Основные методы лечения при паразитарных болезнях ветеринария

Р.Т. Сафиуллин, ВИГИС
А.В. Семенычев, "Инвеса"

Многочисленными работами отечественных и зарубежных ученых установлено широкое распространение паразитарных болезней животных и значительный экономический ущерб, причиняемый ими. Проведенными исследованиями установлено, что длительное паразитирование как отдельных паразитов, так и нескольких видов одновременно, приводит к глубоким и стойким нарушениям обмена веществ, которые проявляются отставанием в росте, потерей массы тела, продуктивности, снижением племенных качеств, иногда, в случае высокой интенсивности инвазии и гибели животных.

Целью нашей работы было обобщение данных литературы и результатов собственных исследований по установлению коэффициентов заболеваемости (распространение), летальности, удельных величин потерь основной продукции на одно заболевшее животное, установление затрат и разработка комплексной программы по оздоровлению овец от паразитарных болезней с использованием препаратов фирмы "Инвеса".

В ряду основных и перспективных препаратов фирмы необходимо упомянуть РОЛЕНОЛ, содержащий в качестве действующего вещества 5% клозантела, относящийся к группе салициланилидов. Препарат обладает широким спектром противопаразитарного действия, он высокоэффективен в отношении трематод, нематод, личинок оводов и клещей. Клозантел, входящий в состав РОЛЕНОЛА, нарушает энергетические процессы в организме паразитов. Отмечая механизм действия препарата, следует сказать, что клозантел водородосодержащий ионофор, действующий путем торможения оксидированной фосфориляции паразита. При этом специфичность действия препарата заключается в стимулировании активности фермента АТФ, что вызывает остановку процесса фосфорилирования и переноса электронов, сопровождается изменением энергетического метаболизма паразита и его гибели. Из токсокологических характеристик клозантела необходимо отметить, что препарат умеренно опасен для теплокровных животных, в рекомендованных дозах не обладает эмбриотоксическим и тератогенным действием. Характеризуя фармакинетику препарата следует сказать, что препарат хорошо всасывается из места инъекции и проникает во все органы и ткани, достигая максимальной концентрации через 8 часов после подкожного введения. Из всех фасциолоцидных препаратов в настоящее время роленол является высокоэффективным для лечения острого и хронического фасциолеза, а также эстроза мелкого рогатого скота – заболевания, против которого малоэффективны многие противопаразитарные средства.

У овец при фасциолезе препарат назначают в дозе по лекарственной форме из расчета 1 мл на 10 кг массы подкожно однократно, а при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта и эстрозе РОЛЕНОЛ применяют в дозе 0,5 мл на 10 кг массы. Против клещей Psoroptes препарат назначают в дозе 1 и 0,5 мл на 10 кг массы с интервалом 7 дней. Срок ожидания после назначения КЛОЗАНТЕЛА у жвачных животных составляет 28 дней.

В числе других надежных и эффективных препаратов фирмы "Инвеса" следует упомянуть ЛЕВАМИЗОЛ 10 %-ный, который применяют против нематодозов животных. ЛЕВАМИЗОЛ – антгельминтный препарат из группы имидазолов, левовращающий изомер и биологически активная производная тетрамизола, обладающая повышенной надежностью в применении. В отношении механизма действия препарата следует сказать, что ЛЕВАМИЗОЛ действует на нервно-мышечную систему паразита, ингибируя фермент фумарат-редуктазу, вызывая непрерывное сокращение мышц, последующие релаксацию и необратимый паралич паразита, удаляемого из организма вместе с фекалиями. В числе основных достоинств левамизола необходимо отметить его эффективное воздействие как на личинок, так и на зрелые легочные и желудочно-кишечные нематоды мелкого рогатого скота. Для лечения овец препарат назначают при нематодозах легких и желудочно-кишечного тракта в дозе по лекарственной форме из расчета 0,75 мл (75 мг левамизола) на 10 кг живой массы, но не более 4,5 мл на одно животное. Перед использованием каждую партию препарата необходимо испытывать на небольшой группе животных (5-7 голов) и при отсутствии осложнений в течение 2-3 дней препарат назначают всему поголовью. Разрешается убой животных на мясо через 7 дней после введения препарата, а молоко животных можно употреблять через 2 суток.

Один из новых и перспективных препаратов фирмы "Инвеса" - ГАНАМЕКТИН 1 %-ный для инъекций, который является раствором ивермектина в объемно-весовой концентрации. При испытании в разных зонах страны препарат показал высокую активность против нематод пищеварительного тракта и легких, при псороптозе, эстрозе и мелофагозе. ГАНАМЕКТИН, введенный животным подкожно, вызывает усиление выделения нейромедиатора торможения гамма аминомасляной кислоты (ГАМК) у нематод и эктопаразитов, который в назначаемой концентрации безвреден для животного, зато вызывает паралич и гибель паразита. Характеризуя токсикологию и кинетику ганамектина необходимо отметить, что препарат малотоксичен для теплокровных животных, в рекомендованных дозах не оказывает сенсибилизирующего, мутагенного, эмбриотоксического и тератогенного действия. Выводится препарат из организма с мочой и желчью.

Рекомендованной лечебной дозой препарата для овец против нематод, кровососок и личинок оводов является 0,2 мг/кг массы животного по ДВ, что соответствует 1 мл ЛФ на 50 кг живой массы. При псороптозе овец препарат необходимо вводить двукратно с интервалом 7 дней. Убой овец на мясо после лечения ГАНАМЕКТИНОМ разрешается через 28 дней после последней обработки препаратом.

В числе экономичных и надежных препаратов фирмы "Инвеса" необходимо отметить АЛЬБЕНДАЗОЛ пероральный порошок 10%-ный и АЛЬБЕНДАЗОЛ суспензию 2,5 и 10%-ную, действующим веществом, которых является альбендазол, относящийся к группе бензимидазолов, но спектр его действия шире, чем у других представителей данной группы. Характеризуя фармакодинамику препарата следует отметить, что механизм его действия основан на различии жизненных функций организма хозяина и гельминта. У гельминтов АЛЬБЕНДАЗОЛ, тормозя редуктазную ферментативную систему фумарата, блокирует энергетический обмен. Около 50% препарата, введенного перорально, всасывается, проникает в печень, легкие (а также обратно в желудочно-кишечный тракт), где проявляет антгельминтное действие. АЛЬБЕНДАЗОЛ является препаратом широкого спектра действия, оказывает губительное действие на нематод, в числе которых стронгилята пищеварительного тракта и легких, стронгилоиды и другие. АЛЬБЕНДАЗОЛ является эффективным препаратом против цестод (мониезии) и трематод (фасциолы и дикроцелии). АЛЬБЕНДАЗОЛ оказывает действие не только на взрослых, но и на личинок и яйца нематод, т.е. обладает гельминто-, ларво- и овоцидным действием.

У трематод АЛЬБЕНДАЗОЛ эффективен против половозрелых гельминтов, также он обладает овоцидным действием, препарат следует назначать для лечения только хронического фасциолеза. АЛЬБЕНДАЗОЛ порошок овцам назначают перорально, тщательно смешивая с кормом, индивидуально или групповым методом в следующих дозах: для профилактики и лечения гельминтозов вызываемых нематодами и цестодами 0,5 г на 10 кг массы животного; для лечения фасциолеза 0,75 г на 10 кг массы.

Суспензию АЛЬБЕНДАЗОЛА назначают перорально индивидуально, используя пистолет-дозатор, вводя кончик канюли в угол губы и впрыскивая как можно глубже. Перед употреблением препарат взбалтывают. Доза АЛЬБЕНДАЗОЛА суспензии 2,5%-ной мелкому рогатому скоту при нематодозах и цестодозах 2 мл на 10 кг массы животного, при трематодозах 3 мл на 10 кг массы. В терапевтических дозах препарат хорошо переносится животными, малотоксичен, его токсическая доза для овец в 30-50 раз выше лечебной. АЛЬБЕНДАЗОЛ не рекомендуется применять животным в первой трети беременности, такие животные подлежат обработкам по истечении отмеченного срока. Период выведения АЛЬБЕНДАЗОЛА у овец с мясом 10 дней после лечения.

Основной целью комплексной программы является освобождение овец от эндо- (нематод, трематод и цестод), эктопаразитов (чесоточные клещи, вши, кровососки) и личинок оводов (носоглоточных) путем назначения в оптимальные сроки высокоэффективных и доступных по ценам препаратов фирмы Инвеса- Роленола, ганамектина, левамизола и альбендазола.

При этом каждый из предлагаемых препаратов показывает достаточно высокую активность против нескольких групп и видов эндо- и эктопаразитов. В качестве примера следует приводить роленол, который после введения в организм зараженного животного способствует их освобождению от трематод, нематод, личинок оводов и клещей и к тому же препарат малотоксичен и доступен по цене. До совсем недавнего времени для достижения аналогичного с роленолом противопаразитарного эффекта практические ветеринарные врачи были вынуждены использовать три моновалентных препарата. Они известны: политрем – при трематодозе; тетрамизол – при нематодозах и неостомозан – против клещей.

Ганамектин – будучи высокоэффективным препаратом при назначении в микродозах освобождает овец от нематод легких, желудочно-кишечного тракта и других органов, личинок оводов, чесоточных клещей и вшей. Однозначно, что спектр действия ганамектина шире по сравнению с левамизолом, который является традиционно надежным средством при нематодозах многих видов животных.

Альбендазол – надежно освобождая овец от нематод легких и желудочно-кишечного тракта и в определенной степени от цестод и трематод одновременно гарантирует предупреждение экономических потерь, но главным его достоинством является доступность по ценам для разных категорий потребителей. Учитывая определенное нежелательное свойство препарата (тератогенность) его лучше рекомендовать молодняку.

Комплексность программы обеспечивается широтой спектра действия используемых препаратов. Таких как роленол с ганамектином или роленол с альбендазолом, которые при их использовании гарантируют защиту от всех экономически значимых паразитарных болезней овец.

Своевременная и точная диагностика является той основой, на которой зиждется эффективная система терапии и профилактики паразитарных болезней животных. Основными методами диагностики в ветеринарной паразитологии являются лабораторные методы исследований, многие из которых предполагают обнаружение и дифференциацию возбудителя болезни, изучение его свойств и чувствительности к тем или иным препаратам.

Существуют прижизненные и посмертные методы диагностики паразитозов.

При различных паразитарных болезнях применяют разные методы диагностики, основанные на современных научных достижениях и накопленном опыте практических специалистов. Определение возбудителя может проводиться или прямым путем (при осмотре животных, путем микроскопирования мазков крови, просмотра под микроскопом проб фекалий, соскобов с кожи и т. д.), или косвенным путем (при аллергической диагностике с известным антигеном и др.). При всех известных способах диагностики паразитарных болезней ставится совершенно определенная цель — установить возбудителя и определить степень пораженности им животного.

В настоящее время при постановке диагноза на паразитозы важным является выяснить не только экстенс-, но и интенсинвазированность животных паразитами. Не менее важным является также определение состава паразитоценоза, в том числе гельминтов, клещей, насекомых, простейших и других организмов.

Известно, что человек, животные и окружающая их среда экологически взаимосвязаны. Поэтому происходит циркуляция возбудителей паразитарных болезней в природе и обществе. Вот почему важным является изучение зараженности паразитами человека и животных (особенно зоонозами), распространения возбудителей этих болезней в окружающей среде.

В условиях индустриализации и урбанизации нашей планеты важно изучить закономерности распространения паразитозов, выяснить пути сохранения организмов в постоянно меняющихся условиях среды.

Все это определяет методологические подходы к диагностике паразитарных болезней, в связи с чем, в последнее время все больше внимания уделяется применению современных методов и средств диагностики: электронной микроскопии, внедрению иммуноферментных методов исследований, использованию радиодиагностических наборов и др.

ДИАГНОСТИКА ПРОТОЗООЗОВ ЖИВОТНЫХ

Перед обследованием животных с целью обнаружения в их организме патогенных простейших необходимо провести работы по подготовке материалов.

Для этой цели готовят предметные и покровные стекла. Лучше использовать новые, не бывшие в употреблении, которые тщательно моют в теплой воде с мылом. После этого их промывают чистой водой, насухо вытирают и помещают в банку с притертой пробкой, в которую перед этим наливают абсолютный спирт или смесь равных объемов спирта и эфира (смесь Никифорова). Перед употреблением стекла насухо вытирают чистой салфеткой.

В полевых условиях для обезжиривания предметных стекол применяют следующий способ. Сначала их протирают чистой салфеткой и после этого хорошо покрывают хозяйственным мылом. Затем стекла повторно протирают сухой чистой салфеткой или полотенцем до полного удаления мыла.

Взятие крови у животных. Пробы крови у животных берут в тех случаях, когда необходимо заразить ею подопытных животных, для серологического исследования или для приготовления препаратов.

Для биопробы или серологических исследований кровь у крупного рогатого скота, лошадей и мелких жвачных берут из яремной вены, у птиц — из подкрыльцовой вены. Для обнаружения простейших кровь у млекопитающих берут из сосудов кончика уха, у птиц — из гребня или подкрыльцовой вены.

Приготовление мазков крови и пунктата органов. На чистое предметное стекло наносят первую каплю крови, взятой у животного (в ней находится больше паразитов) и специально отшлифованным стеклом делают мазок. Во избежание загрязнения пылевыми частицами воздуха предметное стекло поворачивают сразу же мазком книзу. Через 10—15 с инъекционной иглой или карандашом ставят на предметном стекле номер или кличку животного и дату приготовления препарата. После этого мазок просушивают 10—12 мин.

Если препараты готовятся в зимнее время, предметные стекла перед нанесением на них капли крови следует подогревать до температуры 20—25 °С.

Для приготовления препарата толстой капли кровь наносят на предметное стекло, размазывают круговым движением толстым круглым слоем и помещают в термостат на 5—10 мин для высыхания. После этого на препарат наносят несколько капель дистиллированной воды (для гемолиза эритроцитов), осторожно сливают ее после того как препарат станет прозрачным. Препарат подсушивают и красят. Для фиксации мазков крови применяют различные химические вещества, среди которых — метиловый спирт, этиловый спирт, денатурированный спирт, реже применяют смесь Никифорова и др.

Для этой же цели можно применять и жидкость Завесина и Белокура (1950). Для ее получения необходимо на физиологическом растворе (рН 6,8—7,0) приготовить 4%-ный раствор чистой карболовой кислоты. Готовый раствор фильтруют и хранят в темном месте в течение 10—15 дней в банке из темного стекла с притертой пробкой. Длительность фиксации мазков крови — 5с. Мазок вынимают из фиксирующей жидкости пинцетом, ставят вертикально на полоску фильтровальной бумаги на 8—10 мин для сушки и потом окрашивают.

Окраска простейших. Осуществляется различными методами, однако наиболее приемлемыми являются следующие:

Окраска мазков крови и пунктатов из органов по Романовскому-Гимза. Поступающие в ветеринарные лаборатории основные растворы краски Романовского-Гимза не всегда бывают одинаковыми по своим красящим свойствам. Поэтому необходимо предварительно подбирать наилучшие сочетания количества вещества и сроков окрашивания при определенном объеме и рН воды.

Обычно для окрашивания препаратов основной раствор краски разбавляют из расчета 1 капля на 1 мл воды. Но иногда на 1 мл воды приходится расходовать 2—3 капли краски, но не более, так как в более концентрированных растворах она выпадает в осадок. Рабочий раствор готовится перед употреблением. Для получения хорошего качества рабочего раствора краски маточный раствор необходимо разводить дистиллированной водой (рН 7,0-7,2). В крайнем случае можно использовать прокипяченную профильтрованную проточную воду указанной реакции. Для разведения краски необходимо пользоваться одной и той же чистой посудой из стекла нейтральной реакции. При приготовлении рабочего раствора в сосуд с водой необходимо вносить по каплям требуемое количество краски и постоянно слегка помешивать, так как большое количество маточного раствора и грубое встряхивание могут привести к выпадению осадка. Маточный раствор краски хранят в темном сухом месте с постоянной температурой (20—22 °С). Если красящая способность раствора снизилась, ее необходимо подогреть в водяной бане до 60 °С в течение 15 мин.

Для окрашивания препаратов их помещают на дно чашки Петри мазком вниз на тонкие плоские стекла, чтобы расстояние между дном чашки и предметным стеклом составляло 0,3—0,5 см. После этого под предметные стекла осторожно подслаивают свежеприготовленную краску. Продолжительность окраски может быть от 15—20 мин до часа, но в среднем 30—40 мин. Свежие препараты окрашиваются быстрее и лучше. Нефиксированные мазки крови можно сохранять не более 1—2 недель, так как через месяц они теряют способность окрашиваться. Фиксированные препараты (мазки крови, пунктаты органов и т. д.) можно сохранять до окраски 1—2 мес. Перед применением краску нужно подогреть в термостате до 37 °С. После окраски мазки крови промывают дистиллированной водой и ставят в вертикальном положении на полоски фильтровальной бумаги. Хорошо промытое предметное стекло с мазком крови не должно оставлять на фильтровальной бумаге следов краски.

При хорошей окраске препараты имеют розово-фиолетовый цвет, эритроциты в тонких мазках крови окрашиваются в красный или розовый цвет, протоплазма паразитов и лейкоциты — в синий, ядра простейших и зернистость эозинофилов — в красный, а ядра лейкоцитов — в фиолетовый цвет. В перекрашенных мазках крови эритроциты имеют синий цвет и в них трудно различать паразитов.

Если мазки крови перекрашены, их погружают на 1—2 с в 80°-ный этиловый спирт, слегка подкисленный уксусной кислотой, или в подкисленную дистиллированную воду (на 100 мл спирта или воды добавляют 2 капли ледяной уксусной кислоты). После того как предметные стекла с мазками вынут из подкисленной воды или спирта, их немедленно промывают дистиллированной водой, высушивают и микроскопируют или оставляют на хранение.

Ускоренная окраска мазков крови по Романовскому-Гимза. Нефиксированный мазок помещают в чашку Петри и подслаивают смесь из неразведенной краски Романовского-Гимза и ацетона в равных количествах. Через минуту в чашку Петри в расчете на каждый миллилитр смеси краски и ацетона добавляют 10 мл дистиллированной воды и смешивают их легким покачиванием чашки. Через 10 мин мазок промывают водой, сушат и микроскопируют.

Окраска мазков крови по Филипсону. Одну часть рабочего раствора краски Романовского-Гимза смешивают с тремя частями этилового спирта и 1 мл приготовленной смеси наносят на нефиксированный мазок крови. Через 1—1,5 мин к краске добавляют 1 мл дистиллированной воды, перемешивают и оставляют на 30 мин для окрашивания. После этого краску смывают водой, мазок просушивают и микроскопируют.

Окраска мазков крови по Мансону. Берут 5 г буры и 2 г метиленового синего и растворяют их в дистиллированной воде (80 °С), выдерживают 2 ч в кипящей водяной бане, охлаждают и фильтруют. После этого для созревания помещают в термостат при температуре 37 °С. Для приготовления рабочего раствора берут каплю краски на 3—4 мл воды. Окраску мазков крови проводят в течение 1 мин. Затем препарат высушивают и микроскопируют. Окрашенный препарат имеет матово-зеленый цвет, эритроциты окрашиваются в светло- или сине-зеленый цвет, ядра лейкоцитов — в темно-синий, протоплазма — в светло-зеленый цвет. Паразиты имеют темно-синее ядро и светло-синюю протоплазму.

Окраска мазков крови по Ш. Д. Мошковскому. Готовят основной раствор метиленовой сини: на 100 мл дистиллированной воды берут 1 г метиленовой сини и 2,5 г буры. Раствор кипятят, охлаждают и фильтруют. Фиксированный мазок крови помещают на 10—20 с в разбавленный дистиллированной водой (1 : 10) основной раствор метиленовой сини. После этого мазок промывают водой, затем погружают на 5 с в 8—10%-ный раствор танина, повторно промывают, подсушивают и микроскопируют.

Окраска мазков крови по Нохту. Готовят растворы: азур II разводят дистиллированной водой в соотношении 1 :1000, аналогично готовят раствор эозина ВА. Краски хранят в склянках из оранжевого стекла в темном сухом месте. Перед окраской готовят рабочие растворы. Для этого в 4 мл дистиллированной воды (рН 7,0) разводят 2 мл 0,1 %-ного раствора эозина и к 4 мл воды добавляют 2 мл 0,1 %-ного раствора азура. Краски смешивают. Мазки крови помещают в чашку Петри, подслаивают краску и выдерживают 30—40 мин. После этого мазки подсушивают и микроскопируют.

Окраска мазков крови по Шуренковой и Межанской. Вначале готовят раствор А. Для этого берут 1 г метиленового синего и растворяют в 75 мл кипяченой воды; 1,5 г марганцово-кислого калия также растворяют в 75 мл кипяченой воды. Оба раствора сливают в колбу (вследствие этого образуется осадок), помещают ее в водяную баню и выдерживают при 100°С 40 мин, считая с начала кипения воды. После этого дают раствору остынуть и фильтруют.

Затем готовят раствор Б. Для этого берут 1 часть раствора А и добавляют 2 части подкисленной кипяченой воды (ее готовят путем добавления на 200 мл дистиллированной воды 15 капель разведенной соляной кислоты). При этом получают раствор № 1. После растворения в 200 мл кипяченой воды 0,2 г эозина водорастворимого получают раствор № 2.

При скоростном способе окрашивания фиксированный мазок погружают на 15—20 с в раствор № 2, прополаскивают водой и на 45 с погружают в раствор № 1, повторно промывают водой, подсушивают мазок на фильтровальной бумаге и микроскопируют.

Для массовой окраски мазков применяют длительный способ. Фиксированный мазок помещают на 5—10 мин в краску Б, разведенную 1 : 10 дистиллированной водой. После этого мазки промывают водой и заливают на 15— 20 мин краской А, также разведенной 1 : 10 водой. Мазки повторно промывают водой, подсушивают и микроскопируют. Обычно хорошо окрашенный мазок имеет сиреневый цвет. Ядра лейкоцитов окрашиваются в фиолетовый цвет, протоплазма простейших — в голубой, а ядро — в вишнево-красный цвет. Если мазки перекрашены эозином и имеют ярко-красную окраску, их на несколько секунд погружают в раствор № 1, слишком синие мазки погружают на несколько секунд в раствор № 2.

Окраска трихомонад: а) метод Романовского. Мазки фиксируют метиловым спиртом в течение 10 мин. После этого их окрашивают 45 мин краской Романовского-Гимза, разведенной 1: 15 нейтральной или слабощелочной дистиллированной водой; б) метод Шуренковой и Межанской. Мазки фиксируют в течение 10 мин метиловым спиртом. После этого их окрашивают 2 мин в растворе № 2, а затем в течение 1 мин — в растворе А; в) метод Милорадовича. Вначале готовят раствор № 1. Для этого 1 г основного фуксина смешивают с 10 мл 95°-ного этилового спирта и ставят в термостат при температуре 37 °С на 48 ч. После растворения фуксина к нему добавляют 100 мл 5%-ного раствора карболовой кислоты, смешивают и фильтруют. Полученный раствор разводят 1 : 50 дистиллированной водой. Перед употреблением на каждый миллилитр рабочего раствора добавляют по капле насыщенного раствора танина.

Раствор № 2 получают путем смешивания равных объемов 1%-ного раствора ауранция и 0,5%-ного раствора эозина.

Оба раствора готовят на 2%-ной карболовой кислоте. После фиксации и ополаскивания мазка на него наносят раствор № 1. Через минуту его сливают и сразу же наносят раствор № 2. Через 20 с препарат прополаскивают водой, просушивают и микроскопируют.

Окраска толстых капель крови: а) метод Шуренковой и Межанской. При скоростном способе окраски препарат в течение 15—20 с несколько раз погружают в раствор А. После того как капля крови на предметном стекле окрасится из зеленого в прозрачно-голубой цвет, препарат промывают водой, погружают в раствор № 2 и сразу же ополаскивают, высушивают и микроскопируют.

Если проводят массовую окраску, тогда применяют длительный способ: на 10-15 мин заливают разведенной (1:10) водой краской А. Затем ее сливают, препарат промывают водой и покрывают на 1-2 мин краской № 2, также разведенной (1:10) водой. После этого препарат промывают водой, просушивают и микроскопируют;

б) метод Иоффе. Готовят краску: берут 4 мл 1%-ного раствора метиленовой сини, 1 мл 1%-ного раствора фуксина на 50%-ном этиловом спирте, сюда же добавляют 4 мл 1 %-ной уксусной кислоты и 40 мл дистиллированной воды.

На нефиксированный препарат наносят краску. Через 15 мин ее осторожно смывают водой, препарат подсушивают и микроскопируют. При этом методе окраски эритроциты растворяются.

Методы исследования патогенных простейших. Методы исследования простейших, изучение их морфологии и биологии, а также диагностика вызываемых ими болезней животных предполагают использование микроскопических, серологических, аллергических, культуральных и других исследований в ветеринарной протозоологии. В связи с тем, что все указанные методы исследований имеют свои достоинства и недостатки, только проведение комплексных исследований дает наиболее высокую эффективность при постановке диагноза на данное заболевание или следует провести дифференциальную диагностику.

Для эффективной диагностики эймериозов необходимо правильно отобрать материал для исследований. Так как для эймерий характерным является видовая специфичность возбудителя и они имеют свои определенные места обитания в организме, важным является исследование определенных органов при постановке диагноза на эймериоз.

Для обнаружения ооцист эймерий исследуют фекалии животных, для выявления неполовозрелых форм шизогонии и гаметогонии исследуют кусочки пораженных органов.

Прижизненная диагностика эймериозов. Прижизненная диагностика предполагает обнаружение в фекалиях больных животных ооцист эймерий. Их обнаруживают путем исследования фекалий животных методом нативного мазка или флотационными методами.

Метод нативного мазка состоит в том, что на чистое предметное стекло помещают около 0,5 г фекалий и тщательно размешивают стеклянной палочкой с небольшим количеством смеси воды и глицерина в равных частях. После этого крупные частицы фекалий снимают пинцетом или препаровальной иглой, а оставшуюся массу покрывают стеклом и микроскопируют.

Флотационные методы являются более эффективными, чем метод нативного мазка. Для диагностики эймериозов применяются методы Г. А. Котельникова и В. М. Хренова (1974) с использованием растворов аммиачной или натриевой селитры, методы Фюллеборна, Дарлинга и др.

Культивирование эймерий проводится с целью изучения спорогонии у них. Для этого берут пробу фекалий, помещают в чашки Петри и смешивают их с мелкоистолоченным древесным углем и с 5%-ным раствором двухромово-кислого калия с целью предохранения фекалий от плесени. Чашки Петри с фекалиями помещают в теплое место и периодически перемешивают для лучшей аэрации. При необходимости пробы фекалий микроскопируют для определения сроков развития эймерий.

Посмертная диагностика эймериозов. Для исследования берут содержимое кишечника, соскоб слизистой оболочки кишки в местах с наибольшим поражением, кусочки пораженных паренхиматозных органов. Из отобранного материала готовят препараты (раздавленные капли, нативные мазки) для исследования живых эймерий, а также мазки или кляч-препараты для окраски паразитов.

Для обнаружения живых эймерий на различных стадиях берут кусочек содержимого из эймериозного узелка, помещают на предметное стекло в каплю физиологического раствора в смеси с белком куриного яйца. Содержимое узелка препаровальными иглами расчленяют на мелкие части, покрывают покровным стеклом и микроскопируют. Мерозоиты и шизонты хорошо заметны в затемненном поле зрения. При этом учитывают, что внедрившиеся в эпителиальную клетку спорозоиты имеют округлую форму с ядром в центре, а более зрелые макрогаметы – зернистость, они овальной формы и покрыты однослойной оболочкой , на одном из полюсов которой находится микропиле (табл.3-7).

Таблица 3. Эймерии крупного рогатого скота (по И. И. Вершинину, 1982)

А.А. Лысенко, профессор кафедры эпизоотологии КГАУ, к.в.н.
В.А. Христич, студент 5 курса факультета ветеринарной медицины КГАУ

Рыбоводство - одна из перспективных отраслей сельскохозяйственного производства, базирующаяся на выращивании в естественных и искусственных водоемах различной товарной рыбы: карпа, белого и пестрого толстолобиков, белого амура и других .

Краснодарский край расположен в VI географической зоне, самой благоприятной для прудового рыбоводства. В крае выращивается более 20% всей прудовой рыбы, производимой в России.

Современные формы ведения прудового рыбоводства предусматривают уплотненные посадки рыб в пруды, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней.

По данным Государственного Управления ветеринарии наибольший удельный вес продолжают занимать инвазионные заболевания рыб, распространенность которых составляет 66% от общего числа заразных болезней.

К сожалению, неблагополучным регионом по инвазионным заболеваниям рыб по-прежнему среди ряда других является Краснодарский край.

В рыбоводных хозяйствах зоны Северного Кавказа часто отмечаются вспышки паразитарных заболеваний, которые являются существенным фактором, снижающим продуктивность рыбоводных хозяйств.

Наиболее опасными паразитозами для рыб прудовых хозяйств Краснодарского края являются: ихтиофтириоз, миксоболез и ботриоцефалез. Остановимся подробнее на характеристике этих заболеваний, их эпизоотологических особенностях, методах профилактики и ликвидации.

Ихтиофтириоз в России до 1945 г. не вызывал губительных эпизоотий, хотя и встречался в разных водоемах. В Краснодарском крае регистрируется с 50-х годов ХХ века.

Рис.1. Инфузория Ichthyophthirius multifiliis.

В настоящее время эта круглореснитчатая инфузория встречается во всех водоемах европейской и азиатской частей России, где обитает его хозяин-рыба. К заболеванию вос­приимчивы все виды пресноводных рыб разных возрастов. Наи­больший ущерб ихтиофтириус наносит прудовым хозяйствам. В естественных водоемах эпизоотии ихтиоф­тириоза возникают редко, но почти все виды пресноводных рыб могут быть носителями возбудителя болезни и тем самым поддер­живать естественный резервуар инвазии в природе.

Серьезную опасность заболевание представляет для аквариумных рыб. Наиболее остро с высоким процентом летальности (до 30%), болезнь протекает у молоди. Эпизоотии ихтиоф­тириоза наблюдаются во все сезоны года, но чаще весной и летом при температуре воды 16-26°С и высокой плотности посадки рыбы в прудах.

Основным источником инвазии в природе служат больные рыбы и паразитоносители. Перезимовывают ихтиофтириусы в организме рыбы и, возможно, часть инцистированных паразитов на дне водо­емов.

После гибели больной рыбы ихтиофтириусы независимо от ста­дии развития в течение 3-4 ч выходят в воду. При этом мелкие трофонты погибают, не инвазируя новых хозяев, а крупные через 3-6 ч инцистируются и делятся.

На распространение и возникновение ихтиофтириоза из внеш­них факторов наибольшее значение имеет температура воды, а также отсутствие проточности в прудах. Эпизоотия ихтиофти­риоза за короткое время (14-21 день) вызывает массовую гибель молоди карпа и других видов рыб. В нерестовых прудах личинки карпа на третий и четвертый день после выхода из икры инвазируются молодыми ихтиофтириусами. Личинки карпа в возрас­те 3-7 дней погибают при паразитировании на них 3-5, а 12-14 дневные мальки - 10-14 ихтиофтириусов. Очень опасны весенние вспышки ихтиофтириоза в нерестовых хозяйствах.

Особенно опасно первичное заражение рыб, приводящее к мас­совому развитию ихтиофтириусов. При повторных инвазиях зара­жение бывает слабее, что связано с образованием постинвазионно­го иммунитета.

Их­тиофтириусы весьма устойчивы к холоду и большинство их не ут­рачивает способности к размножению при перенесении в благо­приятные температурные условия даже после 6-месячного нахож­дения при температуре 1-2°С.

Массовую гибель зимую­щей молоди от ихтиофтириоза отмечали при температуре воды около 4°С и высокой плотности посадки.

Ихтиофтириоз среди производителей возникает также в период их выдерживания в небольших прудах, бассейнах или лотках с це­лью получения икры для заводского метода инкубации. Если не проводят дезинвазию бассейнов, лотков и просушку их в инкуба­ционных цехах, то при содержании в них личинок рыб происходит заболевание их ихтиофтириозом. В организме рыбы минимальные клинические отклонения отмечаются при заражении ихтиофтириусами при интенсивности 1,7 экз./г массы хозяина.

Из сорных рыб основными резервуарами возбудителя ихтиоф­тириоза в условиях Краснодарского края являются плотва, красноперка, окунь, обитающие в источниках водоснабжения.

Распространению ихтиофтириоза в рыбоводных хозяйствах и рыбзаводах способствуют также бесконтрольные перевозки рыб из неблагополучных хозяйств в благополучные, нарушение карантин­ных мероприятий и недостаточная культура рыбоводства. Большую опасность представляют перевозки рыб из разных природно-климатических зон.

Ведущие клинические признаки ихтиофтириоза: беспокойство рыб, подход к водоподаче, образование характерного "маннообразного" налета на поверхности тела рыб. Окончательный диагноз на ихтиофтириоз ставится на основании исследования соскоба с поверхности рыбы и обнаружения инфузорий при малом увеличении микроскопа (х8).

Для лечения зараженных рыб используются различные окислители отечественного производства – метиленовая синь, малахитовый зеленый, бриллиантовый зеленый, фиолетовый К, раствор марганцовокислого калия и импортные препараты – Blitz-Icht, Faunamor. При обработке в водоеме создают концентрацию препарата 0.1-0.2 мг/м3 , а при обработке рыбы в процессе транспортировки в живорыбных машинах – 0.1-0.2 мг/л воды.

Ведущими профилактическими мероприятиями в рыбоводных хозяйствах являются раздельновозрастное выращивание рыб, заводской способ получения личинки, летование водоемов не реже 1 раза в 5-6 лет, дезинфекция водоемов свежегашеной известью из расчета 100-150 кг/га, контроль за гидрохимическими показателями воды, высокая санитарная культура рыбоводства.

Миксоболез толстолобиков – широко распространенное заболевание растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края, вызываемое специфическими паразитами рыб – миксоспоридиями. Наибольшее патогенное воздействие миксоспоридии в условиях Краснодарского края оказывают на сеголетков и годовиков пестрых толстолобиков.

Миксоболюсы, паразитируя на жабрах, вызывают нарушения жаберного дыхания, анемию, снижение массы рыб. Летальность достигает 20%. Заболевание в прудовых хозяйствах регистрируется с высокой интенсивностью в летнее время. Однако полного освобождения толстолобиков от данной инвазии в течение года не происходит. В мальковых прудах заражение происходит в 5-7-дневном возрасте.

Окончательный диагноз на миксоболез толстолобиков ставится при обнаружении большого количества цист паразита на жабрах.

В связи с тем, что растительноядные не используют искусственные корма, проведение лечебных мероприятий представляет определенные трудности. Ведущими мероприятиями при оздоровлении рыбоводных хозяйств от миксоболеза являются такие биологические приемы, как получение гибрида белого и пестрого толстолобиков, разреженные посадки рыбы, внесение свежегашеной извести из расчета 100-150 кг/га водной площади по ложу водоема, летование прудов, соблюдение правил карантинирования рыбы, недопущение бесконтрольных перевозок.

Рис.2. Зрелая циста Мyxobolus pavlovskii на жаберном лепестке сеголетка пестрого толстолобика (увел. х20)

Рис. 3 Цисты Мyxobolus drjagini в области головы сеголетка белого толстолобика.

Ботриоцефалез - инвазионная болезнь рыб, вызываемая ленточными гельминтами рода Bothriocephalus, паразитирующими в кишечнике. Ботриоцефалез рыб распространен в прудовых и садковых хозяйствах, а также в естественных водоемах.

Ботриоцефалюсы обнаружены у 26 видов рыб семейства карповых и некоторых хищных рыб. У прудовых рыб чаще паразитирует В. opsariichthydis. Длина гельминта достигает 25 см, ширина - 0,3-0,5 см.

Цикл развития В. opsariichthydis протекает при участии промежуточных хозяев - веслоногих рачков-циклопов. Вместе с экскрементами рыб яйца гельминта попадают на дно водоема. Оптимальной температурой для развития яиц является 26-30°С. Летом в кишечнике рыбы гельминт живет около 2 месяцев. Ботриоцефалюсы, попавшие в кишечник рыбы с последней осенней популяцией зараженных циклопов, живут 8-10 месяцев.

Рис.4. Возбудитель ботриоцефалеза карпов

Ботриоцефалюсами заражаются в первую очередь карпы, сазаны и белые амуры. Наиболее восприимчивы к инвазии мальки и сеголетки. Рыбы старших возрастных групп являются в основном носителями возбудителя.

Источником инвазии служат инвазированные рыбы разного возраста и зараженные циклопы. В прудовых хозяйствах заражение мальков происходит при использовании в пищу зараженных циклопов. В условиях Краснодарского края пик экстенсивности и интенсивности инвазии приходится на июнь-август. Экстенсивность инвазии у сеголетков растет быстрее, чем интенсивность, которая увеличивается с ростом рыбы. Экстенсивность инвазии достигает 80-100% при интенсивности от нескольких экземпляров до сотен гельминтов на рыбу. Большая плотность популяции ботриоцефалюсов в кишечнике рыбы тормозит рост и развитие как хозяина, так и гельминта. Осенью, когда подросшая молодь питается в основном комбикормом и малощетинковыми червями, а в выростных прудах становится меньше инвазированных рачков, зараженность рыб ботриоцефалюсами снижается.

Диагноз на ботриоцефалез ставится при обнаружении цестод в кишечнике рыб. У инвазированных рыб наблюдается воспаление слизистой оболочки кишечника, отставание в росте, снижение упитанности и массы. Возможна закупорка кишечника при инвазии свыше 12 экз. гельминтов.

В качестве основного препарата для дегельминтизации рыб используют циприноцестин-2. Этот лечебно-профилактический гранулированный комбикорм применяют для борьбы с цестодозами прудовых карповых рыб. Диаметр гранул 3,2-4,5 мм, длина гранул не более 1,5 диаметра. В одной тонне циприноцестина-2 содержится 20 кг микросала. Действующим началом микросала является микронизированный фенасал. Суточная доза циприноцестина-2 соответствует суточной норме кормления рыбы гранулированными комбикормами для прудовых карповых рыб, выпускаемыми отечественной промышленностью. Лечебное кормление проводят в течение одного дня без предварительной голодной диеты. Профилактическую дегельминтизацию осуществляют при температуре воды не ниже 15°С. Первое лечебное кормление в прудовых хозяйствах Краснодарского края против ботриоцефалеза рекомендуем проводить в начале июня, при необходимости обработку повторяют через 20 дней. Если температура воды в августе не снижается ниже 21-23°С, то возможно проведение третьего кормления циприноцестином в первой декаде августа.

Из биологических методов рекомендуем внесение в водоемы маточной культуры ветвистоусых рачков – дафний и моин из расчета 400-450г/га в мальковые пруды. Это позволяет снизить заболеваемость сеголетков и годовиков рыб на 3-5%.

Выполнение всего комплекса рыбоводно-мелиоративных и ветеринарно-санитарных мероприятий при выращивании рыбы способствует профилактике паразитарных заболеваний рыб.