Паразитарные болезни сельскохозяйственных животных л п дьяконов


16 мая 2008 года исполнилось 80 лет со дня рождения и 66 лет трудовой, научно-педагогической и общественной деятельности Заведующему Отделом Клеточной биотехнологии ВИЭВ, Руководителю Специализированной Коллекции клеточных культур СХЖ РАСХН. Лауреату премии Совета Министров СССР, Заслуженному деятелю науки РСФСР, доктору биологических наук, профессору Льву Петровичу Дьяконову.

Свою трудовую деятельность Лев Петрович Дьяконов начал рабочим совхоза в 1942 г. В 1944 г. поступил и в 1947 г. закончил с отличием Рязанский зооветтехникум, после чего был рекомендован для продолжения учёбы в вузе. В 1952 г. окончил с отличием Московскую ветеринарную академию и был направлен в Грозненскую область, где работал Зав. центральным зооветучастком и главным ветврачом Каясулинского района (сейчас Нефтекумский р-н Ставропольского края). Л.П. Дьяконова избирают членом РК КПСС, депутатом районного Совета, заместителем председателя Исполкома районного Совета.

С ноября 1955 г. Л.П.Дьяконов работает в ВИЭВ. В 1955-1958 гг. - он аспирант лаборатории протозоологии, с 1959 г. - мл.н. сотрудник, с 1960 по 1974 гг. - ст.н. сотрудник той же лаборатории, с января 1975 г. по настоящее время зав. лабораторией клеточной биотехнологии ВИЭВ. В 1960 г. Л.П. Дьяконов защитил кандидатскую, в 1972 г. - докторскую диссертацию, в 1977 г. ему присвоено научное звание - профессор.

Профессор Л.П. Дьяконов - один из ведущих учёных в области протозоологии, инфекционной патологии животных и клеточной биотехнологии. На основе использования новейших методов исследований: цитологии, электронной микроскопии, клеточной инженерии и биотехнологии, молекулярной биологии, направленных на решение актуальных проблем диагностики и профилактики протозойных и инфекционных болезней животных он внёс значительный вклад в развитие биологической и ветеринарной науки. Л.П. Дьяконов установил новые для науки виды кровепаразитов: Пироплазма берицери и Гемобартонелла маркови, открыл новое для СССР заболевание овец - эперитрозооноз.

Изучение ультраструктуры и жизненных циклов ряда возбудителей, таких как анаплазмы, пироплазмы, тейлерии, нутталлии, эперитрозооны, микоплазмы позволило дать научно обоснованную классификацию возбудителей, внести уточнения в эпизоотологию кровепаразитарных болезней. Предложенные методы диагностики и лечения включены в инструкции, наставления, методические указания и широко используются в производстве.

С 1975 г. профессор Л.П. Дьяконов заведует лабораторией экспериментальной технологии культур тканей, питательных сред и клеточной биотехнологии - отделом клеточной биотехнологии. Развивая новые направления клеточной биологии и биотехнологии, Л.П. Дьяконов и возглавляемый им коллектив в содружестве с учёными институтов АН СССР (РАН), АМН (РАМН), РАСХН, МГУ, НИВИ, лабораториями ВИЭВ и другими учреждениями разработали и внедрили в производство новые основы питательных сред для культивирования клеток, вирусов, бактерий, микоплазм - ФГМ-С, ГСБМ, ФКДГ, гидролизаты белков сои и гороха. Выведено более 50 новых диплоидных культур и постоянных линий клеток из немалигнизированных тканей сельскохозяйственных животных, которые высокочувствительны к вирусам и широко используются в научных и производственных целях. Получены гибридомы к антигенам микоплазм, соматотропину, приону - PrP sc , разработаны иммуноферментные диагностикумы на основе поли - и моноклональных антител. Впервые получены мутантные культуры клеток СПЭВ ТК , ТР ГФРТ и ПОТК , что позволило развить новое направление клеточной биологии и получить гибридные культуры клеток (внутривидовые и межвидовые) с лимфоцитами лошади, коровы, свиньи, овцы, кролика, энтероцитами и бета- клетками поджелудочной железы - перспективные для вирусологии и биотехнологии. Установлена компетентность клеток и зигот с/х животных к восприятию чужеродной генетической информации, получены трансформированные культуры клеток, трансгенные животные и зиготы.

Под руководством профессора Л.П. Дьяконова создана и развивается Специализированная коллекция клеточных культур с/х и промысловых животных (СХЖ РАСХН) в составе Российской Коллекции клеточных культур РАН. В коллекции и криобанке ВИЭВ депонировано более 350 штаммов и линий клеток от 21 вида животных, (более 3500 образцов хранения), осуществляется международное сотрудничество.

Создается криобиологический геномный банк клеток (соматических и зародышевых) редких и исчезающих видов животных, а также племенных высокопродуктивных животных в целях сохранения генофонда и биоразнообразия.

Характерной особенностью работ проф. Л.П. Дьяконова является их фундаментальность и быстрое внедрение в производство в силу своей эффективности и значимости. На основе методов клеточной инженерии и молекулярной биологии внесён вклад в решение одной из кардинальных проблем клеточной биотехнологии - диагностики микоплазма-контаминации клеточных культур и их деконтаминации от микоплазм. Разработаны и внедряются в производство методы массового культивирования клеток - роллерное, суспензионное, на микроносителях и др.

Новизну проводимых исследований подтверждают 35 изобретений и 6 патентов.

Профессор Л.П. Дьяконов ведёт большую научо- педагогическую работу: подготовлено 9 докторов наук, 40 кандидатов наук, Он читает лекции студентам, руководит выполнением дипломных работ, проводит подготовку и переподготовку кадров на семинарах, курсах усовершенствования, совещаниях и путём стажировок. Он оказывает большую научно-методическую и практическую помощь научным и диагностическим ветеринарным учреждениям и практическим специалистам в проведении мер борьбы с инфекционными и протозойными болезнями животных, в проведении исследований на культурах клеток и биофабрикам в организации производства биопрепаратов. Разработаны наставления, методические рекомендации, указания, нормативно-технические документы, которые используются в практике.

Научные труды профессора Л.П. Дьяконова хорошо знают специалисты как в России, так и в зарубежных странах. Признанием научных достижений Л.П. Дьяконова является присуждение ему премии Совета Министров СССР (1990), почётного звания Заслуженный деятель науки РСФСР (1988), избрание академиком Российской Академии Естествознания (РАЕ), Нью-Йоркской Академии наук и Петровской Академии наук и искусств.

Выводы. В результате проводимой в хозяйстве работы по профилактике и лечению гиподерматоза крупного рогатого скота, которая хотя и проводится на недостаточно высоком уровне заболеваемость взрослых животных с 4,3 % в 1998 г. снизилась до 2,4 % в 2000 г. , молодняка с 11,2 % в 1998 г. снизилась до 7,1 % в 2000 г. В хозяйстве не всегда проводится обработка системными инсектицидами вновь завезённых в хозяйство животных. Животные, поражённые личинками II и III стадий выгоняются на пастбища. В период стойлового содержания уборка навоза осуществляется не регулярно.

За последние три года хозяйство терпит убытки от недополучения сельско – хозяйственной продукции и затрат на приобретение инсектицидов.

Утвердить и провести план лечебно – профилактических мероприятий.

Вместо гиподермин-хлорофоса применять ивомек, что позволит уничтожить 100 % личинок I стадии и профилактировать различные гельминтозы крупного рогатого скота.

Повысить уровень культуры обслуживающего персонала и улучшить условия содержания животных.

Животных, поражённых личинками II и III стадий не выгонять на пастбища до полного уничтожения личинок.

4. Библиографический список использованной литературы.

Абуладзе К.И. Паразитология и инвазионные болезни сельско – хозяйственных животных. М. : Колос, 1982.

Абуладзе К.И. Практикум по диагностике инвазионных болезней сельско – хозяйственных животных. М. : Колос, 1984.

Акбаев М.Ш. Паразитология и инвазионные болезни животных. М. : Колос, 1998.

Андреев К.П. Ветеринарная энтомология и дезинсекция. М. : Колос, 1966.

Дьяконов Л.П. , Орлов И.В. , Абрамов И.В. и др. Паразитарные болезни сельско – хозяйственных животных. М. : Агропромиздат, 1985.

Дядечко В.Н. и Ямов В.З. Подкожные оводы – вредители животных. Свердловск, Средне – Уральское книжное издание, 1966.

Журнал “Ветеринария”. М. : Колос, 1995. № 3; 1996. № 5,6; 1998. № 2,3,8; 2000. № 8.

Кузнецов А.Ф. Справочник ветеринарного врача. Санкт – Петербург “Лань”, 2000.

Непоклонов А.А. Болезни животных вызываемые оводами. М. : Колос, 1980.

Никитин И.Н. , Шайхаманов М.Х. , Воскобойник В.Ф. Организация и экономика ветеринарного дела. М. : Колос, 1996.

Никитин И.Н. Практикум по организации и экономике ветеринарного дела. М : Колос, 1998.

Родин С.Д. Защита животных от клещей и насекомых. М. : Россельхозиздат, 1981.

Савельев Д.А. Кожный овод крупного рогатого скота и меры борьбы с ним. Государственное издательство сельско – хозяйственной литературы. Москва 1951 Ленинград.

Третьяков А.Д. Ветеринарное законодательство. 3 Том. М. : Колос, 1981.

Якубовский М.В. , Карасёв Н.Ф. Паразитарные болезни животных. Справочник. Минск : Ураджай, 1991.

1.1. Определение заболевания, морфология и биология

1.3. Патогенез и клиническая картина. 9-11

1.4. Патологоанатомические изменения. 11

1.6. Дифференциальная диагностика. 13

1.7. Лечение и профилактическая обработка

2. Собственные исследования.

2.1. Характеристика хозяйства. 16-17

2.2. Цель и задачи исследования. 17

2.3.Материалы, методы и результаты исследований. 17-19

2.4. Эпизоотология заболевания в хозяйстве. 19-21

2.5. Патогенез и клиническая картина. 21-22

2.6. Диагностика заболевания. 22

2.7. Лечение и профилактическая обработка

2.9. Экономический ущерб и экономическая 23-25

2.10. Анализ и обсуждение полученных результатов. 25

3. Выводы и предложения. 26

4. Библиографический список использованной

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РФ

ИНСТИТУТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ ОМСКОГО ГОСУДАРСТВЕННОГО АГРАРНОГО УНИВЕРСИТЕТА

Кафедра паразитологии и инвазионных болезней сельскохозяйственных животных

ВЫПУСКНАЯ КВАЛИФИКАЦИОННАЯ РАБОТА

На тему : “Распространение и профилактика гиподерматоза крупного рогатого скота” в СПК “Некрасовское”, Нижнеомского района, Омской области.

Исполнитнль: Миронова Галина Владимировна

Студентка заочного факультета, 607 группы.

Руководитель: Гапон Н.М.кандидат ветеринарных

наук, доцент кафедры паразитологии

Рецензент: Герунов В.И. доктор ветеринарных

наук, доцент кафедры патологической анатомии

на выпускную квалификационную работу студентки заочного факультета 607 группы Мироновой Галины Владимировны на тему: “Распространение и профилактика гиподерматоза крупного рогатого скота” в СПК “Некрасовское”, Нижнеомского района, Омской области”.

Гиподерматоз крупного рогатого скота относится к числу наиболее распространённых и опасных инвазий, причиняющих значительный ущерб животноводству.

В силу этого тема является актуальной, а изучение региональных особенностей эпизоотологии, разработка мер борьбы и профилактики – крайне необходимой.

Решению этих задач на примере конкретного хозяйства и были посвящены исследования студентки-выпускницы Мироновой Г.В.

В процессе выполнения выпускной квалификационной работы она изучила обширную научную литературу, выявила степень распространения, возрастную и сезонную динамику гиподерматоза в СПК “Некрасовское”, испытала лечебную эффективность двух препаратов и предложила пути ликвидации инвазии в хозяйстве.

На наш взгляд работа выполнена методически правильно на достаточном материале и отвечает требованиям методических указаний, а её автор Миронова Г.В. заслуживает присвоения квалификации ветеринарного врача.

Руководитель: кандидат ветеринарных

наук,доцент кафедры паразитологии Гапон Н.М.

Подпись доцента Гапона Н.М. заверяю,

начальник ОК Волошко Е.Д.

на выпускную квалификационную работу, студентки заочного факультета 607 группы Мироновой Галины Владимировны на тему: “Распространение и профилактика гиподерматоза крупного рогатого скота” в СПК “Некрасовское”, Нижнеомского района, Омской области.

В настоящее время в условиях производства, профилактика и лечение гиподерматоза крупного рогатого скота является одной из актуальных задач ветеринарной практики.

Гиподерматоз крупного рогатого скота широко распространён и наносит огромный экономический ущерб животноводству, который складывается из снижения молочной и мясной продуктивности, снижения качества кожевенного сырья, затрат на приобретение системных инсектицидов и проведения противооводовых мероприятий. В этих условиях актуально изыскание более эффективных препаратов для борьбы с гиподерматозом.

Выпускницей Мироновой Г.В. работа выполнена в объёме 26 стр. , имеются 3 таблицы, один график, 6 рисунков и все требуемые разделы для выполнения работы.

Выпускница изучила эпизоотологию гиподерматоза в СПК “Некрасовское”, провела клиническое обследование поголовья на наличие желваков, в сравнительном аспекте определила эффективность ивомека и гиподермин-хлорофоса против различных стадий личинок гиподерм.

В результате проведённой работы Мироновой Г.В. были получены данные, при которых применение ивомека оказалось более эффективным против личинок I стадии, а гиподермин-хлорофоса против личинок II и III стадий гиподерм.

В целом же работа принципиальных недочётов, влияющих на оценку не имеет, отвечает требованиям, предъявляемым к выпускным квалификационным работам.

Рецензент: доктор ветеринарных Герунов В.И.

Анаплазмоз И Бабезиоз Крупного Рогатого Скота В Центральном Районе Российской Федерации

С.В. Енгашев, д.в.н., профессор, член-корреспондент РАН,

Анаплазмоз (Anaplasma marginale) и бабезиоз (Babesia divergens) распространены среди крупного рогатого скота абердино-ангусской и голштинской пород в Брянской и Рязанской областях. При клиническом исследовании животных и микроскопии мазков периферической крови отмечено как латентное носительство, так и субклиническая, хроническая форма заболеваний. В 38 % случаев установлена смешанная форма анаплазмоза и бабезиоза. Увеличение заболеваемости анаплазмозом обусловлено высокой численностью иксодовых клещей Dermacentor reticulatus, Ixodes ricinus, кровососущих двукрылых Tabanus bovinus, T. sudeticus, Chrysops spp., Haematobia spp., Stomoxys calcitrans. Достаточно частые случаи инфекционного кератоконъюнктивита - моракселлеза объясняются интенсивной циркуляцией Moraxella bovis в популяциях мух (Musca domestica, M. autumnalis, Fannia canicularis), имеющих лижущий ротовой аппарат. Для лечения анаплазмоза, а также с целью предупреждения осложнений в форме сердечной и дыхательной недостаточности животным с симптомами заболевания рекомендуется внутримышечное трехкратное введение пролонгированных антибиотиков тетрациклинового ряда (окситрон 200) в сочетании с эмидонолом 10 % (5-7 инъекций). В качестве специфического средства терапии бабезиоза следует однократно применять бабезан 12 %. Ключевые слова: крупный рогатый скот, абердино-ангусская и голштинская породы, иксодовые клещи, слепни, зоофильные мухи, анаплазмоз, бабезиоз, моракселлез, зараженность, экстенсивность инвазии, уровень паразитемии.

Анаплазмоз и бабезиозы распространены среди крупного рогатого скота в разных природно-географических зонах, регионах Российской Федерации и протекают тяжело, особенно в смешанной форме (Аnaplasma marginale + Babesia divergens) [1, 4].

В Центральном районе Российской Федерации биологические переносчики возбудителей бабезиоза крупного рогатого скота - иксодовые клещи Ixodes ricinus, Dermacentor reticulatus [2, 8]. Циркуляция анаплазм (механическая передача) происходит через паразитиформных клещей семейства Ixodidae и кровососущих двукрылых (слепней, зоофильных мух родов Haematobia, Stomoxys) многих видов.

Коровы и племенные быки мясных пород в энзоотической и латентной зоне являются паразитоносителями и основными источниками возбудителей анаплазмоза, бабезиоза. Часто заболевания у них протекают в субклинической форме. У телят до одного года, бычков на откорме, телок и нетелей, вследствие отсутствия нестерильного иммунитета, может наблюдаться острое и подострое течение [2, 3].

Высокая численность популяций иксодовых клещей, кровососущих двукрылых и возрастающая с каждым годом интенсивность эпизоотического процесса при анаплазмозе и бабезиозе крупного рогатого скота обосновывают необходимость регулярного эпизоотологического мониторинга, совершенствования средств защиты животных от кровососущих членистоногих и комплексной терапии [3, 4, 5, 6].

Для лечения и химиопрофилактики анаплазмоза и других риккетсиозов высокоэффективны антибиотики тетрациклинового ряда (окситетрациклин 1 и 3 %, террамицин, окситрон 200).

Материалы и методы

В Брянской и Рязанской областях исследования животных на иксодовых клещей проводили путем клинического осмотра при выполнении лечебно-профилактических мероприятий в кораллах и животноводческих помещениях. При этом осматривали участки тела, на которых преимущественно локализуются иксодиды (голова, шея, нижняя часть груди, вымя, промежность, основание хвоста). В случаях обнаружения иксодовых клещей устанавливали их количество и принадлежность к роду, виду.

Результаты и обсуждение

Клещи Dermacentor reticulatus являются треххозяинными и развитие их от яйца до имаго происходит от одного до трех лет. При этом большинство пироплазмид, за исключением тейлерий и нутталлий, передаются в поколениях клещей трансовариально (до 12-15 генераций). Поэтому даже при относительно невысокой численности популяций иксодовых клещей создаются условия для постоянной циркуляции возбудителей пироплазмидозов и сохранения тенденции повышения интенсивности эпизоотического процесса при бабезиозе (Babesia divergens).

Широкое распространение среди крупного рогатого скота анаплазмоза объясняется не биологическими особенностями переносчиков и длительной циркуляцией возбудителей в их генерациях, а очень высокой численностью популяций кровососущих двукрылых (слепней, мух гематобий, жигалок) – механических переносчиков Anaplasma marginale.

Высокая численность слепней, кровососущих зоофильных мух, предполагает потенциальную возможность передачи крупному рогатому скоту не только возбудителей анаплазмоза, но и бактериальных, риккетсиозных инфекций, в том числе опасных для человека (туляремия, Ку-лихорадка и др.).

В период максимальной активности кровососущих зоофильных мух (июль, август) гематобий и жигалок обнаруживали в условиях пастбищ с 12 ч 00 до 14 ч 00 на теле коров, телят, племенных быков (область холки) в количестве от 16-35 до 68-152. При этом поведение животных без ушных инсектицидно-репеллентных бирок характеризовалось вначале беспокойством, активными движениями головой, хвостом, а затем угнетением, особенно у телят. Быки проявляли агрессивность, разрывали передними конечностями почву, поднимая пыль и пытаясь укрыться в ней, а в ряде случае перекатывались с боку на бок.

В период активности иксодовых клещей Dermacentor reticulatus, а также слепней и кровососущих мух Haematobia spp., Stomoxys calcitrans на пастбищах Брянской области (апрель – май и август - сентябрь) зараженность бычков Anaplasma marginale достигает 33 % (10 из 30), Babesia divergens - 23 % (7 из 30) при уровне паразитемии соответственно от 0,8-1,5 до 21-47 % и от 0,15-0,5 до 2,5-7 %

У неиммунных племенных быков острая и подострая форма анаплазмоза в смешанной форме с бабезиозом характеризуется лихорадкой (температура тела – 40,5-41ºС), значительным снижением аппетита, шаткой походкой, тахикардией, одышкой, анемичностью слизистых оболочек. Среди бычков на откорме отмечены только субклинические случаи заболеваний анаплазмозом и бабезиозом. Результаты микроскопических исследований мазков крови от крупного рогатого скота абердино-ангусской породы в Трубчевском, Мглинском, Дубровском и Рославльском районах представлены в таблицах 1 и 2.

В Рязанской области, кроме клещей D. reticulatus, распространены Ixodes ricinus, но их численность не высокая. Соотношение двух вышеуказанных видов иксодид в среднем составляет соответственно 10:1. По результатам микроскопического исследования мазков периферической крови крупный рогатый скот голштинской породы заражен Anaplasma marginale от 69 до 73 %, Babesia divergens – от 15 до 23 %. Уровень паразитемии при анаплазмозе коров, нетелей, первотелок максимальный в летний и осенний сезоны соответственно 18 – 22 и 30-38 колоний Anaplasma marginale на 100 эритроцитов. Клинически выраженное заболевание установлено преимущественно у первотелок (острая и подострая форма анаплазмоза), несмотря на более низкий уровень паразитемии, по сравнению с таким же показателем при исследовании коров и нетелей. Вышеуказанные особенности объясняются отсутствием нестерильного иммунитета у животных до 2-3 лет. Смешанная форма анаплазмоза и бабезиоза характеризуется лихорадкой (температура тела – 40,5-41ºС), угнетением, значительным снижением аппетита и двигательной активности, тахикардией, одышкой, анемичностью слизистых оболочек.

При острой форме анаплазмоза в мазках крови обнаруживается до 3-5 колоний анаплазм в расчете на один эритроцит и их патологические формы (анизоциты, пойкилоциты, полихроматофильные клетки). Субклиническое течение заболевания характеризуется наличием одиночных колоний Anaplasma marginale и отсутствием патологических форм эритроцитов. Полученные результаты представлены в таблице3.

Результаты микроскопического исследования на анаплазмы мазков крови от крупного рогатого скота абердино-ангусской породы в Брянской области

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Ладина Д.С., Кармалиев Р.С.

Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Ладина Д.С., Кармалиев Р.С.

Transmission and season dynamics of nematodoses of cattle in West-Kazakh Region

The cattle at the farm “Koyan” were infected by gastrointestinal Strongylata in all seasons of year. The Nematodirus spp., Trihostrongylus spp., Ostertagia spp. and Cooperia spp. infection extensity values were noted in August-October as while the same index for Haemonshus spp. was detected in JuneJuly and September. As the infection extensity value increased the number of eggs in faeces of cattle also enhanced. One recorded reduction of nematode egg number in autumn-winter period.

Summary. Eminol 10% solution given to Arctic foxes and raccoon dogs at dose level of 0,1 ml/kg of body weight intramuscularly once a day for 15 days at the phone of anthelmintic febtal granulate didn’t cause any adverse reactions. The general condition of animals was good and they restored faster following treatment by anthelmintic. The efficacy value of febtal appeared to be 92,8 and 92,5% in Arctic foxes and raccoon dogs respectively; cases of diarrhea were not noted

РАСПРОСТРАНЕНИЕ И СЕЗОННАЯ ДИНАМИКА НЕМАТОДОЗОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В ЗАПАДНО-КАЗАХСТАНСКОЙ ОБЛАСТИ

Ладина Д.С., Кармалиев Р.С.

Западно-Казахстанский аграрно-технический университет им. Жангир хана

Введение. Для улучшения продуктивности крупного рогатого скота необходима эффективная борьба с нематодозами, которые широко распространены на территории Республики Казахстан и наносят большой экономический ущерб. Осуществление мер борьбы с гельминтами возможно лишь при знании краевых особенностей биологии и эпизоотологии заболеваний, диагностики и правильного выбора антигильминтиков 3.

Из нематод семейства трихостронгилид, паразитирующих у крупного рогатого скота, наибольшее распространение в Западно_Казахстанской области имеют гельминты из родов Ostertagia, Nematodirus, Trichostrongylus, Haemonchus. Заболевания, вызываемые этими паразитами, протекают, как правило, в виде смешанных инвазий4.

Цель наших исследований - определить распрастраненность стронгилят желудочно-кишечного тракта у крупного рогатого скота и сезонную динамику в условиях Западно-Казахстанской области.

Результаты исследований. Нематодироз. В среднем, экстенсивность инвазии животных нематодирами составила 33,8%. До начала выпасного сезона инвазированность составила 23,5%, а в течении всего выпасного сезона повышалась. В сентябре она достигла максимума - 54,8%. В осенне-зимний

период инвазированность снизилась и составила 43,5-28,7%, соответственно. Количество яиц нематодир в фекалиях в августе - сентябре было максимальное. Экстенсивность инвазии составила 79,4±8,6-83,5±8,2 яиц нематодир, соответственно. Минимальное количество яиц нематодир в г фекалий крупного рогатого скота отмечали зимой - 26,3±3,9 экз. Таким образом, в течение всего года выпасавшийся крупный рогатый скот был инвазирован нематодирами (N.spathiger) с пиком в сентябре.

Остертагиоз. Остертагиоз установлен, в среднем, за год у 48,7% поголовья крупного рогатого скота. Перед выгоном на пастбище экстенсивность инвазии составила 29,4%, а в течение летнего периода повышалась и достигала 95,3% в августе. В сентябре и октябре экстенсивность составила соответственно 85,9 и 71,4%. В зимний период экстенсивность инвазии стала минимальной. Среднее количество личинок в течение года колебалось от 68,8±13,6экз. в декабре до 126,9±14,1 экз. в мае. Максимальное количество личинок обнаруживали в мае 126,9±13,1 экз. и августе 114,7±16,3 экз. Осенью и, особенно, зимой количество личинок остертагий значительно снижалось (до 68,8±13,6 экз.). Таким образом, в течение всего года крупный рогатый скот оказался инвазированным остертагиями. Максимальная экстенсивность инвазии была в августе и сентябре.

Коопериоз. Коопериоз установлен, в среднем, у 48,6% поголовья. До выгона на пастбище 47,8% поголовья было инвазировано коопериями. Летом инвазированность животных и количество яиц/личинок в фекалиях постепенно повышалось, достигая максимума в сентябре (ЭИ = 57,4%). Экстенсивность инвазии снизилась, достигая минимальных показателей в январе-феврале (ЭИ=43,1-43,4%). Среднее количество личинок кооперий составило весной 118,5+19,2-118,5±18,3 экз., летом 98,7±11,7-109,2±21,3 экз., осенью 108,4±18,599,6±18,7 экз. и зимой 66,5±16,5-69,3±19,4 экз. Таким образом, в течение всего года выпасавшийся крупный рогатый скот был инвазирован коопериями. Экстенсивность инвазии колеблется от 44,1 до 57,4%, достигая пика в сентябре.

Гемонхоз. Установлена слабая степень инвазированности гемонхами в течение всего года (19,6%). В летний период (июнь 25,7%) и в начале осени (сентябрь 27,9%) отмечали незначительное повышение экстенсивности инвазии. Инвазированность составила весной 23,8-25,4%, летом 25,7-14,9%, осенью 27,9-14,1% и зимой 12,9-17,8%. Значительное снижение экстенсивности инвазии происходило зимой (декабрь 12,9%). Максимальное количество яиц/личинок обнаруживали в сентябре 169,7±15,5 экз. Снижение количества яиц/личинок гемонхов в г фекалий крупного рогатого скота до 132,7±11,9 экз. наблюдали в зимний период. Среднее количество яиц/личинок гемонхов в г фекалий было равным 154,3±14,4 экз. Следовательно, гемонхоз у выпасавшегося крупного рогатого скота отмечается в течение всего года при экстенсивности инвазии от 12,9 до 27,9% (в среднем, 19,6%).

Трихостронгилез. Молодняк и взрослый крупный рогатый скот во все сезоны года были инвазированы трихостронгилами. Инвазированность крупного рогатого скота перед выгоном на пастбище составила 19,3%. Летом отмечали постепенное повышение экстенсивности инвазии, достигая

максимума 28,8 % в августе. Осенью происходило снижение экстенсивности инвазии до 18,8-27,4%. Зимой инвазированность снижалась до 14,4%. Среднее количество личинок трихостронгилов в г фекалий в течение года колебалось от 122,1±12,9 экз. (в феврале) до 169,5±16,3 экз. (в августе), а в среднем, составило 143,7±14,4 экз. Таким образом, в течение всего года выпасавшийся крупный рогатый скот был инвазирован трихостронгилами - ЭИ = 21,9%.

2. Максимальную экстенсинвазированность, выпасавшегося крупного рогатого скота, отмечали нематодирами, трихостронгилами, остертагиями и коопериями в августе-октябре, гемонхами - в июне-июле и сентябре.

3. С повышением экстенсивности инвазии увеличивалось количество яиц в фекалиях крупного рогатого скота.

4. В осенне-зимний период наблюдали снижение количества яиц нематод.

Литература: 1. Абуладзе К.И., Демидов Н.В., Непоклонов А.А. и др.

Transmission and season dynamics of nematodoses of cattle in West-Kazakh Region. Ladina D.S., Karmaliev R.S. Zhangir Han Western Kazakh Agrarian-Technical University.

Summary. The cattle at the farm “Koyan” were infected by gastrointestinal Strongylata in all seasons of year. The Nematodirus spp., Trihostrongylus spp., Ostertagia spp. and Cooperia spp. infection extensity values were noted in August-October as while the same index for Haemonshus spp. was detected in June- July and September. As the infection extensity value increased the number of eggs in faeces of cattle also enhanced. One recorded reduction of nematode egg number in autumn-winter period.

СОСТОЯНИЕ БЕЛКОВО-ЛИПИДНОГО ОБМЕНА У ЛОШАДЕЙ ПРИ СМЕШАННЫХ НЕМАТОДОЗАХ

Способ относится к ветеринарии и предназначен для диагностики саркоптоидозов и демодекозов животных. Способ включает взятие соскоба с пораженного участка кожи животного, помещение его в каплю кедрового масла на предметное стекло и микроскопию с целью идентификации и дифференциации возбудителей. Кедровое масло просветляет хитиновый покров клещей, что обеспечивает высокую точность определения рода и вида возбудителей заболевания.

Изобретение относится к ветеринарии и может быть использовано в лабораторной диагностике для идентификации возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных.

В настоящее время известны многочисленные способы лабораторной диагностики возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных, в том числе один из них, в соответствии с которым берут соскобы с пораженных участков кожи и при наличии в последних плотных корочек их сначала расщепляют иголками, а потом помещают в пробирки с 10% раствором едкого натра или едкого калия на 20 - 40 мин, после чего каплями исследуют материал под покровным стеклом (Л. П. Дьяконов, И.В.Орлов и др. Паразитарные болезни с/х животных.- М.: Агропромиздат, 1985, с. 280). Однако данный способ достаточно длителен, поскольку необходимо время для растворения корочек, что не всегда удобно, а также и небезопасен, поскольку при неосторожном обращении со щелочью можно получить химический ожог.

Известен способ лабораторной диагностики возбудителей чесоточных заболеваний, заключающийся в том, что раствор солей щелочи с соскобами центрифугируют, после чего осадок исследуют каплями под покровным стеклом. (П.Д.Дьяконов, И.В.Орлов и др. Паразитарные болезни с/х животных. М.: Агропромиздат, 1985, с. 280). Однако данный способ трудоемок и требует специального лабораторного оборудования.

Наиболее близким к изобретению по совокупности признаков является способ, в соответствии с которым соскобы с пораженных участков кожи животных помещают на предметное стекло в каплю керосина, покрывают вторым предметным стеклом, сдавливают эти стекла пальцами руки и исследуют под микроскопом (С. Н. Никольский, А. А.Водянов. Псороптозы овец и крупного рогатого скота. М.: Колос, 1979, с. 124). Однако данный способ не обладает высокой степенью достоверности и небезопасен для исследователя, поскольку может вызвать аллергическую и токсическую реакцию организма.

Заметим также, что все вышеизложенные способы диагностики позволяют определить только род клещей, однако для постановки диагноза необходимо точно знать вид возбудителя, с тем чтобы правильно организовать лечебно-профилактические мероприятия.

Изобретение решает задачу создания способа лабораторной диагностики возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных, позволяющего быстро, просто и точно осуществлять их идентификацию и внутривидовую дифференциацию и не требующего при этом дорогостоящего оборудования и реактивов.

Для решения поставленной задачи в известном способе лабораторной диагностики возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных, включающем взятие соскоба с пораженного участка кожи, приготовление из него препарата для микроскопии с последующей микроскопией, идентификацией и дифференциацией возбудителей, при приготовлении препарата для микроскопии используют кедровое масло как средство для просветления хитинового покрова клещей.

Предлагаемый способ диагностики позволяет без затрат на дорогостоящее лабораторное оборудование и реактивы с высокой точностью и достаточно быстро устанавливать не только род, но и вид возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных.

Клещи, находящиеся в соскобе, в кедровом масле хорошо заметны, так как терпеноиды, входящие в состав масла, способствуют просветлению липидной ткани клеща и их хитинового покрова.

Для сравнения скорости постановки диагноза берутся 10 соскобов, исследуются одним из применяемых ранее способов (в частности соскобы помещают в раствор едкой щелочи), а 10 соскобов исследуют с помощью кедрового масла.

На просмотр одного соскоба, помещенного в 10% раствор едкого натрия, необходимо в среднем 5 мин и 30 - 40 мин для растворения корочек, таким образом, 10 соскобов мы исследовали за 1 ч 30 мин. При использовании кедрового масла на исследование одного соскоба необходимо в среднем 3 мин, 10 соскобов мы исследовали за 30 мин. Таким образом, этот метод позволяет минимум в три раза сократить время на лабораторные исследования.

Применение кедрового масла более безопасно по сравнению с применением щелочи, так как при контакте с кожей исследователя не оказывает раздражающего действия.

Таким образом, предлагаемый способ лабораторной диагностики позволяет сократить сроки исследования соскобов, кроме того, при его выполнении не требуется специальное лабораторное оборудование, дорогостоящие химические реактивы, что значительно его удешевляет. К тому же данный способ позволяет с высокой точностью и достаточно быстро устанавливать не только род, но и вид возбудителей саркоптоидозов и демодекозов животных.

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ

Способ диагностики саркоптоидозов и демодекозов животных, включающий взятие соскоба с пораженного участка кожи животного, помещение его на предметное стекло в каплю просветляющей жидкости и последующие микроскопию, идентификацию и дифференциацию возбудителей, отличающийся тем, что в качестве просветляющей жидкости используют кедровое масло.

Читайте также:

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!
При симпотмах заболевания - обратитесь к врачу.

Copyright © Иммунитет и инфекции

Классы МПК: C12Q1/04 установление присутствия и(или) вида микроорганизма; использование селективных сред для испытания антибиотиков или бактерицидов; составы, содержащие химический индикатор для этих целей
Автор(ы): Шустрова Маргарита Викторовна , Гаврилова Надежда Алексеевна , Арестов Олег Анатольевич
Патентообладатель(и): Шустрова Маргарита Викторовна,
Гаврилова Надежда Алексеевна,
Арестов Олег Анатольевич
Приоритеты: