Использование пцр в диагностике туберкулеза рекомендовано минздравом рф
Самым простым методом выявления микобактерий туберкулеза в выделениях больных является микроскопия мазка, приготовленного из патологического материала (в большинстве случаев - мокроты). При бактериоскопии мазка, окрашенного по Цилю-Нильсену, микобактерии туберкулеза могут быть обнаружены при наличии не менее 100 000 - 1 000 000 бактериальных клеток в 1 мл патологического материала (мокроты). Такое большое количество микобактерий встречается у больных с далеко зашедшими прогрессирующими формами заболевания (диссеминированными и фиброзно-кавернозными). У значительно большего числа больных количество выделяемых ими микобактерий ниже предела метода бактериоскопии.
Использование метода флотации повышает выявляемость микобактерий на 10%, но в связи с отмеченными выше недостатками этого метода, он не может быть рекомендован для широкого применения в клинико-диагностических лабораториях.
Чувствительность метода флуоресцентной микроскопии значительно выше - от 10 000 до 100 000 микобактерий в 1 мл материала, кроме того, этот метод дает возможность за значительно более короткое время просмотреть необходимое количество препаратов. Обогащение материала для микроскопии путем обработки иммуномагнитным сорбентом, обеспечивающим концентрацию возбудителя в осадке гомогенизированной мокроты, позволяет значительно повысить эффективность метода, особенно при незначительном количестве микобактерий туберкулеза в материале. Эффективность бактериоскопии повышается также при передаче изображения на компьютер при помощи присоединенной к микроскопу видеокамеры.
Культуральный метод выявления микобактерий туберкулеза дает положительные результаты при наличии в исследуемом материале от 20 до 100 жизнеспособных микробных клеток в 1 мл. Однако он трудоемок и длителен в связи с тем, что микобактерии туберкулеза растут очень медленно и их колонии можно наблюдать только через 2-2,5 месяца.
Чаще всего применяется посев на твердую яично-картофельную среду Левенштайна-Йенсена, реже на среды Фин-2 и В.А. Аникина.
Диагностические возможности культурального метода ограничиваются длительным периодом роста микобактерий, а также тем, что при активном туберкулезе легких этим методом возбудитель выделяется только в 52 - 65% случаев. При внелегочном туберкулезе процент выявлений культуральным методом еще ниже. Так, например, при туберкулезном менингите рост микобактерий на питательных средах наблюдается только в 3% случаев. При нефротуберкулезе частота выявления варьирует от 26,7% до 73% случаев.
Российским НИИ фтизиопульмонологии Министерства здравоохранения рекомендуется комплексная методика исследования мочи на наличие микобактерий туберкулеза. Из одной и той же порции одновременно выполняется люминесцентная микроскопия осадка, окрашенного ауромином, и посев не менее чем на две питательные среды. Микобактерии, потерявшие кислотоустойчивость, но сохранившие жизнеспособность, выявляются посевом, а потерявшие жизнеспособность, но сохранившие кислотоустойчивость - бактериоскопией.
К сожалению, широкое внедрение этой методики сдерживается, как уже было отмечено выше, высокой стоимостью лабораторного оборудования для люминесцентной микроскопии. Также существует ряд факторов, ограничивающих широкое применение культурального метода, в частности, необходимость использования дорогостоящих питательных сред.
Значительные трудности представляет обнаружение микобактерий у лиц со скудным их выделением. Это притом, что среди впервые выявленных больных у одной трети бактериовыделение бывает однократным.
За рубежом широкое распространение получила радиометрическая система Bactec, дающая возможность быстрого обнаружения микобактерий туберкулеза в жидкой питательной среде. Микобактерии культивируются в жидкой среде Bactec, где в качестве источника углерода используется меченая С14 пальмитиновая кислота. При положительных данных бактериоскопического исследования рост микобактерий обнаруживается радиометрически на 7-10 день, а при отрицательных - на 14-21 день. К недостаткам этого метода, ограничивающим возможность его широкого применения, относятся: высокая стоимость исследований, необходимость применения радиоактивных изотопов, специального радиометрического оборудования, сложность работы с изотопной технологией, необходимость дополнительного посева на плотные питательные среды при возникновении проблем с идентификацией возбудителя.
В настоящее время для культуральной диагностики туберкулеза также используется автоматизированная система MB/BacT фирмы Organon Teknika. В результате использования этой системы среднее время детекции роста микобактерий составляет 18,7 дня против 33,2 на стандартной плотной среде Левенштайна-Йенсена. К сожалению, высокая стоимость оборудования делает повсеместное внедрение этого метода в практику лабораторной диагностики туберкулеза маловероятным.
Иммуноферментный анализ (ИФА) получил широкое распространение в диагностике различных инфекционных заболеваний в связи с высокой чувствительностью и специфичностью, высокой производительностью, простотой проведения анализа и регистрации результатов, возможностью микроколичества диагностического материала и автоматизации процесса. ИФА используется для определения в биологических жидкостях, как антигенов, так и антител к этим антигенам.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР), основанная на обнаружении участка ДНК, характерного только для данного возбудителя, может служить одним из методов экспресс-диагностики туберкулеза. Высокая чувствительность ПЦР позволяет обнаружить в исследуемом материале единичные клетки или даже фрагменты ДНК возбудителя в течение 4-5 часов. Благодаря отсутствию перекрестных реакций с ДНК бактерий - возбудителей других легочных инфекций (L.pneuphila, M.pneumoniae, K.pneumoniae, Y.pestis, Y.pseudotuberculosis, S.aureus, E.coli, F.tularensis), а также с ДНК человека, ПЦР обладает высокой специфичностью (100%). Чувствительность ПЦР при тестировании образцов патологического материала полученного от больных с различными формами туберкулеза легких составляет: мокроты - 63,5-80,0%, мочи - 50,0-78,8%, плевральной жидкости - 45,8-54,5% и крови - 17,2-42,8%. Моча достаточно часто служит прекрасным материалом для выявления специфической ДНК у больных с распространенным туберкулезом легких, без сопутствующего специфического процесса в почках и мочевыделительной системе. ПЦР дает возможность дифференциальной диагностики при ограниченных формах туберкулеза (очаговых инфильтратах, туберкулемах, туберкулезе внутригрудных лимфатических узлов), а также при диссеминированной форме туберкулеза, при которых дифференциальная диагностика с использованием только традиционных микробиологических методов весьма затруднена в связи с редким обнаружением возбудителя в мокроте. Обобщая результаты бактериоскопии, посева на плотные питательные среды и исследования методом ПЦР материала, полученного от больных ограниченными формами туберкулеза можно сделать вывод о том, что последняя обладает значительно более высокой чувствительностью по сравнению с традиционными методами. В частности при сравнительном исследовании одного и того же материала бактериоскопией было получено 11,2% положительных результатов, методом посева на питательные среды - 19,3%, и методом ПЦР - 51,6% таких результатов.
Практически полное совпадение результатов сравнительного исследования патологического материала микробиологическими методами и методом ПЦР отмечается только при хронических деструктивных формах туберкулеза легких: кавернозной и фиброзно-кавернозной. Такое совпадение результатов обусловлено наличием у пациентов постоянного массивного бактериовыделения, характерного для таких форм туберкулеза. ПЦР достаточно информативна при необходимости подтверждения диагноза туберкулеза у детей и подростков при отрицательных результатах традиционных микробиологических методов исследования.
Использование ПЦР в диагностике туберкулеза рекомендовано Минздравом РФ (приказ от 21.02.2000 №64 "Об утверждении номенклатуры клинических лабораторных исследований", п. 9.4.5. приложения).
Использование ПЦР раскрывает возможности проведения, параллельно с традиционным бактериологическим способом определения лекарственной резистентности, экспресс-диагностики резистентности микобактерий туберкулеза к лекарственным препаратам методом выявления точечных мутаций в генах. В настоящее время известны следующие гены микобактерии туберкулеза, мутации в которых вызывают резистентность к лекарственным препаратам: rpoB - к рифампицину, katG, inhA, oxyR, ahpC, kasA - к изониазиду, rpsL - к стрептомицину, gyrA - к фторхинолонам, pncA - к пиразинамиду, embCAB - к этамбутолу. При этом, в большинстве случаев, исследованные клинические изоляты, устойчивые к рифампицину, оказались резистентными и к другим противотуберкулезным препаратам. Таким образом, устойчивость к рифампицину является маркером полирезистентности.
Кроме того, последние результаты изучения спектра MDR-штаммов микобактерии туберкулеза у впервые выявленных больных можно позволяют сделать вывод о снижении показателя удельного веса штаммов, устойчивых к стрептомицину и этамбутолу, и о наличии тенденции к увеличению частоты выделения штаммов, устойчивых к изониазиду и рифампицину.
Разработанный в Институте молекулярной биологии метод определения лекарственной резистентности микобактерии туберкулеза к рифампицину на микрочипах позволяет обнаружить 30 мутантных вариантов ДНК микобактерии туберкулеза.
Использование данного метода позволило выявить резистентность к рифампицину у 64,8% больных в течение 3-х дней до начала лечения. Режим химиотерапии данной когорты больных изначально состоял из комбинации препаратов резервного ряда (канамицин, офлоксацин, этионамид, циклосерин) и пиразинамида. Спустя 3 три месяца методом абсолютных концентраций выявлена лекарственная резистентность, по крайней мере, к изониазиду и рифампицину у 34 из 35 (97,2%) пациентов данной группы.
Применение молекулярно-генетических методов в эпидемиологии позволяет провести генотипирование клинических изолятов микобактерий, выделенных от больных на определенной территории.
В частности, в Томской области молекулярно-генетическими исследованиями, проведенными Нью-Йоркским институтом общественного здравоохранения, совместно с Центральным научно-исследовательским институтом туберкулеза РАМН, установлено, что 45% всех выделенных культур микобактерий туберкулеза представлено всего двумя штаммами, один из которых является эндемичным для Томской области. Данным методом было выявлено уникальное семейство микобактерии туберкулеза KY, ранее не встречавшееся в базе данных Нью-Йоркского института, а также преобладание микобактерий W- (20 штаммов) и Al- (8 штаммов) семейств. Молекулярное типирование показало, что более 60% штаммов, выделенных от больных из учреждений УИС Ивановской области, принадлежало к W-семейству, а около 12% культур было представлено смесью штаммов микобактерий туберкулеза двух генотипов.
Выявление путей распространения возбудителей туберкулеза, основанное на методах молекулярной эпидемиологии, способствует принятию эффективных мер по предотвращению дальнейшего распространения туберкулеза в УИС и дальнейшему снижению заболеваемости.
Туберкулез - хроническая инфекция с длительным периодом выделения возбудителя, многообразием клинических проявлений, поражением различных органов и систем - представляет непростую задачу для лабораторной диагностики. Молекулярно-биологические методы (ПЦР) используются для выявления, видовой дифференциации и определении лекарственной устойчивости микобактерий туберкулезного комплекса.
Ввиду биологических особенностей возбудителя и иммунного ответа человека диагностика туберкулеза не может ограничиваться каким-либо одним методом и должна проводиться комплексно.
Возбудители туберкулеза могут быть обнаружены в различных биоматериалах, природа которых определяет выбор наборов реагентов для экстракции ДНК. Ключевой принцип выбора биоматериала для диагностики туберкулеза методом ПЦР: необходимо выбирать биоматериал, соответствующий клинической форме туберкулезной инфекции.
Например, для диагностики туберкулеза мочеполовой системы нужно исследовать мочу или менструальную кровь, рекомендуется также исследовать биоптаты из подозрительного очага. Для диагностики туберкулеза легких используется мокрота, бронхо-альвеолярный лаваж.
Реагенты и оборудование для предобработки биоматериалов и экстракции ДНК
| Наборы реагентов для экстракции ДНК из мокроты, бронхо-альвеолярного лаважа, мочи, синовиальной жидкости и смывов с объектов окружающей среды | АмплиПрайм ДНК-сорб-В и АмплиПрайм РИБО-преп |
| Реагент для разжижения мокроты и синовиальной жидкости | Муколизин |
| Набор для экстракции ДНК, используемый при исследовании биоптатов (легкие, лимфатические узлы, почки, печень, мозг, селезенка) | ДНК-сорб-С |
| Оборудование для гомогенизации биоптатов | TissueLyser LT или TissueLyser II |
| Парафиновые блоки нарезают на микротоме или вырезают фрагмент ткани одноразовым скальпелем, а затем проводят экстракцию ДНК, например, с помощью набора реагентов QIAamp DNA FFPE Tissue Kit (50) | QIAamp DNA FFPE Tissue Kit (50) |
Наборы реагентов для ПЦР-диагностики туберкулеза
Применение молекулярно-биологических методов (в частности, выявление ДНК методом ПЦР) в диагностике туберкулеза регламентировано Приказом Минздрава РФ от 21.03.2003 № 109 "О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации" (ред. от 29.10.2009).
Выявление микобактерий туберкулезного комплекса
Набор реагентов АмплиСенс® МТС-FL предназначен для обнаружения ДНК микобактерий туберкулеза – Mycobacterium tuberculosis complex (MTC), включающий в себя виды микобактерий разной степени вирулентности, вызывающих туберкулез у человека (M.tuberculosis, M.bovis, M.africanum, M.microti, M.canetti, М.pinipedii).
Микобактерии туберкулеза выявляются без видовой дифференциации; микобактерии, не относящиеся к MTC (например, M.avium и M.paratuberculosis) - не выявляются. Данный набор реагентов используется в топической диагностике туберкулеза и позволяет быстро (за несколько часов) с высокой чувствительностью и специфичностью (близким к 100%) определять наличие микобактерий туберкулеза в образце биоматериала.
Благодаря высокой скорости и информативности в диагностике туберкулеза, методы амплификации нуклеиновых кислот (в том числе ПЦР) в 2010 году были предложены CDC США для подтверждения диагноза туберкулеза наряду с культуральным методом.
Видовая дифференциация микобактерий туберкулеза методом ПЦР
Не менее важно дифференцирование до вида внутри группы MTC. Это связано с необходимостью определения источника заболевания, определения тактики противотуберкулезной терапии, а также для подтверждения случаев поствакцинальных осложнений.
С этой задачей позволяет справиться набор реагентов АмплиСенс® МТС-diff-FL, предназначенный для дифференцирования видов микобактерий туберкулеза внутри MTC: человеческого (M.tuberculosis), бычьего (M.bovis) и вакцинного штамма (M.bovis BCG) – в клиническом материале и культурах микроорганизмов.
Актуальность видовой дифференциации определяется, например, тем, что разные виды микобактерий отличаются профилем лекарственной устойчивости. Например, M.bovis и её вакцинный штамм M.bovis BCG отличаются природной резистентностью к одному из основных противотуберкулезных препаратов - пиразинамиду. Поэтому при туберкулезе, вызванной M.bovis, и БЦЖите пиразинамид не назначается.
Приказом Минздрава РФ от 21.03.2003 № 109 "О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации" (ред. от 29.10.2009) регламентировано применение наборов реагентов, дифференцирующих M.bovis от ее вакцинного штамма M.bovis BCG, для диагностики БЦЖита.
Определение лекарственной устойчивости туберкулеза
Распространение штаммов туберкулеза с лекарственной устойчивостью, в том числе с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ, или MDR) составляет одну из серьезнейших проблем современного здравоохранения. Определение лекарственной устойчивости туберкулеза с помощью молекулярно-биологических методов всё шире применяется ввиду высокой скорости получения результатов (1-2 дня), что становится возможным благодаря использованию не только первичной культуры, но и непосредственно клинического материала.
Важно понимать, что наборы реагентов, основанные на разных молекулярно-биологических методах, характеризуются разными показателями диагностической чувствительности и специфичности.
| Наименование набора реагентов | АмплиСенс® MTC-Rif-Seq | АмплиСенс® MTC-PZA-Seq |
| Исследуемый ген | rpo B | pnc A |
| Препараты, к которым определяется устойчивость | рифампицин | пиразинамид |
| Кол-во выявляемых мутаций | более 200 | более 500 |
Наборы включают реагенты для амплификации фрагментов ДНК микобактерий туберкулеза, очистки продуктов амплификации (сорбентным методом), определения концентрации очищенного продукта амплификации и праймеры для секвенирования. Наборы для экстракции ДНК (АмплиПрайм РИБО-преп или ДНК-сорб-С ) и реагенты для проведения реакции секвенирования приобретаются отдельно.
Нормативные документы, публикации, информационные материалы >>
УЗИ легких
УЗИ (ультразвуковое исследование) — это та процедура, которая не вызывает ни малейшего страха у пациентов, при ее назначении. Обычно пациенты с легкостью и без намека на малейшее сомнение, проходят данную процедуру. Ультразвуковое исследование является не только безболезненной и относительно комфортной процедурой, а также крайне безопасной, несмотря на всю серьезность данного метода исследования и точность результатов, которое оно выдает. Так как метод УЗИ не использует таких агрессивных факторов, как рентгеновские лучи или же другие вредные воздействия, которые могут привести, в частности, к онкологическим заболеваниям.
Несомненным достоинством этого метода на сегодняшний день является его доступность для широких масс пациентов, как в финансовом, так и в количественном плане. УЗИ любого органа, в том числе легких можно провести абсолютно в каждой поликлинике, медицинском центре, диспансере, а также в частном кабинете. Существует великое множество портативных УЗИ-аппаратов, которые зачастую используются в машинах скорой помощи, а также специальных укомплектованных автомобилях для выезда в сельскую местность.
К сожалению, у всего есть недостатки. И УЗИ в данном случае не является исключением. Данный метод не может похвастаться высокой точностью исследования. В особенности это еще более заметно, в случае проведения УЗИ легочной полости. Особенно в начале появления ультразвукового метода, многие врачи и ученые крайне негативно относились к УЗИ легких, часто даже отвергали его. А все дело в механизме исследования.
во-первых, ультразвуковая диагностика представляет собой высокочастотные механические колебания, которые могут просматривать внутренние органы, благодаря их плотной структуре, они способны отражать импульс, который передают в них. А легкие представляют собой ткань, заполненную воздухом, именно поэтому передаваемые
ультрачастоты не могут долго задерживаться, что соответственно влияет на их видимость не самым лучшим образом;
во-вторых. Кости не проводят ультразвук, а так как грудная клетка состоит из ребер (костей), то это еще больше затрудняет проведение процедуры. Создается эффект экранирования, как говорят доктора.
Показания к назначению
Чтобы более детально понимать, при каких показаниях пациентам назначают УЗИ легких, приведем список всех диагностируемых с помощью этого метода заболеваниях.
T-SPOT.TB - это иммунологический способ диагностики туберкулеза.
Название T-SPOT.TB расшифровывается так:
литера T обозначает T-лимфоциты, клетки крови, на основе ответа которых производится исследование
Слово SPOT это перевод с английского языка, означающий "пятно". В результате лабораторного опыта в лунке образуются пятна, каждое из которых маркирует Т-лимфоцит.
TB это сокращенное международное обозначение туберкулеза.
Приказ Министерства здравоохранения РФ от 29 декабря 2014 г. № 951 “Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечения туберкулеза органов дыхания”
100 лет назад туберкулез был неизлечим – диагноз означал медленное угасание. Прогноз был такой же, как у запущенного онкологического заболевания. В классической литературе часто встречается драма чахотки – уход из жизни молодой прекрасной женщины, любимой, любящей, в полном сознании покидающей этот мир от физического истощения.
Состоятельные слои населения могли позволить себе замедлить заболевание на известных европейских и горных курортах. Бедные люди, в том числе дети, погибали быстрее – плохое питание и жилищные условия способствуют прогрессированию туберкулеза.
Ситуация в XXI веке изменилась?
В XX веке в науке произошел мощный прорыв, в том числе в медицине. Одним из важнейших изобретений являются антибиотики – это спасло миллионы жизней. Но выяснилось, что туберкулезные бактерии быстро развивают устойчивость к антибактериальным препаратам. Да и условия жизни и питание у большой части населения оставляют желать лучшего. Поэтому статистика неутешительная – в России за период 1992 – 2012 годы смертность от туберкулеза не уменьшилась, а увеличилась. За этот период пиковый показатель смертности приходится на 2005 год – превышает данные 1992 года в 2 раза.
Туберкулез так и остается социальным заболеванием – люди с низким доходом и плохими жилищными условиями остаются в группе риска.
Надо быть настороже
Одним из самых важных мероприятий является выявление туберкулеза на ранних стадиях. Поскольку самой распространенной формой туберкулеза является легочная, важнейшим скрининговым исследованием является флюорография – рентгенологическое исследование легких. Также диагностика туберкулеза проводится лабораторными методами.
Изначально спектр диагностики туберкулеза включал в себя поиск непосредственно самого возбудителя туберкулеза методом микроскопии мазка мокроты и определения специфических противотуберкулезных антител в крови . Сегодня существуют различные современные, высокотехнологичные методы. К ним относится метод генетической идентификации микобактерий туберкулеза.
1. В чем суть молекулярно-генетической диагностики?
Расшифровка генома микобактерий туберкулеза (МБТ) позволила охарактеризовать элементы, присущие микобактериям туберкулезного комплекса и выявить полимо рф ные последовательности, позволяющие отличать различные виды и штаммы МТК между собой. В результате стало возможным проводить идентификацию МТБ и определение их чувствительности к лекарственным препаратам молекулярно-генетическими методами, в частности методом полимеразной цепной реакции (ПЦР). Использование ПЦР в диагностике туберкулеза рекомендовано Минздравом РФ (приказ №64 "Об утверждении номенклатуры клинических лабораторных исследований" от 21.02.2000 г., п. 9.1.5. приложения).
2. Какие преимущества метода ПЦР?
Методы идентификации, основанные на ПЦР, имеют преимущество в специфичности и быстроте анализа по сравнению с культуральными и биохимическими методами. Высокая чувствительность ПЦР позволяет:
- обнаружить в исследуемом материале единичные копии ДНК возбудителя и даже фрагменты ДНК,
- использовать для исследования различный материал: мокрота, промывные воды бронхов, моча и т.д.
- сократить время анализа на выявление МТБ и определение лекарственной устойчивости с 1-3 месяцев до 1-3 дней,
- определить и дифференцировать конкретные мутации в наиболее значимых кодонах основных генов, ассоциированные с лекарственной устойчивостью к рифампицину, изониазиду, этамбутолу, фторхинолонам. Это помогает провести раннюю своевременную коррекцию схемы химиотерапии,
- специфичность ПЦР близка к 100%, что позволяет избежать перекрестных реакций с ДНК бактерий-возбудителей других легочных инфекций (L.pneuphila, M.pneumoniae, K.pneumoniae, Y.pestis, Y.pseudotuberculosis, S.aureus, E.coli, F.tularensis) и ДНК человека,
- ПЦР достаточно информативна при необходимости подтверждения диагноза туберкулеза у детей и подростков при отрицательных результатах традиционных микробиологических методов исследования.
3. Какое исследование пройти?
Информация об исследовании
T-SPOT.TB (тест Т-спот)
Непрямой метод лабораторной диагностики туберкулезной инфекции, основанный на определении количества гамма-интерферона (IFNg), который производят мононуклеарные лимфоциты периферической крови в результате взаимодействия с белками ESAT-6 и CFP-10 – их продуцирует бактерия-возбудитель заболевания. Позволяет идентифицировать возбудителя туберкулеза уже через три недели после инфицирования.
В 2017 году тест T-спот был включен в рекомендации Минздрава РФ в качестве скринингового диагностического метода для выявления туберкулезной инфекции у детей в возрасте от 1 года до 17 лет. Исследование не рекомендовано для дифференциации активной и латентной форм заболевания.
- Подходит для скрининга туберкулезной инфекции у детей, прошедших иммунопрофилактику БЦЖ-вакциной.
- Позволяет обнаружить иммунный ответ не только к наиболее распространенному возбудителю туберкулеза – M. tuberculosis, но и к значительно реже встречающимся видам M. microti, M. bovis, M. africanum, M. canetti.
- взрослые и дети старше 10 лет – 6–8 мл;
- дети 2–9 лет – 4–6 мл;
- пациенты с иммунодефицитом – не менее 10 мл.
Инфекционное заболевание, поражающее легкие, вызывают бактерии рода Mycobacterium, в подавляющем большинстве случаев – M. tuberculosis. Ежегодно туберкулез уносит около 2 миллионов жизней. В год регистрируется более 9 миллионов новых случаев заболевания, а по подсчетам Всемирной организации здравоохранения, латентными носителями инфекции являются 2,3 миллиарда человек, то есть почти треть населения планеты.
Микобактерия туберкулеза – крупная неподвижная палочковидная бактерия. Один цикл ее деления длится 18–24 часа, по этой причине микобактерии медленно растут на питательных средах. При этом M. tuberculosis обладает высокой устойчивостью к факторам внешней среды: сохраняет жизнеспособность при нагревании до 80–90 о С и охлаждении до -260 о С, а также высушивании. На бытовых предметах способна сохраняться до полугода, выдерживает воздействие стандартных концентраций большинства дезинфицирующих средств, в агрессивной кислой среде (например, в желудочном соке) может сохраняться до 6 часов. Широко распространена генетическая устойчивость микобактерий к антибактериальным препаратам.
Пути передачи туберкулезной инфекции
- Воздушно-капельный (основной): бактерия выделяется во внешнюю среду с капельками мокроты при выдохе или кашле.
- Воздушно-пылевой: в результате накопления бактерий в пыли помещений, в которых длительное время находился больной человек.
- Алиментарный: бактерии попадают в организм человека с молочными продуктами или мясом больных животных.
- Контактный: при совместном использовании бытовых предметов, на которых способны накапливаться микобактерии (книги, гаджеты, постель, пледы, ковры).
- Внутриутробный (крайне редкий): при поражении плаценты туберкулезом.
- Иммунная система самостоятельно избавляется от микобактерии.
- Развивается активная фаза заболевания.
- Бактерия длительное время сохраняется в латентной форме
- Кашель более 3 недель, иногда с мокротой и/или кровью.
- Боль в груди.
- Температура 37–38 ˚С
- Ночная потливость, слабость.
Показания к назначению исследования
- Скрининговое обследование детей (в качестве альтернативы пробе Манту или Диаскин-тесту).
- При положительном результате пробы Манту у ребенка, прошедшего БЦЖ-вакцинацию.
- В качестве дополнительного метода обследования пациентов при комплексной диагностике туберкулезной инфекции.
Подготовка к исследованию
Кровь рекомендуется сдавать утром, в период с 8 до 11 часов, натощак (между последним приемом пищи и взятием крови должно пройти не менее 8-ми часов, воду можно пить в обычном режиме), накануне исследования легкий ужин с ограничением приема жирной пищи.
За 1-2 часа до сдачи крови воздержаться от курения, не употреблять сок, чай, кофе, можно пить негазированную воду. Исключить физическое напряжение (бег, быстрый подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение. За 15 минут до сдачи крови рекомендуется отдохнуть, успокоиться.
Читайте также:
