Коронавирус у телят чем лечить

Коронавирусный энтерит (koronaviridae infection bovis) – остропротекающая болезнь новорожденных телят, характеризующаяся профузным поносом, иногда со слизью и кровью в каловых массах, дегидратацией организма, депрессией и истощением.

Этиология. Возбудитель болезни – сложноорганизованный вирус из семейства Сoronaviridae. Вирион состоит из спиралевидного нуклеокапсида, покрытого внешней липопротеидной оболочкой, на поверхности которой имеется широко расположенные булавовидные выступы длиной 10-23 нм, напоминающие корону.

Эпизоотологические данные. Болезнь регистрируется у телят 7-18-дневного возраста, но чаще всего коронавирусный энтерит возникает у животных 8-14-дневного возраста. К заболеванию более предрасположены телочки (37,9%), чем бычки (23,8%). Порода скота и способ ведения животноводства не оказывают значительного влияния на частоту случаев болезни.

Источником возбудителя инфекции являются больные и переболевшие телята, клинически здоровые взрослые животные-вирусоносители, выделяющие вирус с экскрементами и мочой.

нфицированность коров в некоторых случаях составляет 50-80%. Факторами передачи возбудителя являются молоко, вода, кормушки, предметы ухода, подстилка и другие объекты, инфицированные коронавирусом. Заражение животных происходит чаще алиментарным путем, но возможен и воздушно-капельный. Заболевание регистрируется в любое время года, но чаще — в стойловый период, что связано со снижением резистентности организма телят и значительной инфицированностью помещений вирусом. В отдельных хозяйствах отмечается цикличность эпизоотий в пределах 3-4 лет. Заболеваемость телят коронавирусным энтеритом достигает 100%, а летальность колеблется от 10 до 47%. Довольно часто болезнь протекает в ассоциации с ротавирусной инфекцией и эшерихиозом.

Течение и симптомы. Инкубационный период составляет 18-48 часов. Болезнь протекает остро и подостро. Вначале проявляются признаки угнетения, затем развивается понос, переходящий в профузный. Температура тела, как правило, в пределах нормы. Иногда — ниже нормы. Фекалии жидкой консистенции, желтого или зеленовато-желтого цвета, обычно без дурного запаха, иногда — с примесью свернувшегося молока, слизи и крови. По мере развития болезни отмечают изъязвление слизистой оболочки ротовой полости, что сопровождается выделением пенистой слюны. Больные животные угнетены, живот вздут. Аппетит сохранен, однако телята очень быстро худеют, развивается эксикоз, наступает гибель от обезвоживания. Продолжительность болезни 1-2 недели. Характер течения болезни и ее исход во многом зависят от возраста телят: чем они моложе, тем острее протекает болезнь и быстрее наступает гибель.

У взрослых животных болезнь протекает субклинически. При вскрытии трупов павших телят выявляют кровоизлияние и язвы на слизистой оболочке ротовой полости, пищевода, сычуга. Двенадцатиперстная кишка — в состоянии анемии, заполнена газами, ее стенки истончены, прозрачны с геморрагическими язвами. Слизистая оболочка тощей кишки (а иногда и ободочной) — с точечными кровоизлияниями и небольшими язвами, содержит красно-бурую водянистую жидкость. Кроме того, отмечают гиперплазию мезентериальных лимфатических узлов.

Диагноз на коронавирусный энтерит основан на анализе клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений в совокупности с лабораторными исследованиями.

Для проведения исследований в лабораторию направляют в термосе со льдом пробы фекалий от больных телят в пределах 24-48 часов от проявления диареи и пораженные участки кишечника с содержимым, полученные в течение 2-4 часов с момента гибели животного, а также парные пробы сыворотки крови с интервалом 2-3 недели.

Клинический вируссодержащий материал исследует в реакции гемагглютинации (РГА), торможения гемагглютинации (РТГА), иммунофлуоресценции (РИФ) и иммуноферментном анализе (ИФА), а также применяют иммунную электронную микроскопию. Указанные методы позволяют обнаружить в фекалиях и содержимом кишечника характерные вирионы или специфические антигены коронавирусов. Вирусологические исследования включают выделение вируса в клеточных культурах с последующей идентификацией в реакции нейтрализации (РН), иммунофлуоресценции (РИФ), торможения гемадсорбции (РТГАд), торможения гемагглютинации (РТГА), иммуноферментном анализе (ИФА). Ретроспективная диагностика предусматривает выявление прироста титра специфических антител в парных пробах сыворотки крови с помощью реакции нейтрализации (РН), торможения гемагглютинации (РТГА), иммуноферментного анализа (ИФА).

Дифференциальный диагноз. Коронавирусную инфекцию дифференцируют от вирусной диареи, парво- и ротавирусной инфекции, хламидиоза, колибактериоза.

Лечение. Для лечения используют гипериммунные сыворотки и сыворотки реконвалесцентов, в которых имеются антитела к коронавирусу одновременно с антибактериальными и иммуностимулирующими препаратами, пробиотики. Применяют также симптоматические методы лечения.

Профилактика и меры борьбы. Для специфической профилактики используют живые и инактивированные моно- и ассоциированные вакцины, гипериммунные сыворотки. Для ликвидации заболевания используют общие противоэпизоотические мероприятия – ограничение движения скота, дезинфекция, карантинирование больных животных, соблюдение принципа пусто-занято.

В. А. Мищенко, О.И. Гетманский,

Д. К. Павлов, Т.Б.Жбанова,

А.Н. Пономарев, О.В. Кухаркина,

Ю.А. Костыркин, СВ. Миськевич

Национальный аграрный университет, г. Киев, Украина

Резюме В работе представлены результаты эпизоо-тологического мониторинга диарей новорожденных телят в животноводческих хозяйствах РФ, Украины и Белоруссии, а также экспериментальные данные по приме­нению вакцин против рота- и коронавирусной инфекций на глубокостельных коровах.

В структуре заболеваний телят в ранний постнатальный период превалирующее место занимают нарушения функций пищеварительной системы, клинически проявляющиеся диа­реей, обуславливающей развитие выраженной дегидратации, токсемии, иммунодефицита в, нарушения обмена веществ.

Этиопатогенетически поражения органов пищеварения отличаются значительным полиморфизмом, включающим ши­рокий спектр различных факторов, в том числе генетических, физиологических, санитарно-гигиенических и инфекционных. Массовые нарушения функций пищеварения, клинически проявляющиеся диареями, регистрируются у 70-80% ново­рожденных телят уже к концу первых суток после рождения. Больные телята отказываются от молозива, постоянно лежат, быстро наступает обезвоживание, интоксикация, энофталь--мия, резко понижается тонус.

Гибель новорожденных телят, как правило, наступает на 2-5-й или 7-10-й дни. Обычно погибает от 15 до 55% новорож­денных телят [6,10,11].

Ведущей причиной гастроэнтеритов новорожденных те­лят являются инфекционные агенты, в том числе вирусы, бак­терии, простейшие и грибы, вирулентность которых повышает­ся на фоне различных неблагоприятных условий содержания и кормления. Возбудители инфекционных заболеваний попа­дают в организм обычно в первый день жизни телят [12,15].

Считается, что вирусы являются пусковым механизмом для развития патологии кишечника. При диареях новорожден­ных телят выделяют рота-, корона-, парво-, торо-, калици-, пес-ти-, астро- и реовирусы [3,12,16].

В основном диарея новорожденных телят протекает в виде смешанных инфекций. При смешанных инфекциях труд­но определить роль того или иного инфекционного агента, ко­торый выделяется от больных диарей телят. Факт обнаружения того или иного возбудителя от больных диарей новорожденных телят не служит убедительным доказательством его этиологи­ческой роли в патологии.

Вирусная инфекция начинается с адсорбции возбуди­телей на рецепторных клетках цилиндрического эпителия тонкого отдела кишечника. В процессе репродукции вируса происходит гибель пораженных клеток, их десквамация и на­рушение целостности эпителия кишечника. Цилиндрический эпителий быстро сменяется на дифференцированный куби­ческий и плоский. Это приводит к нарушению всасывающей и секретирующей способности клеток тонкого кишечника и усилению его перистальтики.

Ряд исследователей диареи новорожденных телят относят её к мембранопатологиям. Заболевания животных, которые про­текают с симптомами поражения желудочно-кишечного тракта и токсикоза, сопровождаются активацией процессов перекислого окисления липидов, накоплением в межклеточном пространстве супероксидного иона перекиси водорода и гипероксидного ра­дикала, являющиеся основной причиной повреждения тканей. В организме больного теленка происходят существенные биохи­мические изменения. Интоксикация влечет за собой существен­ные изменения в обмене, которые приводят к иммуносупрессии и антиоксидантному стрессу [1,13].

Все это позволяет рассматривать диарею новорожден­ных телят как комплексную патологию организма, при кото­рой доминируют признаки нарушения функции пищеварения: общей интоксикации, обезвоживания, мембранопатологии и иммуносупрессии.

В последнее время установлено, что при вирусных ин­фекциях происходят аберрации хромосом клеток больного животного [5].

В данном сообщении приведены результаты сравнитель­ных исследований различных способов профилактики диареи ново рожден н ых телят.

Материалы и методы

Изучение эффективности вакцинопрофилактики вирусных диарей новорожденных телят ротавирусной и коронавирусной этиологии проводили в животноводческих хозяйствах различ­ных регионов Российской Федерации, Украины и Белоруссии. В хозяйствах, избранных для испытания препаратов, зарегис­трированы нарушения функции пищеварения новорожденных теляти в результате проведенной индикации, были обнаружены ротавирус и коронавирус крупного рогатого скота.

Животные : глубокостельные коровы черно-пестрой гол-штинофризской, красно-пестрой голштинофризской, симмен­тальской, швицкой, красно-горбатовской, сычевской, кост­ромской и арийской пород.

Коммерческие серии вакцин :

- против ротавирусной инфекции крупного рогатого скота сорбированной инактивированной (ТУ-9384-033-00495527-02);

- против коронавирусной инфекции крупного рогато­го скота сорбированной инактивированной (ТУ-9384-034-00495527-02);

- против рота- и коронавирусной инфекций крупного ро­гатого скота сорбированной инактивированной (ТУ 9384-035-00495527-02).

Индикацию вирусов в пробах фекалий проводили при помощи электронной микроскопии, иммунной электронной микроскопии, иммуноферментного анализа в реакции диф­фузионной преципитации, реакции гемагглютинации. В отде­льных пробах результаты иммунохимических методов были подтверждены методом полимеразной цепной реакции. Пла­нирование испытаний вакцин проводили по методу когортно-го исследования [4, 7].

Результаты и обсуждение

При исследовании сывороток крови коров и телят из хо­зяйств, неблагополучных по вирусным гастроэнтеритам ново­рожденных телят, антитела к ротавирусу обнаружены в 76,9%, к коронавирусу - в 68,6% материала. В 48,4% проб сыворот­ки крови телят выявили одновременно антитела к ротавирусу крупного рогатого скота.

Эпизоотологический мониторинг диарей среди ново­рожденных телят с инфекционной этиологией проводили в животноводческих хозяйствах с различным поголовьем дой­ных коров и уровнем их продуктивности. Результаты прове­денных исследований свидетельствуют, что в обследованных хозяйствах условия содержания и кормления коров и их про­дуктивность не являются определенными в этиопатогенезе ротавирусной и корона вирусной диареи новорожденных те­лят. Не установлено разницы в проявлении диареиных забо­леваний новорожденных телят, полученных о коров разных пород. Однако, четко просматривается зависимость между количеством погибших телят и временем суток, когда про­исходил отел. Среди "ночных" телят заболеваемость и гибель значительно превышают аналогичные показатели "днев­ных". Вероятно, это связано с несвоевременной выпойкой молозива. Падеж отмечен во все месяцы года, примерно в тодинаковом соотношении к количеству родившихся телят, что указывает на отсутствие сезонности заболевания. Анализ эпизоотической ситуации в ряде племенных хозяйств свиде­тельствует о том, что у животных, переболевших ротавирус­ной или коронавирусной диареей, значительно чаще регис­трируются респираторные заболевания в 15-60 - дневном возрасте. Широко используемая антибиотикотерапия в боль­шинстве случаев неэффективна вследствие резистентности микрофлоры к применяемым лечебным препаратам.

В литературе описано несколько методических подходов по вопросу борьбы и профилактики ротавирусного и корона-вирусного энтерита новорожденных телят. Ряд исследователей считает, что профилактика ротавирусной инфекции (как "фак­торной" болезни) новорожденных телят с помощью специфи­ческих средств (вакцин) малоэффективна, и поэтому все усилия целесообразно направлять на повышение естественной резис­тентности организма новорожденного [4].

В то же время специалисты, занимающиеся изучением болезней новорожденных телят, считают, что кормление телят молозивом от коров-матерей, ранее иммунизированных ина-ктивированной вакциной, может предотвращать появление диарей новорожденных [3, 9,11,14,16].

Принимая во внимание существование различных мне­ний о средствах и методах профилактики ротавирусной и ко­ронавирусной диарей новорожденных телят, были проведены широкие производственные испытания инактивированных вакцин против указанных возбудителей.

Испытания вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной (ТУ 9384-033-00495527-02) проводили на глубокостельных коровах в условиях 21 жи­вотноводческого хозяйства, где зарегистрирована инфекция. Из 2634 новорожденных телят, полученных от коров, вакцини­рованных двукратно (за 45-40 дней и 25-20 дней до отела), за­болело 20,3% и пало 4,5%. В этих же хозяйствах из 5975 телят, полученных от невакцинированных коров, 80,2% заболело и 29,0 пало. Результаты этих опытов представлены в таблице 1. Необходимо отметить, что больные телята подвергались лече­нию антибактериальными и симптоматическими средствами.

Приведенные в таблице 1 данные свидетельствуют о том, что после иммунизации вакциной против ротавирусной инфекции снизилось количество заболевших телят с 80,2% до 20,3%. Снизился падеж телят с 29,0% до 4,5%. При этом защищенность телят, полученных от вакцинированных коров, составила 95,5%.

Одновременно в животноводческих хозяйствах, где был выявлен коронавирус, испытывалась вакцина против корона­вирусной инфекции крупного рогатого скота сорбированная инактивированная. Результаты этих исследований представ­лены в таблице 2.

Нарушения функции пищеварения отмечены у 74,2% телят, полученных от невакцинированных коров, 22,6% телят погибло. У животных, полученных от вакцинированных коров, клиническая картина заболевания коронавирусной диареей отмечена у 12,1%, а количество павших телят составило 4,3%.

Достаточно часто в пробах фекалий больных диареей но­ворожденных телят, взятых из многих хозяйств различных ре­гионов, методами лабораторной диагностики одновременно обнаруживают ротавирус и коронавирус крупного рогатого ско­та. Поэтому в 11 животноводческих хозяйствах была испытана схема профилактики вирусных диарей, вызываемых указанны­ми возбудителями. Проводилась иммунизация глубокостельных коров (за 45-40 и 25-20 дней до отела) вакциной против рота­вирусной и коронавирусной инфекций крупного рогатого скота сорбированной инактивированной (ТУ 9384-035-00495527-02). Результаты работы представлены в таблице 3.

Результаты испытания вакцины против рота- и корона­вирусной инфекции крупного рогатого скота сорбированной на глубокостельных коровах показали, что у 78 % новорожден­ных телят, полученных от невакцинированных (контрольных) коров, регистрируются признаки диареи. В течение 20 дней в контрольной группе погибло 25,1% телят. У 11% новорожден­ных телят, полученных от вакцинированных коров, отмечены нарушения функции пищеварения, 3,9% телят пало.

В 68 хозяйствах, неблагополучных по желудочно-кишеч­ным заболеваниям новорожденных телят, ротавирус КРС выяв­лен в 61% всех проб фекалий, коронавирус КРС в 38%, в 28% исследуемого материала - одновременно оба возбудителя.

Результаты эпизоотологического мониторинга желудоч­но-кишечных заболеваний в хозяйствах многих регионов, где используются вышеуказанные препараты, подтверждают, что вакцинопрофилактика является неотъемлемой частью благо­получия и экономической эффективности хозяйств.

• 1. Байбурин Ф.Я., Бровкина ИЛ, Прокопенко Л.Г. Коррекция иммунометаболичес-ких последствий нарушения липидного обмена, - Курск, 2000. - 122 с.
• 2. Вазиров Ш.С. Антигенные и протективные свойства вакцины против ротави­русной инфекции крупного рогатого скота: Автореф. дис. Кандидат ветеринарных наук - М., 1994. - 16 с.
• 3. Гаффаров Х.З., Иванов А.В., Непоклонов Е.А., Равилов А.З. Моно- и смешан­ные диареи новорожденных телят и поросят. - Казань: Изд-во ФЭП, 2002. - 592 с.
• 4. Дудников СА. Последствия изменения доказательной базы этиологии ин­фекционных болезней. 2. Эффективность проводимых мероприятий // Актуальные проблемы инфекционной патологии животных: Матер. Международной научной кон-ференци Владимир, 2003. - с.62-66.
• 5. Клестова 3.C. Здоровье продуктивных животных как реализация их генети­ческого статуса. Вет.мед. Украины. - 1998. - N°5. - с.31-35.
• 6. Литвин В.Н., Ноживил А.И. Инфекционные и инвазионные болезни телят.- Киев. 1991. - 207с.
• 7. Макаров В.В., Сухарев О.И. Аналитическая эпизоотология // Аграрная Рос­сия. - 2001. - N°3. - с.9-14.
• 8. Миськевич СВ. Диагностические и лечебно - профилактические мероп­риятия по смешанной рота- и коронавирусной инфекции крупного рогатого скота // Ве.мед.Украины. - 2000. - N°7. - с.26-27.
• 9. Миськевич СВ., Скибицкий В.Г. Профилактическая эффективность ассоции­рованной инактивированно вкцины против рота-, коронавирусной инфекции крупного рогатого скота. Результаты производственных испытаний// Вет.мед.Украины - 2000.- N°10 - с.18.
• 10. Миськевич СВ. Разработка реакции связывания комплимента для диагнос­тики ротавирусной диареи телят.: Автореф.дис. Кандидат ветеринарных наук. - Киев. 1985. - 22с.
• 11. Огбу Огбоная, Онуфриев В.Н.„ Скибицкий В.Г. и соавт. Опыты инактиви-рования ротавируса крупного рогатого скота. Тез.докл. Республ.науч.произв.конф. -Харьков, 1990.-с.262.
• 12. Онуфриев В.Н., Скибицкий В.Г., Миськевич СВ. и др. Конструирование полива­лентных комбинированных специфических биопрепаратов для профилактики жеудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят//профилактика и меры борьбы с болезня­ми молодняка с.-х. ж-ных: Тез.докл.ресн.науч.-производ.конф. - Минск, 190. - с.14.
• 13. Прокопенко Л.Г., Копопли А.И. Метаболическая иммуномодуляция. - Курск. 2000. - 307с.
• 14. Рахадзе Л.Г., Алипер Т.И., Сергеев В.А. какой быть вакцине против вирус­ных гастроэнтеритов: проблемы и перспективы // Вопр.вирусологии. - 1989. - N°1.- с.5-16.
• 15. Скибщький В.Г. Ротав1русна шфекшя велико! рогато! худоби (ротав|русний ентерит телят). - Кшв: Укр. UJTEI, 1993. - 208с. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В., Фомина И.В. Вирусные болез­ни животных. - М.: ВНИТИБП, 1998. - 206с.

Коронавирусный энтерит (koronaviridae infection bovis) – остропротекающее заболевание новорожденных телят, выделяющаяся профузным поносом, порой со слизью и кровью в фекалиях, обезвоживанием организма, депрессией и исхуданием.

Этиология . Возбудитель заболевания – сложноорганизованный вирус из семейства Сoronaviridae.

Вирион устроен из спиралевидного нуклеокапсида, покрытого наружной липопротеидной оболочкой, на поверхности которой присутствует обширно расположенные булавовидные выступы размером 10-23 нм, напоминающие корону.

Эпизоотологические данные . Заболевание коронавирусный энтерит отмечается у телят 7-18-дневного возраста, однако очень часто коронавирусный энтерит появляется у животных 8-14-дневного возраста. К болезни более склонны телочки (37,9%), чем бычки (23,8%). Порода скота и способы ведения животноводства не оказывают существенного влияния на частоту эпизодов заболевания.

Первопричиной возбудителя инфекции являются нездоровые и переболевшие телята, клинически здоровые взрослые животные-вирусоносители, выделяющие вирус с испражнениями и мочой.

Инфицированность коров в отдельных случаях составляет 50-80%. Обстоятельствами передачи возбудителя являются употребление в пищу таких продуктов, как: молоко, кормушки, вода, подстилка и иные объекты, заражённые коронавирусом. Инфицирование животных случается очень часто алиментарным путем, однако возможен и воздушно-капельный путь. Болезнь отмечается в любой период года, однако очень часто — в стойловое время, что связано с понижением резистентности организма телят и высокой заражённостью помещений вирусом.

В единичных хозяйствах наблюдается цикличность эпизоотий в границах 3-4 лет. Заболеваемость телят коронавирусным энтеритом доходит 100%, а летальный исход колеблется от 10% до 47%. Довольно постоянно заболевание проходит в объединении с ротавирусной инфекцией и эшерихиозом.

Протекание и признаки . Инкубационный период равен 18-48 часам. Коронавирусный энтерит у телят проходит остро и подостро. Первоначально проявляются симптомы угнетения, потом формируется жидкий стул, переходящий в профузный. Температура тела, обычно, в границах нормы. Изредка — меньше нормы. Экскременты жидкие по составу, желтого либо зеленовато-желтого цвета, как правило, без дурного запаха, изредка — с примесью свернувшегося молока, слизи и крови. По мере формирования заболевания отмечается изъязвление слизистой оболочки ротовой полости, что сопутствуется выделением пенистой слюны. Нездоровые животные угнетены, живот вздут. Аппетит сохранен, но телята особо быстро худеют, формируется эксикоз, настаёт летальный исход от обезвоживания. Длительность заболевания 1-2 недели. Характер течения заболевания и его исход во многом зависят от возраста телят: чем они моложе, тем острее проходит заболевание и быстрее настаёт летальный исход.

У взрослых животных коронавирусный энтерит проходит субклинически. При анатомировании трупов павших телят обнаруживают кровоизлияние и язвы на слизистой оболочке ротовой полости, пищевода, сычуга. Двенадцатиперстная кишка — в состоянии анемии, наполнена газами, ее стенки истончены, прозрачны с геморрагическими язвами. Слизистая оболочка тощей кишки (а порой и ободочной) — с точечными кровоизлияниями и незначительными язвами, хранит красно-бурую водянистую жидкость. Помимо того, отмечается гиперплазия мезентериальных лимфатических узлов.

Диагноз на коронавирусный энтерит организован на анализе клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических трансформаций в комплексе с лабораторными исследованиями.

Для проведения изучения в лабораторию посылают в термосе со льдом пробы фекалий от нездоровых телят в границах 24-48 часов от проявления диареи и пораженные участки кишечника с содержимым, полученные сроком в 2-4 часа со времени гибели животного, а также парные пробы сыворотки крови с промежутком 2-3 недели.

Клинический вируссодержащий материал изучается в реакции гемагглютинации (РГА), торможения гемагглютинации (РТГА), иммунофлуоресценции (РИФ) и иммуноферментном анализе (ИФА), а также используют иммунную электронную микроскопию.

Данные методы дозволяют выявить в фекалиях и содержимом кишечника отличительные вирионы либо специфические антигены коронавирусов.

Вирусологические изыскания включают в себя выделение вируса в клеточных культурах с дальнейшей идентификацией в реакции нейтрализации (РН), торможения гемадсорбции (РТГАд), иммунофлуоресценции (РИФ), торможения гемагглютинации (РТГА), иммуноферментном анализе (ИФА). Ретроспективная диагностика предусматривает обнаружение прироста титра специфических антител в парных пробах сыворотки крови при помощи реакции нейтрализации (РН), иммуноферментного анализа (ИФА), торможения гемагглютинации (РТГА).

Дифференциальный диагноз . Коронавирусную инфекцию отличают от вирусной диареи, хламидиоза, парвовирусной и ротавирусной инфекции, колибактериоза.

Лечение . Для лечения коронавирусного энтерита применяют гипериммунные сыворотки и сыворотки реконвалесцентов, в которых существуют антитела к коронавирусу в то же время с антибактериальными и иммуностимулирующими препаратами, пробиотики. Используют также симптоматические методы лечения.

Предупреждениеи меры борьбы . Для предупреждения применяют живые и инактивированные моно- и ассоциированные вакцины, гипериммунные сыворотки. Для устранения болезни применяют общие противоэпизоотические операции – лимитирование движения скота, обеззараживание, карантинирование нездоровых животных, выполнение принципа пусто-занято.

Вирусная диарея телят, вызываемая коронавирусами, мало изучена.

В 1972 г. впервые было сообщено об обнаружении коронавируса как этиологического агента диспепсии новорожденных телят, Впоследствии оказалось, что коронавирусы имеют широкую зону распространения и наносят большой экономический ущерб животноводству. Заболеваемость телят — до 100%, гибель — 15 %, а телят более старших возрастов — 2—5 %.

В естественных условиях болеют телята как молочного, так и мясного скота в возрасте 3—21 дней и до 8 нед. Болезнь протекает в виде энзоотических вспышек, чаще в холодный период года. Заболеваемость зависит от возраста животных: у телят она составляет 40 % (иногда 100 %), у взрослых ниже — 10 %. Тяжесть заболевания зависит от вирулентности вируса, его дозы, наличия в организме бактериальной микрофлоры, условий кормления, содержания и других факторов. Коронавирусная инфекция очень часто протекает в сочетании с ротавирусным заболеванием, а также с другими болезнями, вызванными патогенными агентами как вирусной, так и бактериальной природы.

Характеристика возбудителя. Вирус относится к семейству Coronaviridae, роду Coronavirus. Название происходит от латинского corona в связи с наличием шипиков в виде короны на поверхности вирусной частицы.

Вирионы коронавируса представляют собой частицы с диаметром от 60 до 200 нм. Они состоят из нуклеокапсида спиральной симметрии и липопротеидной оболочки, на поверхности которой имеются булавовидные выступы длиной 12—24 нм, образующие подобие солнечной короны.

Геном вируса представлен единой односпиральной линейной плюс-PHК.

Устойчивость к физико-химическим воздействиям. Вирус чувствителен к эфиру, хлороформу, трипсину и прогреванию при температуре 56 °С, УФ-лучам. Стабилен в среде с pH 5,0—7,0.

Антигенная структура. Изучена недостаточно, однако известно, что коронавирусы имеют белки трех основных групп: белок нуклеокапсида, который ассоциирован с геномом и формирует спиральный РНП; белки оболочки, являющиеся гликопротеидами, которые обеспечивают адсорбцию и проникновение вируса и клетку и обусловливают слияние вирусной и клеточной мембран; матриксный белок, находящийся в составе вирусной оболочки.

Антигенная вариабельность. Изучена слабо. Серотипы не установлены. Коронавирус крупного рогатого скота не имеет антигенного родства с вирусами инфекционного бронхита птиц и инфекционного гастроэнтерита свиней, относящихся к семейству коронавирусов. Обнаружено антигенное родство с коронавирусом человека (штамм ОС-43), коронавирусом телят.

Литературные данные свидетельствуют о широких антигенных и биологических взаимосвязях между коронавирусами человека и животных некоторых видов (крупного рогатого скота, обезьян, мышей).

Антигенная активность. Вирус индуцирует в организме естественно и экспериментально зараженных животных комплемент-связывающие, преципитирующие, вируснейтрализующие и антикам агглютинирующие антитела, которые выявляют в РСК, РДП, РН, РТГА, РНГА, ИФА.

Культивирование вируса. В лабораторных условиях коронавирус удается культивировать в культуре клеток почки эмбриона крупного рогатого скота (после предварительной адаптации). Вирус вызывает цитопатические изменения в виде синцития и округли 1ия клеток. Длительное пассирование вируса приводит к снижению его вирулентности. Вирус размножается в цитоплазме инфицированных клеток.

Гемагглютинирующие свойства. Вирус обладает гемагглютинирующей и гемадсорбирующей активностью в отношении эритроцитов крыс, мышей и хомяков.

Экспериментальная инфекция воспроизводится на телятах, не получивших молозиво, или гнотобиотах. Диарея развивается через 18—24 ч после заражения. Без лечения животные обычно погибали от обезвоживания через 6—7 дней. Интраназальное и интратрахеальное заражение телят сопровождается лишь незначительными респираторными нарушениями.

Клинические признаки. Инкубационный период длится 18—24 ч. У заболевших отмечают угнетение, профузный понос, фекалий желтого цвета, часто с кровянистой слизью. Затем понос становится водянистым, состоящим из творожистых масс. В некоторых случаях наблюдается пенистое слюноотделение из-за наличия язв и ротовой полости. Болезнь продолжается 2—3 нед, приводит к истощению животных и может закончиться их гибелью.

Патологоанатомические изменения. При вскрытии обнаруживают язвы на слизистой пищевода, иногда сычуга. Двенадцатиперстная кишка заполнена газами, стенки ее истончены, прозрачны, с геморрагическими язвами. Слизистая ободочной кишки гиперемирована и изъязвлена, прямой кишки — часто утолщена, на ней образуются продольные отечные складки с язвами. При микроскопическом исследовании отмечают атрофию слизистой тонкого кишечника.

Локализация вируса. Особенность данной инфекции состоит в том, что коронавирус размножается как в кишечнике, вызывая диарею, так и респираторном тракте телят. Вирус преимущественно размножается в дистальной части тонкого и толстого кишечника, в эпителиальных клетках слизистой носовой полости, трахеи и легких. Коронавирус с одинаковой частотой выделяется как из желудочно-кишечного, так и респираторного трактов больных телят. Несмотря на размножение в респираторном тракте, коронавирус не вызывает респираторных заболеваний у телят.

Клинически здоровый рогатый скот может быть хроническим носителем вируса, и в период отела он становится вирусовыделителями. Вирус выделяется с фекалиями не менее 3 мес после отела. Результаты серологических исследований свидетельствуют о широком распространении коронавирусной инфекции. В отдельных стадах 50—98 % коров имеют антитела к коронавирусу.

Источник инфекции — больные и клинически здоровые животные-вирусоносители. Заражение происходит алиментарным путем. Передается заболевание через инфицированные предметы ухода, кормушки и помещения.

Диагностика. Диагноз ставят на основании эпизоотологического анализа, характерных клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.

Патологический материал параллельно исследуют на ротавирусную инфекцию, вирусную диарею и другие агенты, вызывающие кишечные заболевания у телят.

Взятие и подготовка материала. Для лабораторного исследования направляют пробы фекалий, кусочки кишечника с содержимым и парные сыворотки крови. Отправляют их в лабораторию в термосе с охлаждающей смесью. К исследованию материал подготавливают по общепринятым методам.

Индикация вируса в исследуемом материале направлена на: обнаружение вирионов вируса методом электронной микроскопии и иммуноэлектроноскопии. Используют обычно в научно-исследовательских институтах;

обнаружение вирусного антигена с использованием ИФА, РИФ, РГА;

обнаружение вирусной нуклеиновой кислоты с помощью ПЦР.

Изоляцию вируса из исследуемого материала обычно проводят на культуре клеток почки эмбриона коров. Однако в связи с трудностью культивирования вируса этот метод не получил широкого применения в диагностических лабораториях.

Идентификацию вируса проводят одновременно с его индикацией методами электронной микроскопии (ЭМ), иммунной электронной микроскопии (ИЭМ), ИФА, РИФ, РТГА, РСК.

Ретроспективная диагностика. Для этой цели используют сыворотки крови от коров и парные сыворотки, взятые от больных телят с интервалом 2—3 нед. Сыворотки крови исследуют в серологических реакциях: РТГА, РСК. Может быть использована PH при наличии штамма коронавируса, адаптированного к культуре клеток.

В настоящее время в диагностических лабораториях для индикации и идентификации вируса в исследуемом материале чаще используют ИФА, РГА и РТГА, а для обнаружения антител в сыворотках крови — РТГА с эритроцитами мышей.

Дифференциальная диагностика. Необходимо исключить ротавирусную инфекцию, вирусную диарею, а также колибактериоз и другие бактериальные инфекции.

Иммунитет и специфическая профилактика. В сыворотках крови телят-реконвалесцентов установлены вируснейтрализующие антитела в различных титрах. Сывороточные антитела у животных-реконвалесцентов не защищают их от повторного инфицирования. Видимо, в защите имеет значение местный иммунитет. При коронаинфекции С. А. Мебус (1974) из смывов кишечника телят-реконвалесцентов выделил специфические γ-глобулины классов IgM и IgA, которые нейтрализовали коронавирусы в разведении 1 : 32. Это можно рассматривать как оценочный тест иммунной защиты организма.

Для специфической профилактики применяют живую и инактивированную вакцины. Их готовят из полевого штамма коронавируса, выделенного из фекалий больных телят и адаптированного к культуре клеток почки и легкого эмбриона коровы. Телят вакцинируют перорально сразу после рождения, а стельных коров — парентерально за 30—90 дней до отела.

Наиболее эффективный метод борьбы с вирусной диареей новорожденных телят — вакцинация живой вакциной, полученной из аттенуированных штаммов рота — и коронавирусов. В экспериментальных условиях она защищает всех телят, а в полевых — снижает количество заболевших. Инактивированные вакцины пригодны для вакцинации коров и создания колострального иммунитета. Выпаивание телятам молозива вакцинированных коров, содержащего антитела в тигре 1 : 128 и выше, снижало заболеваемость телят в 4—7 раз и предотвращало их гибель.

Показано, что иммунизация коров в последней трети стельности живой вакциной против корона-, рота — и колиинфекции влияла на экскрецию коронавируса. Среди вакцинированных количество вирусовыделителей в период отела не увеличивалось, тогда как в контрольной группе животных возросло с 20—30 до 65—70 %.

Система профилактики и борьбы с вирусной диареей телят должна быть направлена на своевременное и всестороннее диагностическое обследование коров (матерей и телят) на вирусные инфекции и установление ассоциации возбудителей кишечных заболеваний.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.