Определитель гельминтов и яиц

1 (4). Яйцо бочкообразной формы с толстой оболочкой, на полюсах пробковидные образования. Внутри — мелкозернистое содержимое.

2 (3). Яйцосимметричное (50—54X22—23 мкм).

тым рисунком нз MHOMiCCTBa тонких выпуклых ребрышек (62—77X X33—37 мкм).

4 (1). Яйцо овальное или почти круглое, без пробковидных образований

5 (25). Яйцо не имеет крышечки на одном полюсе.

6 (14). Яйцо симметричное.

7 (15). Яйцо незрелое, содержит 1 или больше бластомеров эмбриона.

8 (11). Оболочка толстая, многослойная, бугристая.

9 (10). Яйцо содержит 1 бластомер. Очень редко яйцо не имеет бугристой

оболочки (50—70x40—50 мкм).

Ascaris lumbricoides, оплодотворенное яйцо

10 (9). Наружная оболочка менее бугристая и более тонкая, яйцо обычно

удлиненное (50—100X40—50 мкм). Яйцо заполнено крупными полигональными желточными клетками.

Ascaris lumbricoides, неоплодотворенное яйцо

11 (8). Оболочка тонкая, прозрачная.

12 (13). Яйцо овальное, содержит различное число бластомеров эмбриона,

56—60X34—40 мкм — Ancylostoma duodenale 64—76X38—40 мкм—Necator americanus

13 (12). Яйцо несколько удлиненной формы с одним слегка заостренным и

и другим более тупым полюсом. B яйцах содержится от 8 до 30 бластомеров эмбриона (70—80X40—43 мкм).

14 (6). Яйцо асимметричное. Одна сторона выпуклая, другая уплощена.

Оболочка бесцветная, прозрачная. B яйце зародыш на разных стадиях развития, вплоть до личинки (50—60x20—30 мкм).

15 (7). Яйцо зрелое, содержит развитую личинку: онкосферу с 6 крючьями или мирацидий.

16. (21). Яйцо почти шаровидное, содержит онкосферу с 6 крючьями,

17. Яйцо имеет толстую радиально-исчерченную оболочку (28—44x28— 38 мкм).

Taenia solium, Taeniarhynchus saginatus

18. Яйцо более крупное, в оболочке едва заметна поперечная исчер- ченность. Размеры яйца — 60—80x72—86 мкм, онкосферы—18X X36 мкм.

19. Яйцо имеет толстую прозрачную, бесцветную оболочку с филамен- тами (45x37 мкм).

20. Яйцо похоже на предыдущее, но не имеет филаментов (35x40 мкм). Яйца собраны по 8—15 в овальные капсулы размером 0,2x0,13 мм.

21 (16). Яйцо овальное, с шипами на прозрачной оболочке, содержит зрелых мирацидиев.

22. Яйцо несколько удлиненное, оканчивается на одном полюсе заострением в виде шипа (120—160X50—70 мкм).

23. Яйцо несколько удлиненное. Ha боковой поверхности оболочки ближе к одному полюсу расположен крупный, заостренный к полюсу, шип. Размер 130—180x60—80 мкм.

24. Яйцо овальное. Ha боковой поверхности яйца ближе к одному полюсу имеется маленький загнутый к полюсу шип. Размер 70—100X X50—65 мкм.

25 (5). Яйцо имеет крышечку на одном полюсе.

26 (35). Яйцо незрелое, заполнено круглыми желточными клетками.

27 (34). Яйцо с тонкой гладкой прозрачной оболочкой.

28. Яйцоовальное.размер 137—162X87—112 мкм.

29. Яйцо овальное, размер 125—150x62—81 мкм.

30. Яйцо овальное, иногда почти шаровидной формы, с резко суживающимися полюсами (130—140X80—95 мкм).

31. Яйцо овальное, размер 70—83X50—54 мкм.

32. Яйцо овальное, размер 50—67X38—48 мкм

33. Крышечка на более широком уплощенном полюсе, несколько вдвинута внутрь яйца. Другой полюс яйца более заострен (80—118X X48—60 мкм).

34 (27). Оболочка яйца с поверхности шероховата, особенно у полюсов.

Яйцо сходно с яйцом D. Iatum (52—82x34—56 мкм).

Nanophyetus salmincola schikhobalowi

35 (26). Яйцо зрелое, содержит развитый мирацидий.

36. Яйцо ассиметричное, имеет толстую оболочку, с широкой слегка уплощенной крышечкой на суженном полюсе яйца. Внутри яйца, кроме мирацидия, имеется 2 желточные клетки (38—45x25—30 мкм).

37. Яйцо симметричное: разница в радиусе полюсов незначительна. Крышечка несколько уплощена и слабо различима (26—28x15—17л*я^«).

38. Яйцо слегка асимметрично с невысокой слабо различимой крышечкой (23—34хЮ—19 мкм).

39. Яйцо грушевидной формы, иногда асимметричное, с морщинистой оболочкой. Разница в радиусе полюсов яйца значительна. Оболочка перед крышечкой образует хорошо выраженный валик. Противоположный полюс яйца шире (27—35x12—19 мкм).

Возбудитель гемонхоза (Haemonchus contortus) овец может встречаться повсеместно.

Для его развития в отличие от других трихостронгилид требуется большая сумма плюсовых температур. Поэтому случаи клинически выраженного заболевания животных наблюдаются почти исключительно в южной полосе европейской части СССР, Казахстане, Среднеазиатских республиках, в южных районах Урала и Сибири.

Личинки паразита, не достигшие инвазионной стадии, обладают малой устойчивостью к влиянию внешних факторов. Погибают они при высыхании, неоднократном замораживании и оттаивании. Температура свыше 37° С также для них губительна. Ниже 5,5° С яйца не развиваются и через несколько дней погибают. Наиболее благоприятная температура для развития плюс 25—30° С. При 26° С они достигают инвазионной стадии через 3,5 — 4 сут, при 17° С — 6—8 сут. Если сумма плюсовых температур будет уменьшаться, то срок развития паразита до инвазионной стадии удлинится. Эта закономерность характерна для всех гельминтов этой группы.

Именно поэтому сроки развития личинок гельминтов отличаются в разных республиках, регионах и зонах страны. Так, в степной части Украины личинки Н. contortus в зависимости от времени года достигают инвазионной стадии в течение 9—34 дн. (Трач, 1969).

Пороговая среднесуточная температура на поверхности почвы для развития личинок гельминтов в условиях Таджикской ССР равняется 4° С при относительной влажности не менее 50%. При. температуре на поверхности почвы выше 30° С неинвазионные личинки паразита погибают. Если среднесуточная температура воздуха 4—5° С, то личинки достигают инвазионной стадии через 18—26 сут, 6,4— 7,4° С—18 сут, 8,3—14,2° С—9—12 сут, 15,1 — 16,7° С—7—8 сут, 17,2—21° С—6 сут. Оптимальная температура для развития инвазионных личинок гемонхов 16—17° С на поверхности почвы и относительная влажность 70%. В этих условиях или близких к ним такие личинки на пастбищах выживают 4—5 мес. Инвазионные личинки погибают при повышении среднесуточной температуры на поверхности почвы до 38—40° С и снижении относительной влажности воздуха до 30% и среднесуточной температуры на поверхности почвы до 13° С (Пустовой, 1970).

По данным В. Н. Трача (1972), личинки третьей стадии гемонхов выживали в Полесье Украины до 7—187 сут, а в степной ее части — до 28—185 сут. В воде личинки этой стадии могут сохраняться до 252 сут (Доскалов, 1964).

Трихостронгилиды из рода Ostertagia паразитируют у жвачных животных и вызывают у них остертагиоз. Паразиты встречаются повсеместно, но главным образом вместе с другими трихостронгилидами. Личинки этого возбудителя хорошо переносят низкие температуры. Замедляется их развитие при 0° С. По данным А. С. Бессонова (1957), личинки остертагий телят достигают инвазионной стадии при 10° С через 31 день, при 15—20° С—7—16 дн., при 25° С часть созревает уже через 6 дн., при 30° С—5 дн.

В пастбищных условиях Украины (Трач, 1969) в зависимости от климатических условий и времени года личинки остертагий овец развиваются до инвазионной стадии от 7—9 до 123—126 дн. Из яиц, попавших на пастбище осенью, инвазионные личинки могут развиваться только весной следующего года.

Согласно литературным данным, на пастбищах личинки третьей стадии остертагии могут выживать в фекалиях овец от 41 до 345 дн., в фекалиях крупного рогатого скота — от 71 до 393 дн.; в Полесье Украины— 17—368 сут, в степи — 35—367 дн. Особи, развившиеся до середины мая, выживают до начала июня — второй декады октября, а достигшие третьей стадии после мая перезимовывают и погибают с марта до конца июля следующего года.

В Амурской области инвазионные личинки остертагий выживают до декабря. Согласно литературным данным, личинки третьей стадии остертагии хорошо перезимовывают (Некипелова, 1959; Савинкова, 1966; Рузимурадов, 1967; Островский, 1967).

Гельминты рода Trichostrongylus у крупного и мелкого рогатого скота, лошадей, свиней и других животных могут вызывать трихостронгилез. У травоядных животных паразитируют более 10 различных видов этого возбудителя, но чаще Т. axei и Т. colubriformis, у свиней — Т. suis.

В Таджикской ССР (Пустовой, 1970) во время пастбищного периода яйца или личинки Т. colubriformis могут развиваться при среднемесячной температуре на поверхности почвы от 3° С и выше и относительной влажности воздуха 65—70%. Личинки погибают при i редких температурах на поверхности почвы выше 36° С и относительной влажности воздуха ниже 30%. До инвазионной стадии при (редней температуре воздуха 4 е * С они развиваются 28—30 сут, около 5° С—20—25, около 6—7° С — 16—20, при 7—10° С — 12—18, 14—15° С—7—9, 17—19° С—6—8, 19—21° С— и при 23—24° С—5 сут. В опытах А. X. Алтаева (1953, 1961) три- хостронгилиды переносили подсыхание до 9 мес и оставались жизнеспособными при 4° С в воде до 2 лет. Летом в условиях Ленинградской области личинки сохраняют жизнеспособность до 105 дн. (Новиков, 1959).

Нематоды из рода Cooperia вызывают коопериоз у крупного и мелкого рогатого скота. Возбудители болезни распространены повсеместно. В степной зоне Украины в зависимости от времени года и климатических условий они достигают инвазионной стадии за 126 дн. (15. Н. Трач, 1969). Личинки из яиц С. punctata при температуре —30° С выходят через 16,5 ч (Isensten, 1963). По данным ). А. Ивановой (1969), на пастбищах Курской области во второй половине июля личинки до инвазионной стадии развиваются за 6— 7 дн, в первой половине октября — за 13—17 дн., в первой половине апреля — за 17 дн. Яйца в стадии развития и вылупившиеся личинки, не достигшие инвазионной стадии, за зиму погибают. Из инвазионных личинок 50% благополучно перезимовывают. Личинки третьей стадии С. punctata более 3 мес сохраняют жизнеспособность при высушивании (5 С) на стеклах (Kutzer, 1976).

Кооперии хорошо переносят длительное высушивание, при неоднократном оттаивании и замораживании сохраняют жизнеспособность до 6 мес. Личинки различных кооперий сохраняются на пастбищах Амурской области до 6—10 мес (Захрялов, 1959). I. Ross (1963) выявлял инвазионные личинки на пастбищах в течение 2 лет после прекращения выпаса зараженных гельминтами животных. В степной части Украины личинки третьей стадии кооперии сохраняют инвазионность от 71 до 393 дн.

Грихостронгилиды из рода Nematodirus поражают жвачных и других животных. Во внешней среде личинки нематодир вылупляются из яиц уже инвазионными, особенно стойки они к высушиванию. И фекалиях овец достигают инвазионной стадии за 42—212 дн., а в фекалиях крупного рогатого скота — 33—197 дн.

По данным И. Ф. Пустового (1970), для развития личинок N. oiratianus до инвазионной стадии необходимы температура 30° С и… относительная влажность 43%. Среднесуточная температура на поверхности почвы 3° С и относительная влажность воздуха 35% — минимальные пороговые параметры для развития яиц нематодир, а максимальная пороговая температура — 35° С (средняя за период развития).

При средних температурах на поверхности почвы выше 35° С и ниже минус 13° С и относительной влажности воздуха менее 30% яйца нематодир погибают. Возбудитель развивается до инвазионной стадии за 53—58 сут при средней температуре воздуха 21,5° С, за 40—48 сут — при 6—8° С, за 29—40 сут — при 8—11° С, за 20—27 сут — при 12—14° С, за 13—17 сут — при 15—18° С, за 10—12 сут — при 20—21° С.

Из строигилят инвазионные личинки нематодир самые жизнеспособные. Так, в опытах В. Н. Трача (1969) личинки нематодир овец выживали в Полесье Украины до 116—420 сут, а в степной зоне — до 169—693 сут. Личинки, вылупившиеся из яиц и оказавшиеся во внешней среде с января до апреля, выживали до середины ноября. Некоторые личинки, появившиеся в другое время года, перезимовывали одну или две зимы и обнаруживались до апреля — сентября или до апреля — середины августа.

Инвазионные личинки нематодир могут переносить высушивание в течение месяца. В воде (34—35° С) живут более 2 мес (Рузимурадов, 1956). При температуре на поверхности почвы от минус 14 до 28° С, относительной влажности воздуха от 35 до 74% инвазионные личинки выживают на пастбище 12—13,5 мес (Пустовой, 1970).

Из сем. Strongylidae большое значение имеет род Chabertia, гельминты которого вызывают хабертиоз овец. Заболевание распространено повсеместно. В зонах развитого овцеводства инвазия может протекать с ярко выраженными клиническими признаками. Личинки обладают большой устойчивостью к высушиванию, низким температурам. До инвазионной стадии они развиваются при средней температуре на поверхности почвы не ниже 7° С и относительной влажности воздуха 30%. В зависимости от температуры воздуха они достигают инвазионной стадии за 6—36 сут: при 7,2—7,7° С—30—36 сут, 8,7—10° С—26—30 сут, 13,9—14 С—13—18 сут, 16,8—18,9 С— 8—12 сут, 18,8—19,1° С—7—8 сут, при 19,8—20° С—за 6—7 сут.

В лабораторных условиях инвазионные личинки не погибают после 53-суточного высыхания и 210-дневного замораживания в холодильнике при температуре 10—12° С. Личинки, созревшие в мае, сохраняли жизнеспособность до 9 мес (Толстое, 1963). На пастбищах Полесья Украины (Трач, 1959) и Красноярского края (Поляков, 1962) в летний период инвазионные личинки выживают до 6 мес. Киргизской ССР — до 10—12 мес (Шкодин, 1950).

При наиболее благоприятных условиях (температура на поверхности почвы 3—16° С, относительная влажность воздуха 74%) инвазионные личинки хабертии выживают 4 мес. В условиях умеренного климата на протяжении всего выпасного периода (апрель—октябрь) яйца и личинки созревают до инвазионной стадии. К осени их количество увеличивается, некоторые перезимовывают, т. е. животные могут заражаться в период пастьбы, а интенсивнее — ближе к осени (Пустовой, 1970).

Bunostomum trigonocephalum и В. phlebotomum, относящиеся к сем. Ancylostomatidae, вызывают соответственно буностомоз у овец и крупного рогатого скота. Заболевание регистрируют повсеместно с различной интенсивностью и экстенсивностью инвазии в зависимости от природно-климатических условий. По данным Н. В. Демидовой (1960), при температуре воздуха ниже 3° С яйца и личинки на пастбище не развиваются, но и не теряют длительное время жизнеспособность. В Таджикской ССР за 12—30 сут паразит развивается до инвазионной стадии при температуре воздуха от 3 до 10° С, за 8—11 сут — от 11 до 16° С и за 7 сут от 19 до 21° С (Пустовой, 1963).

Температура выше 35° С вызывает гибель яиц и неинвазионных личинок. Отмечается, что в Московской области срок развития личинок может увеличиться до 9—14 дн., а в апреле — мае — до 56 дн., с сентября развитие их прекращается.

При замораживании яйца буностом погибают через 3,5—4,5, а неинвазионные личинки — через 1,5—3 сут. По сравнению с другими инвазионными личинками стронгилят они менее устойчивы — погибают уже после 10—15-суточного замораживания (Сарымсаков, 1958). В воде при 27°С личинки буностом сохраняют жизнеспособность 16 дн., при 15—18°С — 48 дн., т. е. чем ниже температура среды, тем дольше они живут. Наиболее благоприятные условия для выживания инвазионных личинок буностом — температура на поверхности почвы 2—10°С и относительная влажность 70—76%. В таких условиях они живут 2,5—3 мес. Средние температуры на поверхности почвы 36 и минус 11 °С, относительная влажность воздуха 43—45% являются для них пороговой, т. е. яйца, неинвазионные и инвазионные личинки за зиму погибают. Личинки способны развиваться при сравнительно низкой температуре (свыше 3 °С), что позволяет им быстро достигать инвазионной стадии. В зонах с жарким и сухим климатом животные заражаются весной и осенью. Возможно инвазирование (в помещениях) через кожу даже зимой (Пустовой, 1970).

В Приморском крае личинки буностом выживают в мае 25—30 дн., в июне — 22—28, в июле — 10—20, в августе — 6—10, в сентябре — 8—20, октябре — 9—27 дн. Яйца на пастбищах с ноября до марта погибают, а в марте и апреле остаются жизнеспособными и начинают развиваться в мае (Опарин, 1959).

Установлено, что в условиях равнинной местности Северного Кавказа в силу климатических условий (сухой воздух, высокая летняя температура, солнечная радиация, частые ветры) большая часть личинок буностом в фекалиях погибает. При благоприятных условиях в июне они сохраняются 12 дн., в июле — 7 дн., в августе — 5 дн. (Зуев, 1968). В степной части Украины в зависимости от времени года личинки остаются жизнеспособными в фекалиях овец от 9 до 49 дн., крупного рогатого скота — 8—18 дн. (Трач, 1969).

Редкая встречаемость и слабая инвазия Oesophagostomum на большой территории европейской части СССР обусловлены отсутствием достаточной суммы температур в летний период. В южных зонах отмечается очаговость в распространении эзофагостом — их обнаруживают лишь на песчаных пастбищах, заселенных жуками-капрофагами. По данным П. Г. Опарина (1958, 1959), инвазионные личинки эзофагостом на пастбище остаются жизнеспособными в течение 13 мес. В равнинной местности Северного Кавказа летом личинки погибают на поверхности почвы через 10—20 дн., осенью — 30—40 дн. В фекалиях овец, зарытых в почву в мае—июне, они выживают 31—58 дн., зарытых в июле — 18—20 дн., в августе — 40—65 дн., но не перезимовывают (Зуев, 1968).

Инвазионные личинки стронгилят способны мигрировать при определенных условиях по горизонтали и вертикали (в почву и по стеблям трав).

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Грызуны – самая многочисленная группа наземных позвоночных животных. Они заняли свою экологическую нишу, поселившись рядом с человеком. Несмотря на свои малые размеры иблагодаря высокой плодовитости биомасса грызунов в биоценозах, как синантропных, так и ксенантропных, очень велика. По расчетам М.Г. Дворникова биомасса рыжей полёвки составляет 26–70 кг/м², медведя 8 кг/м², волка 0,1 кг/м² [2].

Сведения о гельминтах грызунов недостаточны. Эта группа паразитов заслуживает особого внимания. Грызуны, занимая близкие и одинаковые биотопы с другими животными и человеком, резервируют и передают возбудителей ряда общих гельминтозов. Поселяясь в жилых помещениях человека и загрязняя своими выделениями предметы обихода и продукты питания, грызуны передают ряд гельминтов человеку, поэтому они участвуют в зоонозах. Одними из таких гельминтов являются различные виды сифаций. Человек может заразиться при проглатывании яиц гельминта с загрязненной пищей, через грязные руки.

Сифации грызунов внешне, по строению и по образу жизни похожи на человеческую острицу – Enterobius vermicularis (Linnaeus, 1758; Leach, 1853), вызывающую заболевание энтеробиоз. Это заболевание относится к числу самых распространённых инвазионных болезней населения земного шара. Заражённость острицами населения в любых обитаемых зонах бывает выше 30 %. Нередко она превышает 50 %. Детские коллективы почти поголовно страдают энтеробиозом. Между тем эта инвазия далеко не безобидна: непрерывный перианальный зуд, расчёсы, неврастенические симптомы лишают инвазированных нормального труда и отдыха, нарушают сон. Острицы могут быть причинами аппендицита, эндометритов и других тяжёлых воспалительных заболеваний. В течение многих десятилетий это заболевание не имеет даже тенденции к снижению [8].

Помимо нарушения функции желудочно-кишечного тракта, острицы способны вызывать воспаления органов мочеполовой системы: чаще у девочек, вследствие проникновения паразита в половые пути и присоединения вторичной инфекции. Заболевание энтеробиозом у детей может привести к отставанию в психофизическом развитии, стать причиной нервных расстройств.

По оценкам Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) более 4,5 млрд человек в мире заражены гельминтами, причем эти цифры включают в себя не только население развивающихся стран, но и благополучные страны европейского региона. По данным ВОЗ в 2006 году по сравнению с 2005 годом заболеваемость энтеробиозом возросла на 7,6 %, частота заболеваемости аскаридозом – в 5,6 раза. В России ежегодно регистрируется до 1,5 млн случаев этих заболеваний. Общее количество больных гельминтозами достигает почти 20 млн человек, 70 % из них – дети [1].

Цель исследования – изучить видовой состав сифаций грызунов и выявить виды грызунов, зараженных сифациями в синантропных биоценозах на территории Вятско-Камского междуречья.

Материалы и методы исследования

Объектом исследования явились группировки грызунов в городе Кирове и его окрестностях и других синантропных очагах Вятско-Камского междуречья. Исследования проводили в 2007–2012 гг. Было подвергнуто биологическому анализу и полному гельминтологическому вскрытию по методике А.К. Скрябина [9] 146 тушек грызунов: 30 домовых мышей (Mus muskulus) и 7 лабораторных мышей; 7 серых крыс (Rattus norvegicus) и 1 лабораторная крыса; 30 рыжих полевок (Clethrionomys glareolus); 4 красных полевки (Clethrionomys rutilus); 25 обыкновенных полевок (Microtus arvalis); 2 водяные крысы (Arvicola terrestris); 8 лесных мышей (Apodemus sylvaticus); 3 полевые мыши (Apodemus agrarius); 4 белки (Sciurus vulgaris); 25 ондатр (Ondatra zibeticus) .

Всех грызунов исследовали на трихинеллез методом трихинеллоскопии при помощи компрессория. Гельминтов выбирали, проводили количественный учёт, фиксировали: нематод – в жидкости Барбогала; трематод и цестод в 70 % этаноле. Рассчитывали экстенсивность и интенсивность инвазии. Определение гельминтов проводили с помощью определителей [5, 6]. Все цифровые материалы, полученные нами, были статистически обработаны [7].

Результаты исследований и их обсуждение

Наши исследования показали, что в синантропных биоценозах доминирующими видами грызунов являются: мышь домовая, серая крыса, полевка обыкновенная, полевка рыжая. Территория Кировской области является северной границей распространения обыкновенной полевки. В городе Кирове и его окрестностях это самый обычный вид [3]. Рыжую полевку отлавливали в деревенских домах, жилых строениях, расположенных недалеко от леса. В садах, на огородах часто можно встретить такие виды грызунов, как водяная полевка, лесная и полевая мыши. Ондатра заселила водоемы, находящиеся в черте городов и в зеленой зоне, а в парках обычна белка.

Изучив гельминтофауну грызунов, мы зарегистрировали у них 5 видов сифаций. Определение сифаций осложнено тем, что очень часто не удается выявить самца (по ним легче определить вид), так как после оплодотворения они погибают. Поэтому приходится вести определение по самкам, что затрудняет правильное диагностирование обнаруженных видов гельминтов. В связи с этим многие исследователи считали Syphacia obvelata облигатным паразитом грызунов самых различных видов и групп. S. оbvelata зарегистрирована у человека [1]. Л.Д. Шарпило (1973, 1975) и иностранные ученые разработали определение данного рода нематод по самкам. Причем Л.Д. Шарпило (1973) выявила четкую приуроченность отдельных видов сифаций к определенным видам хозяев или группе родственных форм, что подтверждается и нашими исследованиями [10, 11].

Сифациозы выявлены нами у многих видов грызунов, исключая дикую серую крысу, водяную полевку, полевую мышь, белку, ондатру. У обыкновенной полевки (6 из 25) нами обнаружены Syphacia nigeriana с интенсивностью инвазии (ИИ) 12 ± 8,1 экз. Рыжая полевка (6 из 30) заражена Syphacia petrusewiczi – ИИ 57,2 ± 21,1 экз. Лесные мыши (3 из 8) заражены третьим видом сифаций – Syphacia frederici – ИИ 51,0 ± 45,0 экз. (таблица). У одной домовой мыши из 30 мы зарегистрировали Syphacia obvelata.

У диких серых крыс сифаций мы не обнаружили, но у лабораторной они присутствовали – Syphacia muris с ИИ-34 экз.

У трех из семи лабораторных мышей выявлен другой вид нематод – Aspiculuris tetraptera с очень высокой ИИ – 457 ± 278,7 экз. Aspiculuris tetraptera – широко распространенный паразит грызунов, в Японии обнаружен у человека [4].

Видовой состав нематод грызунов в синантропных очагах Вятско-Камского междуречья

Введение. Птицеводство - это интенсивная, динамично развивающаяся часть аграрного сектора, обеспечивающая население высокоэнергетическими продуктами, содержащими белки, жиры, углеводы и незаменимые аминокислоты. На сегодняшний день для птицеводства актуальной остается задача увеличения количества мяса птицы и яйценосных видов и снижения себестоимости продукции [2].

В XX веке птицеводческая отрасль, как и весь агропромышленный комплекс страны, оказалась в крайне сложной ситуации, что привело к значительному сокращению объемов производства. Так, производство яиц в России в 2000 году сократилось на 34% по сравнению с 1990 годом, а мяса птицы - на 57,8%. С 2006 по 2010 год птицеводство в России привлекло более 200 млрд рублей инвестиций. Значительно улучшены качественные показатели птицеводческой продуктивности на базе развития инноваций. За период с 2010 по 2013 годы производство яиц увеличилось на 2,1 млрд. штук, или на 9,8%, мяса - на 200 тыс. тонн, или 36,8% [4].

В последнее десятилетие на Кубани интенсивно развивается промышленное птицеводство и крестьянско-фермерские хозяйства, которые содержат много различных пород кур. На количество поголовья негативно влияют эндопаразиты и эктопаразиты. Помимо многих бактериальных и вирусных заболеваний, желудочно-кишечные гельминты являются одной из основных угроз для птицы. Тяжелая инвазия гельминтами приводит к большим экономическим потерям: замедление роста, снижение яйценоскости, диарею, непроходимость кишечника, снижение гемоглобина и высокую смертность птицы [1, 11, 13, 18].

Эктопаразиты также играют важную роль в передаче цестодных инвазий среди домашней птицы, особенно Raillietina tetragona. Поскольку у птиц в крестьянских хозяйствах чаще встречаются насекомые, страдают больше куры, которые выращиваются в контролируемой среде [15]. Учитывая важность паразитирования желудочно-кишечных гельминтов у кур, вызывающих сегодня серьезную ветеринарную проблему, настоящее исследование было проведено в Краснодарском крае в крестьянско-фермерских хозяйствах, где были выявлены существующие в регионе виды гельминтов.

Материалы и методы исследований. Исследования проводились в период с апреля по ноябрь 2017 года на 8 породах кур всех возрастов, встречающихся в крестьянских хозяйствах города Краснодара. Отобранные группы птицы использовались в качестве исследуемой популяции на наличие желудочно-кишечных гельминтов.

Результаты исследований и их обсуждение. Результаты исследований показали, что инвазии желудочно-кишечных гельминтов в птицеводстве крестьянских хозяйств Краснодарского края включали плоских червей класса Cestoda (табл. 1), которые представлены 4 видами (Skrjabinia cesticillus, Raillietina echinobothrida, Raillietina penetrans, Raillietina tetragona) и круглых червей класса Nematoda, представленных 6 видами (Acuaria hamulosa, Capillaria bursata, Dispharinx nasuta, Syngamus trachea, Ascaridia galli, Heterakis gallinarum) которые представлены в таблице 2.

Таблица 1. Распространенность желудочно-кишечных гельминтов класса Cestoda у домашних кур

Количество инвазированных особей

ИИтт - ИИтэх (ИИср), экз

Таблица 2. Распространенность желудочно-кишечных гельминтов класса Nematoda у домашних кур

Количество инвазированных особей

ИИтт - ИИтэх (ИИср), экз

Из 114 обследованных кур у 63 было обнаружено наличие одного или нескольких гельминтов, с ЭИ - 55,3% при ИИ ср 2-27,2 экз.

Из 114 цыплят 53 (46,5%) оказались заражены одной или несколькими желудочно-кишечными нематодами (41 (36%) моноинвазии с нематодами + 12 (10,5%) микстинвазии цестоды и нематоды) и 22 (19,3%) были заражены одним или более видом кишечных цестод (10 (8,8%) моноинвазии с цестодами + 12 (10,5%) микстинвазии нематоды и цестоды). Желудочно-кишечные трематоды не были обнаружены.

Гельминты, обнаруженные в кишечнике кур, включали в себя четыре вида цестод и шесть видов нематод. Самыми распространенными среди обнаруженных гельминтов были Heterakis gallinarum (21,93%) при максимальной интенсивности инвазии (148 экз), далее - Ascaridia galli (16,67%) с максимальной интенсивностью (81 экз), Raillietina tetragona (8,77%), Raillietina echinobothrida и Raillietina penetrans (ЭИ - 7,02%), Dispharinx nasuta и Syngamus trachea (4,38%), Acuaria hamulosa, Capillaria bursata (3,51%). Цестоды Skrjabinia cesticillus были выявлены только у одной птицы с низкой ЭИ - 0,88%. Наибольшая ИИ наблюдалась у нематоды Capillaria bursata (41 экз).

Результаты настоящего исследования выявили распространенность нематод и цестод у кур в крестьянских хозяйствах Краснодарского края. Общая распространенность гельминтов у кур в данном исследовании совпадает с данными, ранее опубликованными

Nghonjuyi и др. в Камеруне [16], и превышает распространенность по данным Baboolal и др. в Тринидаде [9], которая составляла 10,5% инвазии у цыплят-бройлеров кишечными гельминтами. В Италии зарегистрировано 99,3% кур, инвазированных желудочно кишечными гельминтами [20]. Эти различия в распространенности могут быть связаны с вариациями типа носителя (порода), так как хорошо известно, что различные породы кур имеют разные уровни восприимчивости к инвазионным агентам и иммуно-физиологическим реакциям [14]. Другим возможным фактором, который может объяснить различия в распространенности, является возможность наличия подходящих промежуточных хозяев гельминтов.

Среди инвазированных желудочно-кишечными гельминтами кур заражение нематодами выявлено у 36%, тогда как заражение цестодами - у 8,8%, причем у 10,5% птиц в кишечнике присутствуют как нематоды, так и цестоды. Эти результаты согласуются с результатами, представленными в Индии Solanki и др. [19]. Однако другой автор сообщил о наиболее высокой распространенности цестод, а затем нематод и трематод у птиц [18]. Но по результатам настоящего исследования ни одна из птиц не была инвазирована трематодами. По мнению некоторых авторов, отсутствие трематод в отобранных образцах может быть связано с отсутствием необходимого промежуточного хозяина (инвазированных улиток) вокруг ферм. Khan и др. [12] отмечали до 100% заражения цестодами во время своего исследования в 18 населенных пуктах Пакистана и объясняли, что это может быть связано с независимой системой кормления без ограничения корма на свободных участках, адаптацией к плохому содержанию, неосведомленностью фермера о правильном использовании антигельминтных средств и большим контактом птиц с яйцами гельминтов или промежуточными хозяевами или с паразитами в инвазионной стадии.

При детальном изучении гельминтов наблюдались 4 вида цес-тод и 6 видов нематод. Первые сведения о гельминтах кур в Краснодарском крае приведены в работе Артюх Е.С. [3], видовой состав которых был представлен 2 видами нематод и 3 видами цестод. Звержановский М.И. [6] в своем исследовании на той же территории Краснодарского края зафиксировал 3 вида цестод, которые включали Raillietina tetragona, Raillietina echinobothrida и Skrjabinia cesticillus и 8 видов нематод Ascaridia galli, Heterakis gallinarum, Syngamus trachea, Syngamus skrjabinomorpha, Dispharinx nasuta, Acuaria hamulosa, Capillaria obsignata, Thominx contorta. В нашем исследовании самую высокую распространенность показала Raillietina tetragona, и этот результат подтверждается данными Fatihu и др., Puttalakshmamma и др. [10, 18], которые показали, что домашние птицы были заражены исключительно Raillietina tetragona. Настоящее исследование также показало, что нематода Heterakis gallinarum встречается у большинства птиц с наибольшей распространенностью. Однако, Baboolal и др., Offiong и др. [9, 17] сообщали, что наиболее распространенным видом была Ascaridia galli, за которой следует Heterakis gallinarum. Они считали, что Ascaridia galli является наиболее распространенным и важным гельминтом птицы. Различия в распространенности гельминтов у домашних кур могут быть обусловлены различным климатом и на личием промежуточного хозяина паразита, а также определенными факторами хозяина, включая иммунный ответ птицы.

Выводы. Результаты проведенного исследования показали, что куры, содержавшиеся в крестьянских хозяйствах Краснодарского края, подвергались заражению несколькими видами гельминтов. По сравнению с другими нематодами и цестодами, Heterakis gallinarum и Raillietina tetragona, соответственно, были более широко распространены. Поэтому акцент следует сделать на борьбе с гельминтами в крестьянско-фермерских хозяйствах путем принятия стандартных методов хозяйствования, правильного и сбалансированного кормления, ограничения контакта птицы с промежуточными хозяевами паразитов и использования надлежащих антигельминтных средств для снижения потерь в мясной и яичной продуктивности.

1. Акбаев М.Ш. Паразитология и инвазионные болезни животных/ Акба-ев М.Ш, Василевич Ф.И, Акбаев Р.М, Водянов А.А, Косминков Н.Е, Пашкин П.И, Ятусевич А.И// 3-е изд. M. Колос. - 2008, 776 с.
2. Арестов О. А. Эктопаразиты курей/ Арестов О. А, Шустрова М. В, Ро-зовенко М. В// Ветеринарный. - 1998. - № 10. - С. 33-35.
3. Артюх Е.С. Материалы по гельминтофауне Краснодарского края/ Е.С. Артюх, Б.Л. Гаркави, И.Д. Игнатов// Труды КСХИ. - Краснодар, 1951. - Вып. 3(31). - С. 227-229.
4. Бобылева Г. А. Российское птицеводство: целевая программа развития до 2015 года / Бобылева Г. А, Радкевич В. С // Птица и продукты птицы. - 2013.- №. 1: С. 4 - 6.
5. Дубинина, М.Н. Паразитологическое исследование птиц.- Л.: Наука, 1971. - 139с.
6. Звержановский М.И. Гельминтофауна кур в хозяйствах Краснодарского края / Звержановский М.И. // Лечение и профилактика болезней в промышленом животноводстве. Труды. КСХИ.- Краснодар, 1987.- Вып.-262(290).- С. 30-32.
7. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования окружающей среды.- М.: Росагропромиздат.- 1991.- 144 с.
8. Рыжиков К.М. Определитель гельминтов куриных птиц / Рыжиков К.М., Черткова А. Н. // - М, 1968.- 258 с.
9. Baboolal V, Suratsingh V, Gyan L, Brown G, Offiah N V, Adesiyun A A, Basu A K The prevalence of intestinal helmiths in broiler chickens in Trinidad. Veterinarski Arhiv. 2012, 82 (6): 591 - 597.
10. Fatihu M, Ogbogu V, Njoku C, Saror D. Comparative studies of gastrointestinal helminths of poultry in Zaria, Nigeria. 1990, 44(2): 175-177.
11. Katoch R, Yadav A, Godara R, Khajuria J, Borkataki S, Sodhi S. Prevalence and impact of gastrointestinal helminthes on body weight gain in backyard chickens in subtropical and humid zone of Jammu India. J. Parasit. Dis. 2012, 36(1): 49-52.
12. Khan A, Bhutto B, Shoaib M, Fahad S, Ahmad A, Khetran I B, Nizamani A R, Zeb A, Rahman M, Khan S. Prevalence of gastro intestinal cestodes in backyard chickens in district Tando Allahyar, Sindh. J. Anim. Health Prod. 2016, 4(1): 26 - 30.
13. Lotyshev I.P. Geography of the Kuban. Encyclopedic dictionary. Moykop: Open Society Poster. 2006, 528p.
14. Mangi M H, Kamboh A A, Rind R, Dewani P, Nizamani Z A, Mangi A R, Nizamani A R, Vistro W A. Seroprevalence of brucellosis in Holstein-Friesian and indigenous cattle breeds of Sindh Province, Pakistan. J. Anim. Health Prod. 2015, 3(4): 82 -87.
15. Mohammed O, Hussein H, Elowni E. The ant Pachycondyla sennaarensis (Mayr) as an intermediate host for the poultry cestode Raillietina tetragona (Molin). Vet. Res. Communications. 1988, 12(4-5): 325-327.
16. Nghonjuyi N W, Kimbi H K, Tiambo C K. Study of gastro-intestinal parasites of scavenging chickens in fako division, southwest Cameroon. J. Adv. Parasitol. 2014, 1(3): 30 - 34.
17. Offiong E E, Obioku O E, Umoh J U, Essien C A, Idiong N B. A. Survey of Gastrointestinal Helminthes of Local Chickens in Abak Local Government Area of Akwa Ibom State. International Journal of Sciences: Basic and Applied Research (IJSBAR). 2013, 9(1): 1 - 4.
18. Puttalakshmamma G.C, Ananda K. J, Prathiush P. R, Mamatha G. S, Suguna Rao. Prevalence of Gastrointestinal parasites of Poultry in and around Banglore. Veterinary World. 2008, 1(7): 201 - 202.
19. Solanki J.B, Kumar N, Varghese A, Thakre B.J, Gopal Puri. Prevalence of Gastro-intestinal Parasitism in Poultry in and Around Navsari Area of South Gujarat. Livestock Research International. 2015, 3(1): 28 - 30.
20. Wuthijaree K, Lambertz C, Gauly M Prevalence of gastrointestinal helminth infections in free-range laying hens under mountain farming production conditions. British Poultry Science. 2017, 26p.

Резюме. В последнее десятилетие на Кубани интенсивно развивается промышленное птицеводство и крестьянско-фермерские хозяйства, которые содержат много различных пород кур. На количество поголовья негативно влияют эндопаразиты и эктопаразиты. Помимо многих бактериальных и вирусных заболеваний, желудочно-кишечные гельминты являются одной из основных угроз для птицы. Тяжелая инвазия гельминтами приводит к большим экономическим потерям: замедление роста, снижение яйценоскости, диарею, непроходимость кишечника, снижение гемоглобина и высокую смертность птицы. Эктопаразиты также играют важную роль в передаче цес-тодных инвазий среди домашней птицы. Учитывая важность паразитирования желудочно-кишечных гельминтов у кур, вызывающих сегодня серьезную ветеринарную проблему, настоящее исследование было проведено в Краснодарском крае в крестьянско-фермерских хозяйствах, где были выявлены существующие в регионе виды гельминтов.Исследованияпроводились авторами в период с апреля по ноябрь 2017 года на 8 породах кур всех возрастов, встречающихся в крестьянско-фермерских хозяйствах города Краснодара. Отобранные группы птицы использовались в качестве исследуемой популяции на наличие желудочно-кишечных гельминтов.Всего в различных хозяйствах края было исследовано 114 особей кур. Исследованиепоказало, что куры крестьянских хозяйств на исследуемой территории былизараже-ны желудочно-кишечными гельминтами с общей экстенсивностьюинвазии 55,3%. Обнаруженные желудочно-кишечные гельминты относилиськ классу Nematoda и Cestoda с экстенсивностью инвазии- 36% и 8,8%, соответственно, а экстенсивность смешанной инвазии составила 10,5%. Проведенное исследование показало,что в крестьянских хозяйствах города Краснодара куры подвергаются высокому риску заражения желудочно-кишечными гельминтами.

Ключевые слова: город Краснодар, крестьянско-фермерские хозяйства, промышленное птицеводство, куры, желудочно-кишечный тракт, гельминты, смешанная инвазия, нематоды, цестоды.