилактических и вынужденных прививок.

•Журнал учета дезинфекции, дезинсекции, дератизации.

•Журнал учета лечебной обработки животных и птиц.

На основании первичных документов учета составляется отчет. По заразным болезням дают ежемесячно по форме № 1-вет.

1.Вакцинация крупного рогатого скота против бруцеллеза проводится сухой, живой вакциной против бруцеллеза из слабоагглютинного штамма № 82, изготовленной государственным Щелковским биокомбинатом 27 декабря 2007 г. Вакцину вводят подкожно в область средней трети шеи в дозе 5 мл. Оставшаяся часть вакцины уничтожается методом кипячения в течение 30 минут. Количество животных- 1836.

2.Вакцинация против стригущего лишая с профилактической целью применяют вакцину ЛТФ-130, изготовленной Ставропольской биофабрикой. Серия №4, контроль №4 срок годности до 01.09 года. Вакцина вводится внутримышечно в дозе 5 мл. с профилактической целью. Количество голов 600.

3.Вакцинация против паратифа (сальмонеллеза) телят. Для этого ис­пользовалась вакцина концентрированная формолквасцовая против паратифа (сальмонеллеза) телят, серия №1, контроль №1, изготовленная 08.2007г. Срок годности 2 года. Вакцинацию проводили в среднюю треть шеи, подкожно. Для этого место, выбранное для укола, обрабатывали 5% спиртовым раствором йода. Вакцину вводили в количестве 2 мл.

4.Туберкулинизация крупного рогатого скота проводилась туберкулином очищенным (ППД) для млекопитающих. Серия № 5, контроль № 5, изго­товленной 13.02. 2007г Курской биофабрикой. Срок годности 3 года. Туберкулин вводится безигольным инъектором Би-7 в область средней трети шеи слева, внутрикожно в дозе 0,2 мл. Учет реакции через 72 часа 5.Вакцинация собак против бешенства антирабической сухой культуральной инактивированной, Щелковского комбината 04.07г., серия № 55, годностью 2 года. 1836- головы вакцинировали

1 в 8-10 дневном возрасте- паратиф. 46голов ревакцинация

Повторно через 8-10 дней.

2. в 20-30 дневном возрасте- стригущий лишай.

3. в 1,5 -2 месячном возрасте- лептоспироз.

4 в 3-месячном возрасте- сибирская язва и Эмкар.

Повторно через 3 месяца.

5 в 6 месячном возрасте- исследование крови на бруцеллез и 1-я вакцинация против бруцеллеза. Повторная вакцинация через 2-3 месяца.

6 с 3-месячного возраста- бешенство.

Во время прохождения практики я принимала участие в профилактических дезинфекциях животноводческих помещений. Дезинфекцию осуществляли 2% раствором каустической соды из ДУКа из расчета 1 литр на 1 м площади. Работу проводили с соблюдением правил техники безопасности, в спецодежде. Дезинфекция проводилась перед постановкой животных на стойловое содержание.

Важную роль для предотвращения и профилактики инфекционных заболеваний имеют и другие проводимые мероприятия:

1)При въезде на ферму имеется въездной дезбарьер,
представляющий собой бетонированную ванну с

дезинфицирующим раствором (хлорная известь). Также при входе в каждое отдельное помещение предусмотрены входные дезбарьеры (опилки, пропитанные хлорной известью). 2) Весь персонал животноводческого комплекса проходит обязательный медицинский осмотр. Лица, страдающие болезнями, общими для человека и животных, к работе не допускаются. 3)Вход посторонним на территорию фермы запрещен. На территории фермы имеются следующие ветеринарно-санитарные объекты.

1 .Ветеринарно-профилактический пункт, который служит для прове- дения ветеринарных обработок животных (вакцинации, диагностическое исследование, обеззараживание и т.д.), а также

для организации зооветеринарного учета. Размещен в

производственной зоне животноводческого комплекса.

2.Изолятор - предназначен для содержания больных. В нем также

содержат животных, которых подозревают в заболевании разными

болезнями. Отгорожен от других построек. Имеет

самостоятельный вход и выход, дезинфекционный барьер. Состоит

из отдельных боксов.

3.Убойно-санитарный пункт (убойная площадка) - предназначенная для вынужденного убоя животных, вскрытия трупов.

После гибели животного ветеринарный врач сразу же производит первоначальный осмотр, затем вскрытие. Устанавливаются причины смерти, составляется протокол вскрытия.

Павших животных – утилизируют на скотомогильник, находящихся в 5 км от животноводческих объектов, где имеется биотермическая яма(яма Беккари) она расположена на сухом возвышенном месте с низким уровнем грунтовых вод, участок земли площадью 200 м², обнесен глухим забором высотой 2м с внутренней стороны забора ров глубиной 1,4 м, на середине участка биотермическая яма глубиной 9 м и основанием 3/3 м, стены выложены кирпичом, дно глиной. Стены ямы выведены выше уровня земли на 20 см, яма плотно закрыта 2-мя крышками с замками- над ней сооружен вытяжной канал и навес для защиты от осадков. Вокруг ямы устроена отмостка шириной 2 м, через 20 суток после загрузки трупов температура в яме поднимается до 65°, процесс разложения трупов заканчивается за 35 суток с образованием однородного, не имеющего запаха компоста.

В животноводческих помещениях предусмотрены:

профилактические меры, направленные на уничтожение вредных насекомых и предупреждающих их появление. Производят опрыскивание помещений 1% водным раствором хлорофоса из расчета 100 мл на 1 м 2 .

Для истребления грызунов применяют зоокумарин из расчета 2% зоокумарина по отношению к пищевому продукту.(акт прилагается )

Для уборки навоза из помещений используют стационарные
установки - скребковые транспортеры кругового действия ТСН -160.Для очистки выгульных дворов удаление навоза производится мобильными средствами- бульдозерами.

На расстоянии 100 метров от животноводческой фермы имеется навозохранилище, оно представляет собой заглубленную бетонную емкость вокруг которой установлен бордюр, для обеззараживания жидкого навоза используют термофильное анаэробное сбраживание в метотенках. После обеззараживания, навоза используют в качестве удобрения на полях.

Результаты эпизоотического обследования привели к выводу о необходимости устранения следующих недостатков:

1) необходимо провести ремонт старых построек и замен изношенного оборудования;

2) обратить внимание на обеспеченность фермы ветеринарными препаратами и инструментами.

Хозяйство является благополучным по инфекционным

Заболеваниям, так как правильно проводят диагностические исследования . Контакт с животными других хозяйств исключен.

Пастбища расположены на значительном расстоянии друг от друга. Животных из других хозяйств не закупают, ремонтный молодняк выращивают на ферме. Посторонним вход на территорию запрещен.

Все диагностические мероприятия, вакцинации, лечебно-профилактические мероприятия проводятся согласно плану противоэпизоотических мероприятий. За последние 10 лет не наблюдалось вспышек инфекционных болезней- это видно на карте. Я считаю, что большое значение в эпизоотическом благополучии хозяйства играют своевременно проводимые вакцинации, осуществляемый контроль за качеством кормов, обеспечение зоогигиенического режима содержания скота. Для предупреждения заразных болезней на ферме проводят дезинфекцию, ее проводят 2 раза в год: весной после перевода животных на пастбище и в конце лета - перед постановкой скота на стойловое содержание.

Дубовой Б.Л., Полякова О.Н. ГНУ СКЗНИВИ, г. Новочеркасск

Туберкулез причиняет огромный экономический ущерб и представляет большую опасность для здоровья людей. Пер­востепенной задачей в противотуберкулезных мероприяти­ях является своевременная диагностика, ранее выявление источника возбудителя инфекции.

Прижизненная диагностика аллергическими исследованиями запоздалая и не выявляет животных в первые дни, и даже месяцы после их заражения. Поэтому, требуются более чувствительные мето­ды, которые позволяют выявить этиологию аллергического процесса при туберкулезе.[2]

Для дифференциации неспецифических туберкулиновых реак­ций используют симультанную пробу с аллергенами - ППД для млеко­питающих и КАМ, изготовленных из нескольких штаммов атипичных микобактерий.[1, 5, 6] Симультанную аллергическую пробу применя­ют при первичной постановке диагноза на туберкулин в благополуч­ных хозяйствах и в случае, если реакции на туберкулин обусловлены атипичными микобактериями и кислотоустойчивыми сапрофитами.[4] Также прибегают к комиссионному контрольно-диагностическому убою животных с реакцией на внутрикожное введение туберкулина, для уточнения диагноза патологоанатомическими, бактериологичес­кими исследованиями и биопробой.

Однако владельцы высокоудойных коров оспаривают право­мерность контрольно-диагностического убоя животных, давших по­ложительную реакцию на туберкулиновую пробу, и требуют прижиз­ненных способов диагностики для дополнительного исследования высокопродуктивных животных на туберкулез. Поэтому кроме симультанной аллергической пробы, патологоанатомических осмотров и лабораторных исследований, эпизоотологического обследования хозяйств, анализа динамики проявления аллергических реакций у различных групп животных, для изучения неспецифических туберку­линовых реакций у крупного рогатого скота и дифференциации их от специфических используют клеточные реакции ин витро - реакцию бласттрансформации лимфоцитов и специфического лизиса лейкоци­тов и другие реакции.

В нашем исследовании для выявления причин неспецифичес­ких туберкулиновых реакций использовали реакцию специфического лизиса лейкоцитов в сопоставлении с патологоанатомическими изме­нениями.

Постановку РСЛЛ выполняли в модификации Б.Л. Дубового.

Целью исследований явилось выявление причин неспецифичес­ких реакций, связанных с дифференциальной диагностикой туберку­леза, вызванного разными видами микобактерий, что имеет большое ветеринарно-санитарное, эпизоотическое и хозяйственное значение.

Выявление инфицированных микобактериями и больных ту­беркулезом животных реакцией специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) in vitro основана на явлении немедленно появляющейся повы­шенной чувствительности лейкоцитов к повторному контакту с антиге­ном (аллергеном) вне организма [3].

В производственных условиях испытания РСЛЛ для возможной диагностики туберкулеза выполняли в базовых хозяйствах Ростовской области. Так на ранее благополучной ферме восемь коров реагирова­ли на туберкулин. Их подвергли контрольно-диагностическому убою. При ветеринарно-санитарной экспертизе патологоанатомических из­менений во внутренних органах и лимфатических узлах визуально не обнаружили. Бактериологические исследования патматериала в Рос­товской областной лаборатории были отрицательными.

Перед убоем у коров взяли кровь для проведения реакции спе­цифического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ). Результаты исследований по количеству лейкоцитов и показателям РСЛЛ в пробах крови представ­лены в таблице.

Таблица. Количество лейкоцитов, показатели РОЛЛ и патологоанатомические изменения у прореагировавших на туберкулин коров.

Как видно из таблицы, во всех пробах крови с ППД-туберкулином для млекопитающих реакция специфического лизиса лейкоцитов была отрицательной, что свидетельствует об отсутствии инфицирова­ния их M. bovis.

В пробах крови четырех убитых коров реакция специфического лизиса лейкоцитов была положительна с ППД-туберкулином для птиц. Лизис лейкоцитов в пробах был 11%, 20%, 22%, 26%, что указывает на инфицирование животных M. avium.

В пробах крови четырех животных получен положительный ре­зультат РСЛЛ с КАМ. Процент лизиса лейкоцитов составил 11%, 13%, 15%, 20%, что связано с инфицированием животных при жизни ати­пичными микобактериями.

Таким образом, выполненные исследования крови с туберкулинами вне организма от животных с положительными туберкулиновы­ми пробами позволяют в короткие сроки выявить истинные причины, вызвавшие сенсибилизацию организма к туберкулину, и, главное, делают возможным исключить необоснованный убой высокопродук­тивных животных. Возможность применения способа диагностики in vitro неспецифически туберкулиновых реакций непосредственно в условиях хозяйств будет способствовать широкому применению ал­лергенов различной природы в качестве средств дифференциальной диагностики специфических и неспецифических туберкулиновых ре­акций.

Предлагаемый способ диагностики неспецифических туберкули­новых реакций рекомендуем использовать в бла­гополучных по туберкулезу хозяйствах. Для этого от всех животных, давших положительную реакцию на внутрикожное введение туберкулина, берут кровь и исследуют ее вне организма с имеющимися туберкулинами, что позволяет выявить этиологию туберкулиновых реакций, вызванных микобактериями различных видов.

1. Верховский, О.А. Диагностическое значе­ние реакций клеточного иммунитета при туберкуле­зе крупного рогатого скота / О.А. Верховский, А.Х. Найманов, О.А. Савицкая // Актуальные проблемы инфекционной патологии и иммунологии живот­ных. Материалы международной научно-практи­ческой конференции Москва, 16-17 мая, 2006. - М.; ИзографЪ, 2006. - С.180-186.
2. Дубовой, Б.Л. Новое в дифференциальной диагностике туберкулеза сельскохозяйственных животных / Б.Л. Дубовой, О.Н. Соловьева, Н.В. Улько // Сборник научных трудов "Диагностика, про­филактика и лечение при инфекционных болезнях сельскохозяйственных животных".- Персиановский, 2000. - С.8-12.
3. Дубовой, Б.Л. Исследования специфичности и активности РСЛЛ при диагностике туберкулеза крупного рогатого скота / Б.Л. Ду­бовой, О.Н. Полякова // Инновационный путь развития АПК-магист­ральное направление научных исследований для сельского хозяйства. - Персиановский, 2007. - С.67-69.
4. Найманов, А.Х. Дифференциация аллергических реакций на туберкулин / А.Х. Найманов // Ветеринария. - 2002. - N°3.- С.10-12.
5. Наставление по проведению симультанной пробы с примене­нием туберкулина комплексного аллергена из атипичных микобактерий (КАМ) при диагностике туберкулеза животных. Ветеринарное законодательство. Т. 3, М.: "Колос", 1981.- С.220-224
6. Эпизоотологический контроль и постановка диагноза на тубер­кулез у животных разных видов. Профилактика и борьба с заразными болезнями, общими для человека и животных. Сборник санитарных и ветеринарных правил. Изд. Официальное. Госкомсанэпиднадзор Рос­сии. Минсельхозпром России. Москва, 1996.- С. 164 - 167.

Требуются более чувствительные методы, которые позволяют выявить этиологию аллергического процесса при туберкулезе. Для определения этиологии неспецифических туберкулиновых реакций в благополучных хозяйствах использовали ППД-туберкулин для птиц и КАМ вне организма с кровью животных, реагирующих на тубер­кулин для млекопитающих. Показано, что РСЛЛ можно использовать для дифференциации специфических и неспецифических реакций на туберкулин.

Ключевые слова: диагностика, туберкулез, реакция специфи­ческого лизиса лейкоцитов (РСЛЛ).

DIAGNOSTICS OF UNSPECIFIC REACTIONS TO TUBERCULINE CAUSED BY ATYPICAL AND AVIAN MYCOBACTERIES Dubovoi B.L., Polyakova O.N. Summary

More sensitive methods that can detect the etiology of allergic process at tuberculosis are required. PPD-tuberculin for birds and CAM outside the body with the blood of animals, reacting to tuberculin for mammals, were used to determine the etiology of nonspecific tuberculin reactions in wealthy economies. It is founded the RSLL can be used for the differentiation both of specific and unspecific reactions to tuberculine.

Key words: diagnostics, tuberculosis, reaction of specific lysis of leucocytes (RSLL).

About the authors

Dubovoy Boris L. - D. Sc. in Veterinary Medicine, professsor, chief of infectious diseases of farming animals and poultry research laboratory of the State scientific establishment "North Caucasian zonal veterinary research institute" of Russian Academy of agricultural sciences; 6/4. Veterinarnaya st., Novocherkassk, Rostov region, 394400; Tel.89281360864.

Responsible for correspondence with the editorial board: Polyakova Olga N.- post-graduate student of the State scientific establishment "North Caucasian zonal veterinary research institute" of Russian Academy of agricultural sciences; 28, Sadovaya st., Novocherkassk, Rostov region, 394406; Tel.89287549422

Сведения об авторах

Дубовой Борис Лаврентьевич, доктор ветеринарных наук, про­фессор, заведующий лабораторией по изучению инфекционных болезней сельскохозяйственных животных и птицы ГНУ "Северо­Кавказский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт" Российской академии сельскохозяйственных наук; 394400, Ростовская область, г. Новочеркасск, ул. Ветеринарная, д.4, кв.6; тел.: 89281360864.

Ответственный за переписку с редакцией : Полякова Ольга Николаевна, аспирант ГНУ "Северо-Кавказский зональный науч­но-исследовательский ветеринарный институт" Российской ака­демии сельскохозяйственных наук; 394406, Ростовская область, г. Новочеркасск, ул. Садовая, д.28; тел.: 89287549422.