Клинические признаки трематодозы печени

пным боковым шипом.

Шистосома японская (Schistosoma japonicum) локализуется в венах кишечника и брюшной полости, возбудитель к и ш е ч н о-г о, или японского, шистосомоза. Яйца овальной формы, длина их вдвое меньше, чем у предыдущих видов, в ряде случаев виден небольшой тупой боковой шип.

Проникая через стенки кровеносных сосудов, яйца скапливаются в просвете мочевого пузыря или кишечника и выделяются наружу. При попадании их в водоем происходит развитие личинок в моллюсках. Затем личинки покидают промежуточного хозяина и активно проникают через., кожу в тело человека, например, во время купания (рис. 4.14).

Личинки, проникшие в организм человека, мигрируют по лимфатическим и кровеносным сосудам, достигают легких, отсюда попадают в большой круг кровообращения, а затем, в зависимости от вида паразита, оседают в тех или иных органах. Здесь они достигают половой зрелости и начинают выделять яйца. Паразитируют в организме человека несколько десятков лет.

Клиническая картина. Ранняя фаза шистосомоза, обусловленная миграцией личинок в организме, проявляется кашлем, выделением густой мокроты, болями в мышцах и суставах. Увеличиваются печень, селезенка, лимфатические узлы. Эта стадия длится 1—2 нед. В последующем развиваются симптомы, характерные для разных форм шистосомозов: появление крови в моче при мочеполовом шистосомозе, кишечные расстройства, кровь в фекалиях, увеличение печени при кишечном и японском шистосомозах.

Диагноз. Основан на обнаружении яиц в моче при испражнениях (см. 10.10 и 10.14). Наиболее эффективно исследование мочи, выделяемой больным с 10 до 14 ч (период максимального выделения яиц). С целью исследования мочи ее центрифугируют и микроскопируют осадок или фильтруют через мембранные фильтры. При исследовании фекалий метод нативного мазка малоэффективен, рекомендуются метод Като, методы осаждения и метод Ритчи. Материал для исследования следует брать с поверхности фекалий, где яйца обнаруживаются чаще.

Тропические шистосомозы в СССР могут встретиться у лиц, приехавших из стран Африки, Юго-Восточной Азии или Латинской Америки.

Профилактика. Личная — избегать контакта с водой в водоемах, где могут быть церкарии шистосом. Общественная — предохранение водоемов от загрязнения человеческими выделениями.

Вопросы для повторения

1. Перечислите известные вам трематоды, паразитирующие в организме человека.

Задачи и упражнения: 88—106. Глава 5. КЛАСС ЦЕСТОДЫ (CESTODA)

Цестоды имеют плоское лентовидное тело (стробилу), состоящее из члеников (проглоттид). Длина тела и число членников у разных видов значительно варьирует. Головка, или с к о л е к с, вооружена присосками, а у некоторых видов и крючьями (отряд цепней) или присасывательными щелями — ботриями (отряд лентецов). Пищеварительная, кровеносная и дыхательная системы отсутствуют. Все цестоды гермафродиты, большинство из них биогельминты.

В организме человека паразитируют представители нескольких десятков видов цестод. Болезни, вызываемые цестодами, называют цестодозы.

5.1. ШИРОКИЙ ЛЕНТЕЦ

Строение. Широкий лентец (Diphyllobotrium latum) был описан впервые К- Линнеем (1778). Это один из самых крупных паразитов человека, достигающий в длину ao_10jm и более (рис. 5.1).

Головка, или сколекс, размером 3—5 мм, продолговато-овальной формы, сплющена с боков и имеет на узких сторонах две продольные присасывательные щели (ботрии), которыми лентец прикрепляется к стенке кишки.

Тело (стробила) состоит из множества члеников, ширина которых намного больше длины, что обусловило и название паразита. В центре зрелых члеников видно темное пятно в виде розетки — это матка, заполненная яйцами и имеющая выводное отверстие.

Яйца широкого лентеца сравнительно крупные — длиной до 75 мкм, серого или желтоватого цвета, с тонкой гладкой оболочкой, широкоовальной формы (рис. 5.2 на цв. вклейке). На одном из полюсов имеется крышечка, на другом — небольшой бугорок. Внутри яйцо заполнено множеством желточных крупнозернистых клеток. Один лентец выделяет ежедневно нескол.ько .миллионов яиц.

Следует иметь в виду, что яйца встречающегося на Дальнем Востоке'гельминта нанофиета очень похожи на яйца широкого лентеца, что может привести к ошибке в лабораторной практике. При тщательной микроскопии выявляются определенные различия, при

Трематодозы – общее название для ряда болезней животных, вызванных паразитическими червями-сосальщиками класса Trematoda. В длину они могут достигать 15 см, обитают преимущественно в ЖКТ и питаются его содержимым, а ряд паразитов – кровью. Трематоды попадают в организм животных чаще всего через зараженную траву и воду на пастбищах. Взрослые особи и их личинки, в основном, паразитируют в наземных и водных моллюсках, попадающих в пищу овцам, козам, КРС. Трематодозы животных наносят колоссальный урон животноводческим хозяйствам и несут опасность заражения для человека и домашних собак, кошек.

Виды трематодозов животных

Науке известно около 7200 видов трематод, вызывающих опасные заболевания. На территории России наиболее распространены следующие болезни:

фасциолез крупного рогатого скота, овец, коз – инвазия трематод в желчные протоки печени;

дикроцелиоз жвачных – поражению подвергаются печень и желчный пузырь;

парамфистоматозы КРС (реже – других жвачных) – поражению подвергаются преджелудки.

Симптомы

Существуют острая и хроническая формы трематодозов. В острой форме чаще всего болеет мелкий рогатый скот в осенний период.

Общие признаки различных видов острых трематодозов:

расстройства пищеварения в виде поноса или запора, которые могут чередоваться;

нарушения работы сердца и дыхательной системы (тахикардия, одышка);

острая форма гепатита;

анемия и последующий падеж поголовья.

Для хронических трематодозов характерны:

нарушения работы ЖКТ;

значительное уменьшение удоев;

вялость, снижение двигательной активности;

выпадение шерсти, отеки;

печень увеличивается и становится болезненной.

Следует обратить внимание, что при слабой степени заражения симптомы могут быть слабо выражены. В этом случае нужно обращать внимание, прежде всего, на угнетенность и снижение веса животных.

Диагностика трематодозов

Изучение клинических симптомов.

Исследование фекалий животных на предмет наличия яиц паразитов.

Диагностика увеличения печени (особенно при хронической форме заболевания).

Патологоанатомический анализ содержимого ЖКТ при смерти животного

Лечение трематодозов

Компания NITA-FARM разработала ряд инновационных препаратов, обладающих высокой эффективностью при лечении трематодозов.

Риказол. В основе инъекционной формы – рикобендазол. Обладает широким спектром антигельминтного действия. Максимальный эффект – уже через 8 часов. Достаточно одноразового применения. В клинических исследованиях у коз препарат показал 88-96% эффективность при трематодозах.

Клозатрем. В основе инъекционной формы – клозантел, который эффективен при фасциолезе. Воздействует на личинок и зрелых особей. Максимальный эффект – через 10-12 часов. До 10 суток сохраняется в организме в терапевтической концентрации. Для профилактики и лечебных целей применяется однократно.

Альвет-суспензия. В основе пероральной формы препарата – альбендазол. Характеризуется повышенной биодоступностью и широким спектром действия. Выпускается в гранулах со вкусовыми добавками. Применяется однократно для КРС, овец, коз, свиней, птицы.

Профилактика трематодозов

Своевременная смена пастбищ и их мелиорация.

Обработка пастбищ препаратами для борьбы с моллюсками.

Регулярные ветеринарные осмотры поголовья.

Двухразовая (в начале и конца сезона) профилактика гельминтозов одним из препаратов (Риказол, Клозатрем, Альвет-суспензия).

Запрет вывоза навоза от зараженных животных на пастбища, или вывозить его лишь после обезвреживания в биотермических ямах.

Проводение необходимого обследования у всех вновь ввозимых животных, а также выборочно исследование их фекалий на яйца фасциолез.

Гельминтозы Животных

Трематодозы - заболевания, возбудителями которых являются плоские черви, относящиеся к классу трематод - TrematodaТремагоды характеризуются листовидным телом, на котором имеется две присоски. Все трематоды гермафродиты.

Фасциолезы. Возбудители - Fasciola hepatica, F. gigantica. Они характеризуются разветвлением половых желез и кишечника. F. hepatica - листовидная, 20-30 мм длины, распространена повсеместно. F. gigantica - лентовидная, 60-70 мм длины, встречается в южных районах.
Локализуются фасциолы в желчных ходах печени животных. Паразитируют фасциолы и у человека.

Источники и пути заражения. Развиваются фасциолы с помощью промежуточных хозяев - пресноводных моллюсков. Облигат-j ный промежуточный хозяин для F. hepatica - Galba truncatula, для F. gigantica - Radix auricularia. Яйца фасциол с калом животных попадают во внешнюю среду. Из яиц выходит личинка и внедряется в моллюска, где развивается до инвазионной стадии - церкария. Церкарии выходят в воду, прикрепляются к траве и инцистируются. Эта инвазионная стадия (адолескарий) сохраняется во внешней среде 5 месяцев и более. Животные заражаются фасциолами при проглатывании адолескариев вместе с травой или водой. Источник инвазии - зараженные животные. Инвазирование происходит с середины пастбищного сезона, а заболевание начинается в конце указанного сезона и достигает максимального развития в декабре - январе. Живут фасциолы в организме животных до 4-5 лет и более.

Симптомы. Бывает острое и хроническое течение болезни. Острое течение наблюдается осенью и сопровождается признаками острого гепатита, часто заканчивается смертью. Хроническое течение болезни наблюдается обычно зимой.

Наиболее характерные симптомы фасциолеза - истощение, анемия, снижение удоя, расстройство пищеварения, сопровождающееся посменно то запорами, то поносами, нередко атония преджелудков, отечность в области век, подбородка, груди, живота. Заболевание длится месяцами. Смерть наступает от кахексии. При слабой зараженности клинические признаки заболевания не отмечаются, но продуктивность животного резко снижается.

Вскрытие. При остром фасциолезе печень багрово-красного цвета, с гематомами, увеличена в 2-3 раза. В брюшной полости много выпота. Перитонит. Молодые фасциолы обнаруживаются только при просмотре на темном фоне промытого осадка размельченной печени.
При хроническом фасциолезе: расширение и обызвествление желчных ходов (последние выступают на поверхности печени в виде желтых тяжей), гипертрофический цирроз печени у крупного рогатого скота и атрофический - у овец. В желчных протоках грязно-бурая желчь с примесью гноя, крови и фасциол.

Диагноз. Прижизненный диагноз ставят по обнаруживаемым в кале животных яйцам фасциол. Они по размеру и форме похожи на яйца парамфистом, но отличаются от них по цвету. Посмертный диагноз - по наличию в печени фасциол и патологоанатомическим изменениям, соответствующим данному заболеванию.

Лечение. Для дегельминтизации мелких жвачных применяют четыреххлористый углерод в дозе 1-2 мл в желатиновых капсулах, который дают через рот или вводят шприцем в рубец. Перед массовой дегельминтизацией препарат необходимо проверить на небольшой группе животных. Для предупреждения токсикозов овцам дают за две недели додегельминтизации клеверное сено, гороховую солому, мясо-костную муку и другие корма, богатые солями кальция. При осложнениях, возникающих на почве дегельминтизации, вводят внутривенно 10%-ный раствор хлористого кальция по 20 мл 3-4 раза в сутки.
Эффективно п безопасно применять для дегельминтизации четырехлористыи углер ПОДКОЖНО И ДОзе 2- мл на одно животное (по 2 мл на 10 кг веса). Кроме того, овцам дают: гексахлорэтан (фасциолин) внутрь по 0,2-0,4 г на 1 г веса в суспензиях с бентонитом и другими глинами, фреон 112 в рубец, в подогретом до 25-30 й виде по 0,4 мл на 1 кг веса; филиксан - внутрь в виде водной взвеси, в таблетках или с кормом по 0,4 г на 1 кг веса; гексахлорпараксилол внутрь в болюсах, суспензиях и с кормом по 0,4 г на 1 кг веса двукратно с промежутком в 10 дней.
Филиксан и гексахлорпараксилол можно применять вольногрупповым методом, скармливая препараты в тех же терапевтических дозах, что и при индивидуальном введении. При остром течении фасциолеза рекомендуют давать овцам одновременно фасциолин и четыреххлористый углерод в половинных дозах трехкратно, с интервалом в, 1-2 дня. Такое комбинированное применение вышеуказанных препаратов может быть рекомендовано и для профилактической дегельминтизации, но в этом случае нужно применять препараты однократно.
Для крупного рогатого скота применяют гексахлорэтан (фасциолин) внутрь в суспензиях в дозе 0,2-0,4 г на 1 кг веса.Истощенным животным назначают половинные дозы в два приема с интервалом в 2-3 дня. Для предотвращения токсикозов в период лечения исключают концентрированные, легко бродящие корма и силос. При лечении может временно снизиться удой. Кроме фасцнолина, для крупного рогатого скота можно применять: четыреххлористый углерод внутримышечно в дозе 5 мл на 100 кг веса .
Лошадям дают четыреххлористый углерод в дозах 8-15 мл.

Меры борьбы и профилактики. Проводят профилактические дегельминтизации: при стойловом содержании двукратные - первучо в декабре, вторую не ранее второй половины января; при круглогодичном пастоищном содержании трехкра-ШЫб - Первую .-в Яйваре, вторую спустя пять месяцев 110СЛё Первой и третью через 2,5 месяца после второй. Подвергают биотермической стерилизации ИаВоз и термической - пораженные органы С це.гею уничтожения яиц фасциол. Проводят борьбу с моллюсками. Для этого: осушают пастбища, обрабатывают химическим способом места гнездования моллюсков, применяя для этой цели медный купорос в концентрации 1 : 5000, дихлорсалициланилид в разведении 1 : 10 000 000, дитиофос в разведении 1 : 100 000; вносят на пастбища минеральные и органические удобрения; выпасают водоплавающую птицу в местах гнездования моллюсков. Практикуют смену пастбищ через каждые два месяца и не допускают пастьбы животных па низменных заболоченных пастбищах, а также поение их из стоячих водоемов. Сено с инвазированных пастбищ хорошо просушивают и скармливают после 6 месяцев хранения. Караптинируют вновь поступающих в хозяйство животных, обследуют их на фасциолез, а при необходимости дегельминтизируют
При наличии соответствующих условий хорошей мерой борьбы с фасциолезом является организация круглогодового стойлового или выгульно-стойлового (беспастбищного) содержания скота.

Дикроцелиоз. Возбудитель - Dicrocoelium lanceatum. Трематода 7 -10 мм длины, ланцетовидной формы с компактными половыми железами, расположенными впереди матки. Локализуется паразит в желчных ходах печени млекопитающих, чаще у жвачных. Распространен повсеместно, больше в южных районах.

Источники и пути заражения. Развиваются дикроцелии с помощью промежуточных хозяев - сухопутных моллюсков и муравьев. Яйца, выделенные с калом животных, проглатываются моллюсками. В моллюске из яиц выходят личинки, превращающиеся через 3-4 месяца в церкариев, которые вместе со слизью моллюска попадают во внешнюю среду, где поедаются муравьями. В организме последних личинки становятся инвазионными через 20-62 дня. Животные заражаются, проглатывая инвазированных муравьев. Весной заражение животных происходит более интенсивно, летом оно слабее и к осени вновь усиливается.
Через 2-2,5 месяца после выгона животных на пастбище, зараженное перезимовавшими в муравьях личинками, в фекалиях животных обнаруживают яйца.

Симптомы. У овец в возрасте до трех лет заболевание чаще протекает бессимптомно. Клинический дикроцелиоз сопровождается прогрессивным исхуданием и снижением продуктивности, нередко кончается летальным исходом.

Вскрытие. Желчные протоки катарально воспалены, цирроз печени (паренхима органа пронизана соединительнотканными тяжами).

Диагноз. Прижизненный диагноз устанавливают по яйцам дикроцелий, обнаруживаемым в фекалиях животных; посмертный диагноз - по наличию возбудителя, которого обнаруживают методом полного гельминтологического вскрытия печени, и патологоанатомическим изменениям в печени.

Лечение. Применяют внутрь в суспензиях гексахлорпараксилол по 0,4 г на 1 кг веса трехкратно (через месяц).

Меры борьбы и профилактики. Улучшают пастбища. Для этого их перепахивают, уничтожают растущие там кустарники, полукустарники, убирают камни. На неблагополучные пастбища рано утром, перед вечером и в первые часы после дождя выпускают кур, которые поедают моллюсков и муравьев. Обрабатывают пастбища после дождей моллюскоцидами (хлористым калием в дозе 25 г на 2 м2 и др.). Обезвреживают муравейники 5%-ной керосиновой эмульсией гексахлорциклогексана (1 л на муравейник) или 2,5%-ной керосиновой эмульсией гексахлоркротилтиоциоката (0,5 л на муравейник).

Парамфистоматоз. Возбудитель - Paramphistomum cervi. Трематода конусовидной формы, 5-12 мм длины, от бледно-розового до красного цвета с присосками на концах тела. Локализуются парамфистомы в рубце жвачных, реже в желудке других млекопитающих, распространены они повсеместно.

Источники и пути заражения. Цикл развития у парамфистом такой же, как у фасциол. Развиваются парамфистомы с помощью промежуточных хозяев - пресноводных моллюсков. Инвазионная личинка, попав в организм животного с водой или травой, прежде чем фиксироваться в рубце, мигрирует. Поэтому молодых гельминтов обнаруживают в сычуге, в тонком отделе кишечника, в желчных протоках, желчном пузыре, в брюшной полости, толстых кишках и даже в почечных лоханках. Заражаются животные на пастбище (во второй половине мая).

Симптомы. Бывает острое и хроническое течение болезни. Острое течение наблюдается у телят в возрасте 1,5 лет. Заболевание сопровождается отсутствием аппетита, слабостью, поносами, которые часто сменяются запорами. Через 3-4 дня от начала инвазии появляются отеки в области подгрудка, межчелюстного пространства, иногда и в области живота, неглубокие язвы на носовом зеркальце, кровоизлияния на видимых слизистых оболочках. Затем понос усиливается, испражнения с примесью слизи и крови. Смерть наступает на 7-10-й день (при сильной инвазии может достигать 100%).
Хроническое течение наблюдается у телят старше 1,5 лет и у взрослых животных. Заболевание чаще протекает бессимптомно. У взрослых больных снижается продуктивность, молодняк отстает в росте, иногда наблюдаются непрекращающиеся поносы, прогрессирующее истощение.

Вскрытие. При остром течении в брюшной и грудной полостях содержится много прозрачной жидкости. Слизистая оболочка сычуга и тонкого отдела кишечника геморрагически воспалена, отечна, усеяна молодыми парамфистомами, которых можно обнаружить в соскобе со слизистой оболочки пораженных органов. При хроническом течении находят взрослых гельминтов в рубце. Выраженных патологоанатомических изменений не бывает.

Диагноз. Прижизненный диагноз ставят по обнаруживаемым в фекалиях яйцам паразита. Их следует дифференцировать от яиц фасциол. Посмертный диагноз - по наличию характерных патологоанатомических изменений в желудочно-кишечном тракте и обнаруженному возбудителю.

Лечение. Применяют гексахлорэтан в дозе 0,2-0,4 а на 1 кг веса животного или гексахлорпараксилол. Методика введения препаратов такая же, как при фасциолезе.
Меры борьбы и профилактики. Такие же, как при фасциолезе.

Трематозами называют глистные инвазии животных и человека, которые вызваны паразитическими червями класса Trematoda.

Паразиты способны локализоваться в печени, кишечнике, желудке, почках, коже, крови, глазах, в других органах и тканях. Трематодозы печени вызваны представителями различных семейств паразитов. Среди наиболее распространенных трематодозов печени – описторхоз и клонорхоз.

Заразиться этими паразитарными болезнями можно при употреблении сырых или плохо обработанных речной рыбы или раков, которые инвазированы трематодами семейства Opisthorchiidae - Opisthorchis felineus, Opisthorchis viverrini и Clonorchis sinensis.

Считается, что этими заболеваниями заражено около 17 млн. человек. Наиболее всего описторхоз распространен на территории России, Украины, Казахстана, в Юго-Восточной Азии. Возбудитель заболевания обнаружен у кошек, собак, лисиц, других животных, а также у моллюсков и рыб семейства карповых во многих странах Европы. Клонорхоз широко распространен в Китае, Японии, Корее, в бассейне Амура и Приморье.

Трематозы печени, описторхоз и клонорхоз, связаны с поражением протоков печени, желчного пузыря и желчных путей, протоков поджелудочной железы, 12-перстной кишки, желудка.

Симптомы трематодозов печени

Симптомы и проявления обоих гельминтозов схожи. Заболевание может протекать в острой и хронической формах. Часто на ранней стадии симптомы заражения отсутствуют или отмечается эозинофилия (повышение числа эозинофилов в крови).

Инкубационный период составляет, в среднем, 21 день. Обычно проявления острой фазы (лихорадка, высокая температура тела, покраснение и першение в горле, насморк или заложенность носа, боли в правом подреберье) наблюдаются у людей, приехавших в очаг распространения паразитов из незараженных районов. Ранняя стадия сопровождается токсико-аалергическим синдромом разной степени проявления. Ко 2-3-й неделе заболевания число эозинофилов достигает максимального значения, иногда на фоне лейкоцитоза и умеренного ускорения СОЭ.

У людей, проживающих в регионах распространения паразитов, описторхоз и клонорхоз обычно имеют первично-хроническое течение.

Хроническая форма связана с жизнедеятельностью червей в желчных протоках печени и поджелудочной железы. Она проявляется болями в эпигастральной области и правом подреберье, снижением аппетита, тошнотой, непереносимостью жирной пищи, нарушением пищеварения, утомляемостью.

При наличии описторхоза очень важно не допустить воспаления печени и поджелудочной железы. Поэтому перед началом выведения паразитов необходима чистка и после завершения лечения опять чистка.

Трематозы печени сопровождаются патологией всех органов дуоденохолепанкреатической зоны (печень с желчными протоками и желчным пузырем, 12-перстная кишка, поджелудочная железа). Основной патологический процесс - хронический пролиферативный холангит и каналикулит поджелудочной железы, который сопровождается фиброзом этих органов.

Иногда болезнь протекает тяжело и сопровождается обструкцией желчных протоков, желтухой, рецидивирующим холангитом, развитием острого панкреатита и желчного перитонита, абсцессов печени.

Кроме того, описторхоз и клонорхоз связаны с опухолями гепато-билиарной системы (с холангиокарциномой).

Диагностика и лечение

Для диагностики изменений органов дуоденохолепанкреатической зоны, произошедших на фоне трематодозов печени, используют клинико-инструментальные методы, предназначенные для обследования пациентов с гастроэнтерологическими заболеваниями. Наиболее распространенные среди них: рентгенологические методы (холецистохолангиография), УЗ-исследование, компьютерная томография.

При диагностике также учитываются место жительства (пребывания) и пищевой рацион.

Лечение заболеваний комплексное и направлено на устранение причин и нормализацию функций пораженных органов. При тяжелом течении острой стадии назначают десенсибилизирующую и дезинтоксикационную терапию. При хронической стадии лечение проводят по принципам лечения пациентов с гастроэнтерологическими заболеваниями и используют желчегонные средства, ферментные препараты, средства влияющие на моторику и тонус ЖКТ; диету.

Полный текст:

1. Брусенцов И.И. Генетическое разнообразие и филогеография Opisthorchis felineus// Паразитология в изменяющемся мире: Сб. тр. Всерос. конф. с междунар. участием. - Новосибирск, 2013. - С. 33.Brusentsov II (2013). Genetic diversity and phylogeography of Opisthorchis felineus [Geneticheskoe raznoobrazie i filogeografiya Opisthorchis felineus]. Parazitologiya v izmenyayushchemsya mire: Sbornik trudov Vserossiyskoy konferentsii s mezhdunarodnym uchastiem, 33.

2. Зуевский В.П., Бычков В.Г., Целищева П.В., Хадиева Е.Д. Описторхоз как промоутер гастроканцерогенеза // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. - 2015. - № 4. - С. 7-10. Zuevskiy VP, Bychkov VG, Tselishcheva PV, Khadieva ED (2015). Opisthorchiasis as a promoter of gastric carcinogenesis [Opistorkhoz kak promouter gastrokantserogeneza]. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni, (4), 7-10.

3. Киян В.С., Серикова Ш.С., Булашев А.К. Использование методов современной биотехнологии в совершенствовании серологической диагностики описторхоза // Сейфуллинские чтения-11: Молодёжь и наука: Матер. Респ. науч.-теор. конф. - Астана, 2015. -Т. І, Ч. 1. - С. 152-155. Kijan VS, Serikova ShS, Bulashev AK (2015). Using the methods of modern biotechnology in improving serum diagnosis of opisthorchiasis [Ispol'zovanie metodov sovremennoy biotekhnologii v sovershenstvovanii serologicheskoy diagnostiki opistorkhoza]. Seyfullinskie chteniya-11 : Molodezh' i nauka: Materialy Respublikanskoy nauchno-teoreticheskoy konferentsii, 1 (1), 152-155.

4. Колокольцев М.М., Казакова А.А., Житницкая Э.А. Описторхоз в Тайшетском районе Иркутской области // Гигиена и здоровье человека. - Иркутск, 1982. - С. 48-49. Kolokoltsev MM, Kazakova AA, Zhitnitskaya EA (1982). Opisthorchiasis in Taishetsky District of Irkutsk Oblast [Opistorkhoz v Tayshetskom rayone Irkutskoy oblasti]. Gigiena i zdorov'e cheloveka, 48-49.

5. Коркин А.Л. Оценка клинико-инструментальных критериев эффективности коррекции холецистолитиаза у пациентов с хроническим описторхозом // Бюллетень сибирской медицины. - 2009. - № 4. - С. 130-134. Korkin AL (2009). Clinical and instruments criteria of the correction effectiveness in patients with chronic opisthorchosis of cholelithiasis [Otsenka kliniko-instrumental’nykh kriteriev effektivnosti korrektsii kholetsistolitiaza u patsientov s khronicheskim opistorkhozom]. Byulleten'sibirskoy meditsiny, (4), 130-134.

6. Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов. Методические указания. МУК 4.2.3145 (утв. Роспотребнадзором 26.11.2013). Laboratory diagnosis of helminthiasis and protozoasis. Guidelines MUK 4.2.3145-13 (2013). [Laboratornaja diagnostika gel’mintozov i protozoozov: Metodicheskie ukazanija Rospotrebnadzora 4.2.3145-13].

7. Львова М.Н., Дужак Т.Г., Центалович Ю.П., Катохин А.В., Мордвинов В.А. Секретом мариты печеночного сосальщика Opisthorchis felineus // Паразитология. - 2014. - Т. 48, № 3. - С. 169-184. Lvova MN, Duzhak TG, Tsentalovich YP, Katokhin AV, Mordvinov VA (2014). Secretome of the adult liver fluke Opisthorchis felineus [Sekretom marity pechenochnogo sosal’shchika Opisthorchis felineus]. Parazitologiya, 48 (3), 169-184.

9. Николаева Н.Н., Байкова О.А., Грищенко Е.Г., Николаева Л.В., Ивина В.В., Петерсон И.В., Жук Е.А. Хронический описторхоз в Красноярском крае: распространенность и диагностические возможности // Сб. науч. тр., посв. 55-летию городской клинической больницы № 20 им. И.С. Берзона. - Красноярск, 2013. - С. 37-38. Nikolaeva NN, Baykova OA, Grishchenko EG, Nikolaeva LV, Ivina VV, Peterson IV, Zhuk EA (2013). Chronic opisthorchiasis in Krasnoyarsk Krai: prevalence and diagnostic capabilities [Khronicheskiy opistorkhoz v Krasnoyarskom krae: rasprostranennost’ i diagnosticheskie vozmozhnosti]. Sbornik nauchnykh trudov, posvyashchen-nykh 55-letiyu gorodskoy klinicheskoy bol'nitsy N20 im. 1.S. Berzona, 37-38.

10. Носова А.А., Белавин П.А., Афонников Д.А. Компьютерный и экспериментальный анализ антигенных свойств вителлина и катепсина F Opisthorchis Felineus // Медицинский академический журнал. - 2012. - Т. 12, № 4. - С. 33-35. Nosova AA, Belavin PA, Afonnikov DA (2012). Computer and experimental analysis of the antigenic p cificities of vitellin and cathepsin F Opisthorchis felineus [Komp’yuternyy i eksperimental’nyy analiz antigennykh svoystv vitellina i katepsina F Opisthorchis felineus]. Meditsinskiy akademicheskiy zhurnal, 12 (4), 33-35.

11. Петрова И.В., Огородова Л.М., Сазонов А.Э., Черевко Н.А., Сахаровская З.В. Метод генетической диагностики описторхоза // Клиническая лабораторная диагностика. - 2009. - № 7. - С. 37-39. Petrova IV, Ogorodova LM, Sazonov AE, Cherevko NA, Saharovskaya ZV (2009). The method of genetic diagnosis of opisthorchiasis [Metod geneticheskoy diagnostiki opistorkhoza]. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika, (7), 37-39.

12. Разумов И.А., Львова М.Н., Пономарева Е.П., Катохин А.В., Петренко В.А., Сазонов А.Э., Огородова Л.М., Новицкий В.В., Сивков А.Ю., Мордвинов В.А. Антигенные свойства рекомбинантного аналога белка легумаин трематоды Opisthorchis felineus, вызывающей описторхоз у человека // Бюллетень сибирской медицины. - 2012. - № 6. - С. 166-172. Razumov IA, Lvova MN, Ponomareva EP, Katokhin AV, Petrenko VA, Sazonov AE, Ogorodova LM, Novitskiy VV, Sivkov AY, Mordvinov VA (2012). The antigenic properties of the recombinant analog of protein legume lectin of the fluke that causes opisthorchiasis in human, Opisthorchis felineus [Antigennye svoystva rekombinantnogo analoga belka legumain trematody Opisthorchis felineus, vyzyvayushchey opistorkhoz u cheloveka]. Byulleten' sibirskoy meditsiny, (6), 166-172.

14. Серологические методы лабораторной диагностики паразитарных заболеваний. Методические указания. МУК 3.2.1173-02 (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 14.11.2002). Serological methods of laboratory diagnosis of parasitic diseases. Guidelines. MUK 3.2.1173-02 (2002) [Serologicheskie metody laboratornoy diagnostiki parazitarnykh zabolevaniy. Metodicheskie ukazaniya. MUK 3.2.1173-02].

15. Хохлова Н.И. О специфичности реакций иммунитета у больных описторхозом // Тезисы докладов 57-й итоговой научной конференции студентов и молодых учёных. - Новосибирск, 1996. - С. 57-58. Khokhlova NI (1996). The specificity of immune reactions in patients with opisthorchiasis [O spetsifichnosti reaktsiy immuniteta u bol’nykh opistorkhozom]. Tezisy dokladov 57-y itogovoy nauchnoy konferentsii studentov i molodykh uchenykh, 57-58.

16. Arimatsu Y, Kaewkes S, Laha T, Sripa B (2015). Specific diagnosis of Opisthorchis viverrini using loopmediated isothermal amplification (LAMP) targeting parasite microsatellites. Acta Trop. 141 (Pt B), 368-371.

17. Armignacco O, Caterini L, Marucci G, Ferri F, Bernardini G (2008). Human illnesses caused by Opisthorchis felineus flukes, Italy. Emerg. Infect. Dis., 14 (12), 19021905.

18. Armignacco O, Ferri F, Gomez-Morales MA, Caterinin L, Pozio E (2013). Cryptic and asymptomatic opisthorchiasis. Am. J. Trop. Med. Hyg., 88 (2), 364-366.

19. Augustijns P, Wuyts B, Hens B, Annaert P, Butler J, Brouwers J (2014). A review of drug solubility in human intestinal fluids: implications for the prediction of oral absorption. Eur. J. Pharm. Sci., (57), 322-332.

20. Ayé Soukhathammavong P, Rajpho V, Phongluxa K, Vonghachack Y, Hattendorf J (2015). Subtle to severe hepatobiliary morbidity in Opisthorchis viverrini endemic settings in southern Laos.Acta Trop., 141 (Pt. B), 303-309.

21. Cai XQ, Yu HQ, Bai JS, Tang JD, Hu XC, Chen DH, Zhang RL (2012). Development of a TaqMan based real-time PCR assay for detection of donorchis sinensis DNA in human stool samples and fishes. Parasitol. Int., 61 (1), 183-186.

22. Carneiro TR, Pinheiro MC, de Oliveira SM, Hanemann AL, Queiroz JA, Bezerra FS (2012). Increased detection of schistosomiasis with Kato-Katz and SWAP-IgG-ELISA in a Northeastern Brazil low-intensity transmission area. Rev. Soc. Bras. Med. Trop., 45 (40), 510-513.

23. Chen JH, Wang H, Chen JX, Bergquist R, Tanner M, Utzinger J, Zhou XN (2012). Frontiers of parasitology research in the People’s Republic of China: infection, diagnosis, protection and surveillance. Parasit. Vectors, (5), 221.

24. Duenngai K, Boonmars T, Sithithaworn J, Sithithaworn P (2013). Diagnosis of early infection and post chemotherapeutic treatment by copro-DNA detection in experimental opisthorchiasis. Parasitol. Res., 112 (1), 271-278.

25. Fuchs A, Leigh M, Kloefer B, Dressman JB (2015). Advances in the design of fasted state simulating intestinal fluids: FaSSIF-V3. Eur. J. Pharm. Biopharm., (94), 229-240.

26. Gômez-Morales MA, Ludovisi A, Amati M, Pozio E (2013). Validation of an excretory/secretory antigen based-ELISA for the diagnosis of Opisthorchis felineus infection in humans from low trematode endemic areas. PLoS One, 8 (5), e62267.

27. Huppertz-Hauss G, Brekke H, Holmberg M, Skudal H (2014). A man in his thirties with icterus and itching. Tidsskr. Nor. Laegeforen., 134 (17), 1665-1668.

28. Jongsuksuntigul P, Imsomboon T (2003). Opisthorchiasis control in Thailand. Acta Trop., 88 (3), 229-232.

29. Ju JW, Joo HN, Lee MR, Cho SH, Cheun HI, Kim JY, Lee YH (2009). Identification of a serodiagnostic antigen, legumain, by immunoproteomic analysis of excretory-secretory products of Clonorchis sinensis adult worms. Proteomics, 9 (11), 3066-3078.

30. Kaewkes S (2003). Taxonomy and biology of liver flukes. Acta Trop., 88 (3), 177-186.

31. Kaewpitoon N, Kaewpitoon SJ, Pengsaa P (2008). Opisthorchis viverrini: the carcinogenic human liver fluke. World J. Gastroenterol., 14 (5), 666-674.

32. Kaewpitoon SJ, Rujirakul R, Tongtawee T, Matrakul L, Panpimanmas S, Wakkuwattapong P, Loyd RA (2016). Detection of the carcinogenic liver fluke Opisthorchis viverrini using a mini Parasep SF faecal parasite concentrator. Asian Pac. J. Сancer Prev., 17 (1), 373-376.

33. Kim YJ, Lee SM, Choi GE, Hwang SH, Kim HH, Lee EY, Chang CL (2010). Performance of an enzyme-linked immunosorbent assay for detection of Clonorchis sinensis infestation in high- and low-risk groups. J. Сlin. Microbiol., 48 (7), 2365-2367.

34. Laha T, Sripa J, Sripa B, Pearson M (2008). Asparaginal endopeptidase from carcinogenetic liver fluke Opisthorchis viverrini and its potential for serodiagnosis. Int. J. Infect. Dis., 12 (6), 49-59.

35. Min DY (1984). Remarks on the diagnosis of donorchissinensis infection. Arzneimittelforschung., 34 (9B), 1153-1156.

36. Miyamoto K, Kirinoki M, Matsuda H, Hayashi N, Chigusa Y (2014). Field survey focused on Opisthorchis viverrini infection in five provinces of Cambodia. Parasitol. Int., 63 (2), 366-373.

37. Nagano I, Pei F, Wu Z, Wu J, Cui H, Boonmars T, Takahashi Y (2004). Molecular expression of a cysteine proteinase of donorchis sinensis and its application to an enzyme-linked immunosorbent assay for immunodiagnosis of clonorchiasis. Сііп. Diagn. Lab. Immunol., 11 (2), 411-416.

38. Oh JH, Kim HG (2010). A case of clonorchiasis presenting as common bile duct mass. Korean J. Gastroenterol., 56 (4), 211-213.

39. Qian MB, Yap P, Yang YC, Liang H, Jiang ZH, Li W, Utzinger J (2013). Accuracy of the Kato-Katz method and formalin-ether concentration technique for the diagnosis of donorchis sinensis, and implication for assessing drug efficacy. Parasit. Vectors., 6 (1), 314.

40. Qiao T, Ma RH, Luo XB, Zheng PM, Luo ZL, Yang LQ (2013). Microscopic examination of gallbladder stones improves rate of detection of Clonorchis sinensis infection. J. Clin. Microbiol., 51 (8), 2551-2555.

41. Sawangsoda P, Sithithaworn J, Tesana S, Pinlaor S, Boonmars T (2012). Diagnostic values of parasite-specific antibody detections in saliva and urine in comparison with serum in opisthorchiasis. Parasitol. Int., 61 (1), 196-202.

42. Sripa B, Brindley PJ, Mulvenna J, Laha T, Smout MJ (2012). The tumorigenic liver fluke Оpisthorchis viverrini - multiple pathways to cancer. Trends Parasitol., 28 (10), 395-407.

43. Sripa J, Brindley PJ, Sripa B, Loukas A, Kaewkes S, Laha T (2012). Evaluation of liver fluke recombinant cathepsin B-1 protease as a serodiagnostic antigen for human opisthorchiasis. Parasitol. Int., 61 (1), 191-195.

44. Sun J, Xu J, Liang P, Mao Q, Huang Y (2011). Molecular identification of Clonorchis sinensis and discrimination with other opisthorchid liver fluke species using multiple Ligation-depended Probe Amplification (MLPA). Parasit. Vectors, (4), 98.

45. Tesana S, Srisawangwong T, Sithithaworn P, Itoh M, Phumchaiyothin R (2007). The ELISA-based detection of аnti-Оpisthorchis viverrini IgG and IgG4 in samples of human urine and serum from an endemic area of north-eastern Thailand. Ann. Trop. Med. Parasitol., 101 (7), 585-591.

46. Thi Phung L, Loukas A, Brindley PJ, Sripa B, Laha T (2014). Retrotransposon OV-RTE-1 from the carcinogenic liver flukes Оpisthorchis viverrini: potential target for DNA-based diagnosis. Infect. Genet. Evol., (21), 443-451.

47. Tselepatiotis E, Mantadakis E, Papoulis S, Vassalou E, Kotsakis P, Samonis G (2003). A case of Оpisthorchis felineus infestation in a pilot from Greece. Infection, 31 (6), 430-432.

48. Watwiengkam N, Sithithaworn J, Duenngai K, Sripa B, Laha T, Johansen MV, Sithithaworn P (2013). Improved performance and quantitative detection of copro-antigens by a monoclonal antibody based ELISA to diagnose human opisthorchiasis. Acta Trop., 128 (3), 659-665.

49. Wongratanacheewin S, Pumidonming W, Sermswan RW, Pipitgool V, Valeewong W (2002). Detection of Оpisthorchis viverrini in human stool specimens by PCR. J. Clin. Microbiol., 40 (10), 3879-3880.

50. Wunderink HF, Rozemeijer W, Wever PC, Verweij JJ, van Lieshout L (2014). Foodborne trematodiasis and Оpisthorchis felineus acquired in Italy. Emerg. Infect. Dis., 20 (1), 154-155.

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.