Бактериологические исследования при гнойно септических

Цель исследования: усовершенствовать алгоритм ведения пациенток с различными формами гнойно­септических заболеваний (ГСЗ).

Дизайн: когортное проспективное сравнительное исследование.

Материалы и методы: в исследование были включены 276 женщин, поступивших в гинекологический стационар с ГСЗ с 01.01.2014 по 31.12.2016 г. По клиническому течению, тактике ведения, исходу пациенток разделили на две когорты, соответствующие клиническим формам ГСЗ: неосложненные и осложненные. У пациенток обеих групп оценивали жалобы, течение беременности и родов, время манифестации заболевания, клиническую картину, лабораторные показатели.

Результаты: в результате исследования создан алгоритм ведения пациенток с ГСЗ, включающий санацию очага инфекции, адекватную антибактериальную терапию в зависимости от вида возбудителя, инфузионную и антикоагулянтную терапию.

Заключение: разработанный алгоритм ведения пациенток с различными формами послеродовых ГСЗ позволил всех у 276 (100%) участниц сохранить репродуктивную функцию и избежать ранних послеоперационных осложнений.

Послеродовые гнойно­септические заболевания (ГСЗ) являются одной из актуальных проблем современного акушерства вследствие их высокой распространенности, отсутствия тенденции к снижению их частоты. Они стойко занимают в течение последних 10 лет 4­е место в структуре причин материнской смертности в мире [1, 2] . По данным Департамента здравоохранения города Москвы (ДЗМ), в Москве от инфекционных осложнений погибла 1 пациентка в 2013 г.; 3 — в 2014 г.; ни одной — в 2015 г. и 1 пациентка — в 2016 г. [3] .

В последние десятилетия во всем мире отмечается стойкая тенденция к росту распространенности абдоминального родоразрешения, обусловленная перинатальной направленностью акушерства [4] . В Москве также наблюдается ежегодный рост удельного веса кесарева сечения: так, в 2000 г. его доля составляла 16% от общего числа родов, в 2010 г. — 22%, а к 2013 г. выросла до 24,2%; в 2014 г. — 24,9%, но в 2015 г. отмечается незначительное снижение — 24,5%, которое сохранилось и в 2016 г. — 24,6% за счет увеличения числа родов, хотя абсолютные цифры свидетельствуют о росте общего числа операций кесарева сечения на 900 женщин, что связано с общемировой тенденцией [3] .

По данным ДЗМ, основным показанием к оперативному родоразрешению является рубец на матке после предыдущего кесарева сечения (32%), у 11% женщин — аномалии родовой деятельности, у 9% — отягощенный акушерский анамнез, у 5% — преэклампсия, у 3% — клинически узкий таз, у 5% — экстрагенитальные заболевания, у 2% — предлежание плаценты, у 9% — тазовое предлежание, у 24% — показания со стороны плода [3] . Рекомендованный ВОЗ в 1985 г. как желательный диапазон частоты кесарева сечения 10–15% в России просуществовал всего 10 лет.

В свою очередь, высокая частота выполнения абдоминального родоразрешения обусловила увеличение количества и тяжести послеоперационных инфекционных осложнений [5] .

Как любое хирургическое вмешательство, кесарево сечение сопряжено с различного рода осложнениями, среди которых превалируют воспалительные процессы. Несмотря на совершенствование техники операции, использование современных шовных материалов и антибактериальных препаратов, кесарево сечение остается сложной операцией и создает дополнительный риск возникновения послеродовых послеоперационных осложнений [5, 6] .

Поэтому риск развития гнойно­воспалительных заболеваний после кесарева сечения в 20 раз выше, чем при естественных родах [5–8] . Известно, что увеличение доли абдоминального родоразрешения на 1% повышает частоту развития послеродовых гнойно­септических осложнений в 2 раза. Материнская смертность после кесарева сечения, особенно повторного, в 4 раза выше, чем после родов per vias naturales [1, 5] . Причин формирования несостоятельного рубца на матке после кесарева сечения достаточно много: интраоперационные кровотечения, ранение соседних органов, неправильно выбранный метод операции, послеоперационные осложнения (гематолохиометра, эндометрит) [9, 10] .

Послеродовой эндометрит является основной причиной неполноценного рубца на матке и генерализации инфекции. Формирование всех последующих гнойных осложнений в послеродовом периоде — следствие прогрессирующего эндометрита. Частота эндометрита после самопроизвольных родов в среднем составляет 2–5%, после кесарева сечения — 10–30% [11, 12] . Инфекционный процесс в матке после оперативного родоразрешения отличается тяжелым и длительным течением, сопровождается воспалительными изменениями шва на матке и его несостоятельностью, развитием перитонита и генерализацией инфекции [13–15] .

Распространенность тяжелых осложнений эндометрита, к числу которых относят перитонит, тазовые абсцессы, сепсис, — менее 2%, но именно на их долю приходится значительное количество наблюдений материнской смерти [5, 11] .

Одним из наиболее грозных гнойно­септических осложнений, сопровождающихся высокой смертностью (15–40%), является акушерский перитонит. По данным ДЗМ, в 2012 г. зарегистрированы 5 наблюдений акушерского перитонита, в 2013 г. — 6, в 2014 г. — 4, в 2015 и 2016 гг. — по 11 [3] . Причиной акушерского перитонита у 98% пациенток становится осложнение кесарева сечения, у 1–2% — обострение воспалительного процесса придатков матки. Инфицирование брюшины, приводящее к развитию акушерского перитонита после кесарева сечения, происходит тремя путями: у 30% женщин инфицированное содержимое полости матки попадает в брюшную полость во время операции, у 15% кишечная микрофлора проникает в брюшную полость на фоне послеоперационного пареза кишечника, у 55% инфицирование брюшной полости возникает при несостоятельности шва на матке на фоне эндометрита. Несостоятельность шва на матке, в свою очередь, у 70% женщин связана с неправильным наложением шва, неполноценным гемостазом во время операции с образованием гематомы послеоперационного шва, к которой присоединяется инфекция, и лишь у 30% пациенток — с репаративными возможностями организма [5, 12, 16–18] .

Течение сепсиса и септического шока в акушерстве сопровождается меньшей летальностью, чем у других категорий пациентов (в акушерстве — до 28%, у небеременных женщин — 20–50%). Этому способствуют такие факторы, как более молодой возраст, менее отягощенный преморбидный фон, расположение первичного очага инфекции в полости таза — доступной зоне для диагностических и хирургических вмешательств, чувствительность микрофлоры к антибактериальным препаратам широкого спектра действия.

При рассмотрении вопроса о тяжелом сепсисе и септическом шоке в акушерстве особое внимание следует уделять современным критериям постановки диагноза. Необходимо помнить, что при развитии этих тяжелейших осложнений речь идет не просто о клинике, например, послеродового эндометрита — локальном гнойном очаге, а о системном поражении, и очень часто традиционные симптомы (увеличение размеров матки, гнойные выделения) могут просто отсутствовать. Положительные бактериологические пробы выявляются всего в 58% клинических наблюдений, и на них в первые часы оказания помощи нельзя рассчитывать. Проводимая терапия основного заболевания также может сглаживать остроту проявления некоторых симптомов. Именно на этапе своевременной постановки диагноза и санации очага инфекции происходит большинство ошибок, имеющих фатальные последствия. Системные проявления вплоть до развития полиорганной недостаточности и шока могут значительно опережать локальные симптомы гнойного очага, и без учета современных критериев постановки диагноза невозможно адекватное оказание помощи данной категории пациенток [19] .

Отличительной особенностью современного оперативного акушерства является снижение частоты перитонита и сепсиса, зарегистрированных в послеродовом периоде. Несмотря на все профилактические мероприятия, нет тенденции к снижению частоты эндометрита, который в современных условиях имеет торпидное течение с невыраженной клинической симптоматикой, что побуждает к углубленному изучению методов диагностики и адекватного лечения, чтобы избежать перехода в тяжелые формы ГСЗ.

Цель исследования: усовершенствовать алгоритм ведения пациенток с различными формами ГСЗ.

По клиническому течению, тактике ведения, исходу пациенток разделили на две группы, соответствующие клиническим формам ГСЗ: неосложненные (n = 265) и осложненные (n = 11). Первая группа состояла из трех подгрупп: женщины с эндометритом после самопроизвольных родов (n = 198), после оперативных родов (n = 61) и после оперативных родов с частичной несостоятельностью швов на матке (n = 6). Во вторую группу входили две подгруппы: 10 пациенток с перитонитом и одна с перитонитом и сепсисом.

У всех участниц проведены стандартные клинические, лабораторные и морфологические исследования.
Клинико­анамнестический метод — изучение акушерского анамнеза, особенности течения вагинальных и абдоминальных родов. У всех женщин оценивали соматический статус с использованием визуальных и физикальных методов.
Клиническое лабораторное обследование включало клинический и биохимический анализы крови, общий анализ мочи, коагулограмму, определение группы крови и резус­фактора, бактериоскопическое и бактериологическое исследование отделяемого из цервикального канала, измерение уровня прокальцитонина (ПКТ), бактериологическое исследование выпота брюшной полости у прооперированных родильниц.

Инструментальное обследование: трансваганальное и транс­абдоминальное УЗИ малого таза, УЗИ брюшной полости, рентгенография органов брюшной полости, КТ и МРТ у родильниц с осложненными формами ГСЗ.
Материал для морфологического исследования (содержимое полости матки, рубцово­измененные фрагменты матки) забирался во время инвазивных диагностики и лечения и хирургических операций.

Данные подвергали статистической обработке с использованием пакета программ Statistica 12,0; SPSS. Применяли метод описательной статистики с определением среднего арифметического, дисперсии, стандартного отклонения, 95%­ного ДИ. Достоверность различий оценивали с помощью непараметрического U­критерия Манна — Уитни. Различия считали статистически значимыми при p Рис. 1. Ультразвуковая картина частичной несостоятельности шва на матке (указана стрелкой). Здесь и далее в статье фото авторов

Рис. 2. Ультразвуковая картина полной несостоятельности шва на матке. Стрелка 1 — полная несостоятельность шва на матке, стрелка 2 — свободная жидкость в брюшной полости

Всем родильницам производилась рентгенография органов брюшной полости. МРТ и КТ делали женщинам с осложненными формами ГСЗ и с частичной несостоятельностью швов на матке. При рентгенографии у 45,0 ± 7,0% женщин обнаружены уровни в петлях тонкой и толстой кишки. У всех обследуемых, которым проводили КТ и МРТ, выявлены признаки частичной или полной несостоятельности передней стенки матки.

Пациенткам с неосложненными формами ГСЗ назначалась антибактериальная терапия, согласованная с клиническим фармакологом, включавшая ингибиторозащищенные аминопенициллины, цефалоспорины III–IV поколения и имидазол. При тяжелых формах эндометрита и при частичной несостоятельности швов на матке применяли карбопенемы и гликопептиды. Следует учитывать, что ни один из цефалоспоринов не обладает достаточной эффективностью против энтерококков, поэтому при подозрении на энтерококковую инфекцию целесообразно использовать препараты пенициллинового ряда. В нашем исследовании энтерококковая инфекция была диагностирована у 79 (29,8%) пациенток.

Выбор той или иной комбинации препаратов определяется тяжестью течения эндометрита и спектром возбудителей. Проводилась инфузионная, дезинтоксикационная терапия. С целью профилактики венозных тромбоэмболических осложнений назначался бемипарин натрия в дозе 2500 МЕ 1 раз в сутки.

Всем родильницам с неосложненными ГСЗ после самопроизвольных и оперативных родов производилась гистероскопия с целью удаления патологического субстрата из полости матки и адекватной санации очага инфекции. Гистероскопия позволяет выявить эндометрит, обусловленный остатками плацентарной ткани, эндометрит с некрозом децидуальной ткани, эндометрит с частичной несостоятельностью швов на матке, санировать полость и назначить дифференцированное лечение [20] . Шести (100%) родильницам с частичной несостоятельностью швов на матке проводилась гистероскопия в сочетании с лапароскопией, причем чем раньше предпринято это вмешательство с диагностической или лечебной целью, тем лучше исход заболевания, тем меньше вероятность развития акушерского перитонита (рис. 3, 4).

Рис. 3. Гистероскопическая картина частичной несостоятельности шва на матке (указана стрелкой)


Рис. 4. Лапароскопическая картина частичной несостоятельности шва на матке (указана стрелкой)

Всех родильниц с подозрением на акушерский перитонит госпитализировали в реанимационное отделение для проведения клинико­лабораторного обследования. Незамедлительно начиналась интенсивная антибиотикотерапия, инфузионная, дезинтоксикационная терапия. При выявлении перитонита с синдромом системной воспалительной реакции или без него по данным прокальцитонинового теста предположительный объем операции включал метропластику, а при ее невозможности — экстирпацию матки, однако окончательное решение принималось в каждом случае индивидуально интраоперационно. При диагностировании перитонита и сепсиса показана экстирпация матки как источника инфекции, однако, учитывая возможности стационара, вопрос может решается индивидуально в каждом конкретном случае.

Антибактериальные препараты до получения результатов бактериологического исследования назначали по согласованию с клиническим фармакологом и с учетом применения антибиотикотерапии в послеродовом периоде. Девяти (81,8%) родильницам назначены карбапенемы в сочетании с гликопептидами и имидазолом, 2 (18,2%) — карбапенемы в комбинации с гликопептидами и оксазолидином.

После получения результатов клинико­лабораторного исследования при наличии данных за перитонит совместно с хирургами 11 родильницам произведена нижнесрединная лапаротомия. По характеру экссудата у 8 (72,7%) из них был выявлен фибринозно­гнойный перитонит, у 3 (27,3%) — серозный. У 4 (36,4%) женщин имелись гнойно­воспалительная инфильтрация тканей по ходу швов с гнойным расплавлением шва, несостоятельность швов, у 6 (54,5%) — воспалительная инфильтрация тканей по ходу швов с полной несостоятельностью швов, у 1 (9,1%) — расплавление шва на всем протяжении с полной несостоятельностью.

Всем пациенткам с несостоятельностью швов на матке и акушерским перитонитом вне зависимости от формы и распространенности перитонита были выполнены органосохраняющие операции. Программированные релапаротомии проведены 2 (18,2%) родильницам, они помогли адекватно санировать брюшную полость и, самое главное, сохранить матку, а значит, репродуктивную функцию. У одной пациентки диагностировали перитонит и сепсис, при этом при релапаротомии должны были произвести экстирпацию матки как источника инфекции, но с учетом положительной динамики удалось сохранить орган. В послеоперационном периоде продолжалась дезинтоксикационная, инфузионная терапия.

Родильницы с эндометритом после самопроизвольных и оперативных родов выписаны в удовлетворительном состоянии на 4,4 ± 2,2 суток, с эндометритом после оперативных родов и частичной несостоятельностью швов на матке — на 5,5 ± 1,1 суток, с осложненными формами ГСЗ — на 9,1 ± 2,3 суток.

ОБСУЖДЕНИЕ
В настоящее время диагностика послеродовых ГСЗ основывается на данных анамнеза, клинической картине, результатах клинико­лабораторного исследования.

Для акушерского перитонита характерна стертая клиническая картина, основными и наиболее ранними проявлениями которой становятся неспецифические симптомы, что значительно затрудняет своевременную диагностику, увеличивая временной интервал между началом заболевания и постановкой правильного диагноза.

Определено, что причиной возникновения послеродового инфекционного заболевания чаще всего служит эндогенная инфекция. Показаны многолетние колебания микробиологических показателей цервикального канала женщин с преобладанием грамположительной или грамотрицательной флоры, сохранение ведущей роли в генезе послеродовых заболеваний Enterococcus ecium и Enterococcus faecalis и возрастание значения Streptococcus agalactiae, Streptococcus haemolyticus, Escherichia coli и Pseudomonas aeruginosa [5] . Acinetobacter baumannii является завсегдатаем стационара, устойчивым к пенициллинам и цефалоспоринам I поколения, с ним ассоциируется чрезвычайный высокий уровень летальности (30–60%). На фоне сниженного иммунитета такая инфекция может привести к летальному исходу от инфекционно­токсического шока и полиорганной недостаточности.

Инфекционные осложнения возникают как после родов через естественные родовые пути, так и после абдоминальных родов. Инфекционный процесс в матке после кесарева сечения отличается более тяжелым и длительным течением, нередко сопровождается развитием воспалительных изменений миометрия в области шва на матке и является ведущей причиной генерализованных форм послеродовой инфекции. Развитие перитонита чаще всего связано с несостоятельностью швов на матке и присоединением инфекции, реже — с технической погрешностью наложения швов. В ходе исследований установлено, что, несмотря на совершенствование хирургических технологий родоразрешения, кесарево сечение становится фактором риска ГСЗ чаще, чем вагинальные роды [5, 7] . ГСЗ органов малого таза сопутствовали осложнения, обусловленные нарушениями системы гемостаза, соматическими и генитальными заболеваниями неинфекционной природы.

На основании проведенного нами исследования был разработан алгоритм ведения пациенток с различными формами ГСЗ (рис. 5). Пациенток с неосложнеными формами ГСЗ госпитализировали для обследования в отделение гинекологии, с осложненными — в отделение реанимации. В засимости от формы ГСЗ назначались дезинтоксикационная, инфузионная, антикоагулянтная и эмпирическая антибактериальная терапия. Родильницам с эндометритом после самопроизвольных и оперативных родов проводили гистероскопию; с эндометритом и частичной несостоятельностью — гистероскопию в сочетании с лапароскопией, при необходимости — санационную релапароскопию. Родильницам с осложненными формами ГСЗ осуществляли лапаротомию. В зависимости от уровня ПКТ и возможности метропластики производили органосохраняющее вмешательство. С целью адекватной санации очага инфекции также проводили программированные релапаротомии. При содержании ПКТ более 2 нг/мл показана гистерэктомия, в нашем случае удалось сохранить матку.

Рис. 5. Алгоритм ведения родильниц с гнойно-септическими заболеваниями


ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Разработанный алгоритм ведения пациенток с различными формами послеродовых гнойно­септических заболеваний позволил у всех 276 (100%) участниц сохранить репродуктивную функцию и избежать ранних послеоперационных осложнений.

Кирилова Гюзэль Шавкатовна-
врач-бактериолог

Кужагильдина Халима Гиниятовна -врач-бактериолог

Мубаракшина Лидия Ивановна-
медицинский лабораторный техник

Хазымова Кадрия Нуремхаметовна-
лаборант

В лаборатории работают квалифицированные специалисты - врачи- бактериологи и средний медицинский персонал (фельдшер - лаборанты, медицинские лабораторные техники, лаборанты) высшей и первой категории. Все сотрудники регулярно повышают квалификацию на различных учебных циклах, конференциях и семинарах, занимаются самообразованием.

Создана нормативно-методическая база документов. Вновь поступающие документы, в том числе и международные стандарты, изучаются и внедряются в практику работы. Лаборатория регулярно участвует во внешней экспертной оценке качества в системе ФСВОК (федеральная система внешней оценки качества клинических лабораторных исследований).

Врачи- бактериологи определяют различные фенотипы механизмов резистентности микроорганизмов. Выявляются метициллинрезистентные, металлобеталактамазные, беталактамазопродуцирующие штаммы. Это позволяет правильно интерпретировать результат и рекомендовать клиницистам необходимый для лечения больного антимикробный препарат.

Большое внимание в лаборатории уделяется биологической безопасности работающего персонала. Постоянно ведется работа по совершенствованию ведения документации и соблюдению правил безопасности, что исключает возможность контаминирования проб.

Лаборатория оснащена следующим современным оборудованием:

-автоматический анализатор Bactec для крови и других в норме стерильных жидкостей для культивирования аэробов и анаэробов;

-автоматический бактериологический анализатор WalkAway, определяющий чувствительность к антибиотикам современными методами;

-ламинарный бокс 2 класса безопасности, защищающий от контаминации как пробу, так и персонал;

-видеомикроскоп, стереомикроскоп и бинокулярные микроскопы Leika;

- автоматический инкубатор для создания микроаэрофильных условий;

- инкубаторы для термостатирования;

- автоматические автоклавы для приготовления питательных сред;

- автоматические автоклавы, используемые для обеззараживания отработанных материалов и стерилизации;

- автоматическая разливочная машина для питательных сред.

Наличие подобного оборудования ускоряет выдачу результатов и повышает достоверность исследований.

В лаборатории используются современные селективные, высокоспецифичные питательные среды, новейшие тест- системы производства Германии, Франции, США, Испании. Все это позволило перейти на более качественный уровень работы бактериологической лаборатории, максимально быстро и достоверно выдавать результаты исследований. Регулярно проводится внутрилабораторный контроль качества.

Сотрудничаем по договору с лечебно-профилактическими организациями.

Мы предлагаем для всех желающих быстро и качественно выполнить следующие виды микробиологических исследований:

1. По клинической микробиологии (гнойно-септические заболевания различной локализации бактериальной и грибковой этиологии) из биологического материала с определением количества возбудителей и чувствительности к современным антимикробным препаратам: • крови, ликвора, других в норме стерильных жидкостей;

• мочи; • мокроты, промывных вод бронхов; • ран, пунктатов, абсцессов; • отделяемого половых органов;

• отделяемого уретры, сока простаты, спермы; • отделяемого глаз; • отделяемого ушей, зева, носа; • грудного молока; • фекалий на дисбактериоз кишечника;
2. Капельных и кишечных инфекций:

• фекалий на дизентерию, сальмонеллез, эшерихиозы(дезгруппа);

• биоматериала на возбудителей дифтерии – отделяемое зева, носа;
• биоматериал на коклюш и паракоклюш.
3.Санитарно- микробиологические исследования:
• на стерильность хирургического инструментария, перевязочного материала и др.;
• определение носительства золотистого стафилококка;
• смывы из объектов внешней среды на условно-патогенную микрофлору, стафилококк, бактерии группы кишечной палочки;
• исследование воздуха на общую микробную обсемененность (ОМЧ), наличие золотистого стафилококка, плесневых и дрожжеподобных грибов.

Правильная подготовка и сбор материала позволит быстро и качественно выполнить микробиологическую диагностику.

ПРАВИЛА ПОДГОТОВКИ И ВЗЯТИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРОБ ДЛЯ:

ИССЛЕДОВАНИЯ КРОВИ
Взятие материала производит процедурная медицинская сестра в кабинете или палате.
Участок кожи над пунктируемой веной обрабатывается ватным тампоном с 70 % спиртом, затем тампоном с 5 % настойкой йода и вновь тампоном с 70 % спиртом от центра к периферии. Кровь берется у взрослых от 10 до 30 мл, у детей – от 0,5 до 3 мл (в соотношении 1:10) и засевается в коммерческие флаконы. При невозможности доставить в лабораторию в течение 2 часов флаконы разрешается хранить при комнатной температуре до 48 часов.

ИССЛЕДОВАНИЯ КАТЕТЕРОВ
Взятие материала производит врач.
Область кожи вокруг катетера обрабатывают тампоном с 70% спиртом. В условиях асептики извлекают катетер и стерильными ножницами отрезают 5 см дистального конца катетера в стерильную пробирку или контейнер.
Доставить пробу на исследование в течение 2 часов.

ИССЛЕДОВАНИЯ МОЧИ
Взятие материала производит пациент. У лежачих – медицинская сестра.
Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной мочи, в количестве 3-5 мл в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов.

Туалет наружных половых органов:

Утром необходимо подмыться теплой водой с хозяйственным мылом (для мужчин туалет с отодвиганием крайней плоти) и промокнуть оставшиеся капли воды стерильной салфеткой или чистым проглаженным утром полотенцем. Открыть банку и собирать среднюю порцию мочи, не задевая баночкой наружные половые органы. Аккуратно закрыть банку.

При наличии постоянного катетера необходимо: пережать трубку на 1 см ниже уровня отверстия уретры, дезинфицировать трубку спиртовым тампоном и с помощью шприца с иглой забрать до 5 мл мочи в стерильную посуду, снять зажим с катетера.

Доставляется в лабораторию строго в течение 1-2 часов с момента забора.

ИССЛЕДОВАНИЯ МОКРОТЫ

Взятие материала производит пациент.
Перед взятием следует почистить зубы, прополоскать рот свежей кипяченой водой. Утреннюю (накопительную) мокроту без слюны в количестве 1-5 мл собирают в стерильный контейнер. Доставить необходимо не позднее 2 часов с момента забора материала.
ИССЛЕДОВАНИЯ ПРОМЫВНЫХ ВОД БРОНХОВ
Взятие материала производит врач в ходе бронхоскопии.
Материал собирают в стерильный контейнер в количестве 5-100 мл. Доставка в лабораторию в течение 2 часов с момента взятия.

ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО НОСА
1. На микрофлору при ЛОР заболеваниях. Взятие материала производит врач.
Достоверным биоматериалом является пунктат из пазух носа или промывные воды в шприце или стерильной пробирке, менее информативно – забор стерильным ватным тампоном из средних (по показаниям - глубоких отделов), предварительно освободив нос от слизи. При сухой слизистой - увлажненным 0,9% раствором NaCI ватным тампоном.
2. На носительство золотистого стафилококка. Взятие материала производит обученный медицинский персонал: из передних отделов слизистой полости носа одним тампоном из обоих носовых ходов, не касаясь кожи носа.

Доставляется в течение 2 часов с момента забора.

ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО ЗЕВА
Взятие материала производит врач или обученный средний медицинский персонал.
Проба отбирается натощак или через 2 часа после приема пищи, жидкости. Корень языка придавливается шпателем, материал отбирается не касаясь слизистой рта, языка.
1. На микрофлору - ватным тампоном обтирается слизистая правой миндалины, левой миндалины, задней стенки глотки. Доставка не позднее 2 часов с момента взятия.
2. На возбудителя дифтерии – из зева при наличии налетов на границе здоровой и пораженной ткани. При отсутствии налетов – как на микрофлору. Одновременно - из носа тампоном из обоих носовых ходов.

Доставка не позднее 2 часов с момента взятия.
3. На коклюш – необходимо взятие посева у постели больного или в лаборатории производит медицинский лабораторный техник изогнутым ватным тампоном под углом 120 о с задней стенки глотки Доставка немедленно в теплом контейнере!
ИССЛЕДОВАНИЯ ЛИКВОРА
Взятие материала производит врач в ходе соответствующих медицинских манипуляций.
С соблюдением асептики следует брать последние порции ликвора в количестве 1-3 мл в коммерческий флакон с питательной средой или в стерильную пробирку (края пробирки необходимо обжечь до взятия и после над спиртовкой). Доставлять необходимо немедленно (пробирку при температуре 35-37 о ). Вне часов работы лаборатории допускается хранить коммерческий флакон при комнатной температуре до 48 часов.

ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО ПОВЕРХНОСТНЫХ РАН
Взятие материала производит врач, перевязочная медицинская сестра во время перевязки и обработки ран: кожу вокруг раны предварительно обрабатывают раствором антисептика; некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной салфеткой. Забор материала производят ватным тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии.
Материал берется в коммерческие транспортные питательные среды (Амиес, Стюарт и др.) и доставляется в лабораторию. Допускается хранение при комнатной температуре в течение 48 часов.

ИССЛЕДОВАНИЯ ПУНКТАТОВ, ОТДЕЛЯЕМОГО ГЛУБОКИХ РАН, КУСОЧКОВ ТКАНЕЙ
Взятие материала производит врач.
С соблюдением асептики берется материал стерильным шприцом в количестве 0,5-3 мл. Пунктат вносится в коммерческую питательную среду или доставляется в шприце, в таком случае на конец иглы надевают наконечник, доставляют на исследование в течение 2 часов.
Кусочки тканей, нативный материал в количестве 0,5-3 г помещают в стерильные контейнеры.
Доставка не позднее 2 часов с момента взятия биоматериала.

ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО ГЛАЗ
Взятие материала производит врач.
За 5-6 часов до забора отменяются все назначенные процедуры и манипуляции.
Отбор - раздельно из каждого глаза ватным тампоном со слизистой конъюнктивы от наружного к внутреннему краю, не касаясь кожи.
Доставка в коммерческих транспортных средах до 48 часов с момента взятия отделяемого.
ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО УШЕЙ
Взятие материала производит врач.
При поражении наружного уха кожа обрабатывается 70° спиртом с последующим промыванием физиологическим раствором. Затем, отделяемое из очага собирают ватным тампоном в коммерческие транспортные питательные среды (Амиес, Стюарт и др.) и доставляется в лабораторию. Допускается хранение при комнатной температуре в течение 48 часов.
При поражении среднего, внутреннего уха доставляют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную посуду или коммерческие транспортные среды.
ИССЛЕДОВАНИЯ ЖЕЛЧИ
Взятие материала производит процедурная медицинская сестра.
При зондировании собираются в стерильные пробирки в количестве 3-5 мл отдельно порция В, реже - порция С, либо во время операции с помощью шприца, соблюдая правила асептики. Доставка в течение 2 часов.
ИССЛЕДОВАНИЯ ГРУДНОГО МОЛОКА
Взятие материала производит пациентка под контролем медицинской сестры.
С соблюдением правил асептики, после туалета молочных желез, предварительно сцедив первые капли в стерильную салфетку. Доставка в стерильных контейнерах в количестве 1-3 мл в течение 0,5-1 часа.

ИССЛЕДОВАНИЯ ОТДЕЛЯЕМОГО ПОЛОВЫХ ОРГАНОВ
Взятие материала производит врач-гинеколог или врач-уролог.

Цервикальный канал - ватным тампоном в зеркалах до мануального исследования предварительно обработав влагалищную часть ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором, не касаясь стенок влагалища.
Вульва - до мануального исследования, после введения зеркала и подъемника брать ватным тампоном с патологически измененных участков.
Отделяемое уретры - после туалета наружных половых органов. Материал берется ватным тампоном, не касаясь кожи. По показаниям параллельно со взятием материала врач-гинеколог (врач-уролог) готовит мазки на предметном стекле, используя отдельные стерильные ватные тампоны или гинекологические инструменты, равномерно распределяя материал без грубого втирания и резких штриховых движений.

-Перед сбором материала проводят тщательный туалет наружных половых органов с помощью мыла и кипяченой воды.

-Проводят ручной массаж простаты через прямую кишку.

-Материал собирают в стерильную пробирку, а затем используют транспортную систему со средой Амиес с углем. Пропитайте жидкостью стерильный тампон и поместите его в пробирку с транспортной средой.

-Перед сбором материала тщательно вымыть руки с мылом, а затем провести туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушить стерильной салфеткой.

-Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.

-Материал получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер. Если объем полученной спермы очень мал, можно использовать транспортную систему со средой Амиес с углем. Для этого пропитайте жидкостью стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы и поместите его в пробирку со средой. Возможна доставка материала в контейнере.

-Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта (во избежание вытекания материала).

Материал отбирается в коммерческие транспортные питательные среды (Амиес, Стюарт и др.), хранится при комнатной температуре в течение 48 часов.

Доставка в течение 2 часов с момента забора.

ИССЛЕДОВАНИЯ ИСПРАЖНЕНИЙ
Взятие материала производится самостоятельно или медицинской сестрой.
1. На патогенные энтеробактерии – из судна без следов дезинфицирующих растворов отбирается слизь, зелень, нативные фекалии в стерильную посуду или в пробирку с транспортными средами глицериновым консервантом по объему не более 1/3 среды, другие коммерческие накопительные среды.
Нативные фекалии – доставляются для исследования в течение 2 часов с момента взятия.
В транспортных, накопительных средах вне часов работы лаборатории необходимо хранить в холодильнике +4 С в глицериновом консерванте до 16-24 часов или других коммерческих средах – до 48 часов.

-Перед взятием мазка проводится тщательный туалет с мылом и водой области вокруг анального отверстия для снижения контаминации пробы.

-Осторожно вводят тампон на 2,5 см вглубь анального сфинктера и аккуратно вращают его в течение 10 секунд для получения материала с анальных складок, после чего помещают в пробирку с транспортной средой.

-Все обследуемые пациенты за 1-3 дня до взятия пробы должны находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике и молочнокислые продукты, также алкоголь, антибиотики и бактерийные препараты (содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки и т.д.).

-Материалом служит кал после естественной дефекации, который собирают в чистый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой.

-Не рекомендуется собирать кал из унитаза.

-Собирают кал на чистую поверхность, в качестве которой может быть использован чистый новый лист (пакет) из полиэтилена или бумаги (этот способ является предпочтительным).

-При использовании судна, его предварительно хорошо промывают с мылом и губкой, ополаскивают многократно водопроводной водой, а потом обдают кипятком и остужают.

-Кал берут преимущественно из средней порции специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного контейнера, в количестве не более 1/3 от объема контейнера. Не наполняйте контейнер доверху. Тщательно закройте крышку.

Доставлять не позднее 2 часов с момента взятия.

Каждая проба сопровождается документом - направлением, где указывается ФИО, возраст больного, номер МСКБ, отделение, диагноз, вид материала и исследования, дата и время забора, ответственное лицо.

Пробирки, флаконы, контейнеры обязательно маркируются.
Бактериологическая лаборатория работает с 8.00 до 15.00 часов,

выходной – суббота, воскресенье.

Телефон для справок 30-49-89, 30-49-91

Заведующий лабораторией КДЛ - биолог высшей квалификационной категории, «Отличник здравоохранения", главный лаборант города – Ольга Ильинична Леонтьева.

Читайте также:

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!
При симпотмах заболевания - обратитесь к врачу.

Copyright © Иммунитет и инфекции